سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,092,657
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,196,738
صابری, یوسف, طلوعی آذر, جواد, رازی, مزدک, توفیقی, اصغر. (1401). تأثیر تمرینات ورزشی با شدت کم ، متوسط و زیاد بر شاخص‌های آپوپتوز بافت بیضۀ موش‌های صحرایی نر. , 14(2), 43-60. doi: 10.22059/jsb.2022.338392.1510
یوسف صابری; جواد طلوعی آذر; مزدک رازی; اصغر توفیقی. "تأثیر تمرینات ورزشی با شدت کم ، متوسط و زیاد بر شاخص‌های آپوپتوز بافت بیضۀ موش‌های صحرایی نر". , 14, 2, 1401, 43-60. doi: 10.22059/jsb.2022.338392.1510
صابری, یوسف, طلوعی آذر, جواد, رازی, مزدک, توفیقی, اصغر. (1401). 'تأثیر تمرینات ورزشی با شدت کم ، متوسط و زیاد بر شاخص‌های آپوپتوز بافت بیضۀ موش‌های صحرایی نر', , 14(2), pp. 43-60. doi: 10.22059/jsb.2022.338392.1510
صابری, یوسف, طلوعی آذر, جواد, رازی, مزدک, توفیقی, اصغر. تأثیر تمرینات ورزشی با شدت کم ، متوسط و زیاد بر شاخص‌های آپوپتوز بافت بیضۀ موش‌های صحرایی نر. , 1401; 14(2): 43-60. doi: 10.22059/jsb.2022.338392.1510

تأثیر تمرینات ورزشی با شدت کم ، متوسط و زیاد بر شاخص‌های آپوپتوز بافت بیضۀ موش‌های صحرایی نر

نشریه علوم زیستی ورزشی
مقاله 4، دوره 14، شماره 2، شهریور 1401، صفحه 43-60    اصل مقاله (1.81 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی Released under CC BY-NC 4.0 license I Open Access I
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jsb.2022.338392.1510
نویسندگان
یوسف صابری1؛ جواد طلوعی آذر* 2؛ مزدک رازی3؛ اصغر توفیقی1
1گروه فیزیولوژی ورزشی و حرکات اصلاحی، دانشکدۀ علوم ورزشی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
2نویسنده مسئول. گروه فیزیولوژی ورزشی و حرکات اصلاحی، دانشکدۀ علوم ورزشی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
3گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
چکیده
مقدمه: تأثیر تمرینات ورزشی با شدت‌های مختلف بر القا و یا مهار فرایند آپوپتوز وابسته به میتوکندری در بافت بیضه تاکنون ناشناخته مانده است. هدف از پژوهش حاضر، بررسی تأثیر تمرین تداومی با شدت کم (LICT)، متوسط(MICT) و زیاد (HICT) بر فرایند آپوپتوز در بافت بیضۀ موش‌های صحرایی بود.
روش پژوهش: بدین‌منظور، 24 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار به‌صورت تصادفی به چهار گروه LICT، MICT، HICT و کنترل تقسیم شدند. گروه LICT با شدت 50-60 درصد حداکثر سرعت ، گروه MICT با شدت 65-70 درصد حداکثر سرعت  و گروه HICT با شدت 80-85 درصد حداکثر سرعت  تمرین کردند. بیان پروتئین و ژنBax ، Bcl-2، کاسپاز ـ3 با روش وسترن بلات و PCR کمی اندازه‌گیری شد. داده‌های پژوهش با آزمون آماری ANOVA و آزمون تعقیبی توکی تجزیه‌وتحلیل شد.
یافته‌ها : نتایج نشان داد که در گروه LICT و MICT بیان Bcl2، Bax و کاسپاز ـ3 تغییر معناداری در مقایسه با گروه کنترل نداشت (05/0P>). در گروه HICT بیان Bcl-2 کاهش معنادار (01/0P=) و بیان Bax و کاسپاز-3 افزایش معناداری (05/0P=) داشت. همچنین تعداد سلول‌های آپوپتوتیک در LICT و MICT تغییر معناداری را نشان نداد، ولی در گروه HICT افزایش معناداری داشت (001/0P=).
نتیجه‌گیری: به‌نظر می‌رسد هشت هفته تمرین LICT و MICT هیچ تأثیر معناداری در بروز یا القای فرایند آپوپتوز وابسته به میتوکندری در بافت بیضه ندارد. درحالی‌که گروه HICT با کاهش بیان Bcl2 و افزایش بیان Bax و کاسپازـ3، فرایند آپوپتوز را القا می‌کند و تعداد سلول‌های آپوپتوتیک را در بافت بیضه افزایش می‌دهد. 
کلیدواژه‌ها
تمرینات ورزشی؛ بافت بیضه؛ مسیر داخلی آپوپتوز؛ موش صحرایی
مراجع
  1. Treede R-D, Rief W, Barke A, Aziz Q, Bennett MI, Benoliel R, et al. Chronic pain as a symptom or a disease: the IASP Classification of Chronic Pain for the International Classification of Diseases (ICD-11). Pain. 2019;160(1):19-27.
  2. Pai MO, Venkatesh S, Gupta P. The role of infections in infertility: A review. International Journal of Academic Medicine. 2020;6(3):189.
  3. Ruggeri M, Cannas S, Cubeddu M, Molicotti P, Piras GL, Dessole S, et al. Bacterial agents as a cause of infertility in humans. New Microbiol. 2016;39(3):206-9.
  4. Turner KA, Rambhatla A, Schon S, Agarwal A, Krawetz SA, Dupree JM, et al. Male infertility is a women’s health issue—research and clinical evaluation of male infertility is needed. Cells. 2020;9(4):990.
  5. Hauser R, Paz G, Botchan A, Yogev L, Yavetz H. Varicocele and male infertility: part II: varicocele: effect on sperm functions. Human reproduction update. 2001;7(5):482-5.
  6. Ribeiro AS, Deminice R, Schoenfeld BJ, Tomeleri CM, Padilha CS, Venturini D, et al. Effect of resistance training systems on oxidative stress in older women. International journal of sport nutrition and exercise metabolism. 2017;27(5):439-47.
  7. Zini A, San Gabriel M, Baazeem A. Antioxidants and sperm DNA damage: a clinical perspective. Journal of assisted reproduction and genetics. 2009;26(8):427-32.
  8. Jacobs AL, Schär P. DNA glycosylases: in DNA repair and beyond. Chromosoma. 2012;121(1):1-20.
  9. Fanaeei H, Azizi Y, Khayat S. The role of stress oxidative in infertility male. A review Fasa Medical University Journal (FMUJ). 2014;2:93-103.
  10. Obeng E. Apoptosis (programmed cell death) and its signals-A review. Brazilian Journal of Biology. 2020;81(4):1133-43.

11.Garcia-Saez AJ. The BCL-2 family saga. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 2020;21(10):564-5.

  1. Allsopp TE, Wyatt S, Paterson HF, Davies AM. The proto-oncogene bcl-2 can selectively rescue neurotrophic factor-dependent neurons from apoptosis. Cell. 1993;73(2):295-307.
  2. Suleiman JB, Nna VU, Zakaria Z, Othman ZA, Eleazu CO, Bakar ABA, et al. Protective effects of bee bread on testicular oxidative stress, NF-κB-mediated inflammation, apoptosis and lactate transport decline in obese male rats. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2020;131:110781.
  3. Sadeghi F, Miri N, Barikani A, Hossein Rashidi B, Ghasemi Nejad A, Hojaji E, et al. Comparison of Food intake, physical activity and weight in infertile and healthy women aged 25-40 years. The Iranian Journal of Obstetrics, Gynecology and Infertility. 2015;18(173):32-40.
  4. Chigurupati S, Son TG, Hyun D-H, Lathia JD, Mughal MR, Savell J, et al. Lifelong running reduces oxidative stress and degenerative changes in the testes of mice. The Journal of endocrinology. 2008;199(2):333.
  5. Mirzaei M, Namiranian N, Bagheri-Fahraji B, Gholami S. Infertility and physical activity: A cross-sectional study of women living in Yazd aged 20-49 yr, 2014-2015. International Journal of Reproductive BioMedicine. 2020;18(9):795.
  6. West DW, Phillips SM. Associations of exercise-induced hormone profiles and gains in strength and hypertrophy in a large cohort after weight training. European journal of applied physiology. 2012;112(7):2693-702.
  7. Yi X, Tang D, Cao S, Li T, Gao H, Ma T, et al. Effect of different exercise loads on testicular oxidative stress and reproductive function in obese male mice. Oxidative medicine and cellular longevity. 2020;2020.
  8. Brown DA, Johnson MS, Armstrong CJ, Lynch JM, Caruso NM, Ehlers LB, et al. Short-term treadmill running in the rat: what kind of stressor is it? Journal of applied physiology. 2007;103(6):1979-85.
  9. Høydal MA, Wisløff U, Kemi OJ, Ellingsen Ø. Running speed and maximal oxygen uptake in rats and mice: practical implications for exercise training. European Journal of Preventive Cardiology. 2007;14(6):753-60.
  10. Azar JT, Maleki AH, Moshari S, Razi M. The effect of different types of exercise training on diet-induced obesity in rats, cross-talk between cell cycle proteins and apoptosis in testis. Gene. 2020;754:144850.
  11. Kim D-H, Kim S-H, Kim W-H, Moon C-R. The effects of treadmill exercise on expression of UCP-2 of brown adipose tissue and TNF-α of soleus muscle in obese Zucker rats. Journal of exercise nutrition & biochemistry. 2013;17(4):199.
  12. Wang R, Tian H, Guo D, Tian Q, Yao T, Kong X. Impacts of exercise intervention on various diseases in rats. Journal of sport and health science. 2020;9(3):211-27.
  13. Zhao Y, Tan Y, Dai J, Li B, Guo L, Cui J, et al. Exacerbation of diabetes-induced testicular apoptosis by zinc deficiency is most likely associated with oxidative stress, p38 MAPK activation, and p53 activation in mice. Toxicology letters. 2011;200(1-2):100-6.
  14. Minas A, Najafi G, Jalali AS, Razi M. Fennel induces cytotoxic effects against testicular germ cells in mice; evidences for suppressed pre‐implantation embryo development. Environmental toxicology. 2018;33(8):841-50.
  15. Salmani S, Razi M, Sarrafzadeh-Rezaei F, Mahmoudian A. Testosterone amplifies HSP70-2a, HSP90 and PCNA expression in experimental varicocele condition: Implication for DNA fragmentation. Reproductive Biology. 2020;20(3):384-95.
  16. Khosrowbaki A. The role of oxidative stress in male infertility: A review. Journal of Arak University of Medical Sciences. 2013;15(9):94-103.
  17. Khoshtabiat L, Mahdavi M. The role of oxidative stress in proliferation and cell death. Journal of Mazandaran University of Medical Sciences. 2015;25(127):130-45.
  18. Mooren FC, Krüger K. Exercise, autophagy, and apoptosis. Progress in molecular biology and translational science. 2015;135:407-22.
  19. Yazdanparast Chaharmahali B, Azarbayjani MA, Peeri M, Farzanegi Arkhazloo P. The Effect of Moderate and High Intensity Interval Trainings on Cardiac Apoptosis in the Old Female Rats. Report of Health Care. 2018;4(1):26-35.

31.Manna I, Jana K, Samanta P. Effect of intensive exercise‐induced testicular gametogenic and steroidogenic disorders in mature male Wistar strain rats: a correlative approach to oxidative stress. Acta physiologica scandinavica. 2003;178(1):33-40.

32.Manna I, Jana K, Samanta P. Effect of different intensities of swimming exercise on testicular oxidative stress and reproductive dysfunction in mature male albino Wistar rats. 2004;42(8):816-22.

  1. Jana K, Samanta PK, Manna I, Ghosh P, Singh N, Khetan RP, et al. Protective effect of sodium selenite and zinc sulfate on intensive swimming-induced testicular gamatogenic and steroidogenic disorders in mature male rats. Applied Physiology, Nutrition, and Metabolism. 2008;33(5):903-14.
  2. Chigrinskiy E, Conway V. Protective effect of D-ribose against inhibition of rats testes function at excessive exercise. Journal of Stress Physiology & Biochemistry. 2011;7(3).
  3. Quadrilatero J, Hoffman-Goetz L. N-Acetyl-L-cysteine prevents exercise-induced intestinal lymphocyte apoptosis by maintaining intracellular glutathione levels and reducing mitochondrial membrane depolarization. Biochemical and Biophysical Research Communications. 2004;319(3):894-901.
  4. Nieman DC. Exercise, infection, and immunity. International journal of sports medicine. 1994;15(S 3):S131-S41.
  5. Simpson RJ, Lowder TW, Spielmann G, Bigley AB, LaVoy EC, Kunz H. Exercise and the aging immune system. Ageing research reviews. 2012;11(3):404-20.
  6. Kerr JF, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wideranging implications in tissue kinetics. British journal of cancer. 1972;26(4):239-57.
  7. Li NC, Wei XX, Hu YL, Hou X, Xu H. Aerobic exercise blocks interleukin‐6 levels and germ cell apoptosis in obese rats. Andrologia. 2018;50(2):e12880.
  8. Navalta J, Sedlock D, Park K-S. Effect of exercise intensity on exercise-induced lymphocyte apoptosis. International journal of sports medicine. 2007;28(06):539-42.
  9. Delchev SD, Georgieva KN, Koeva YA, Atanassova PK. Bcl-2/Bax ratio, mitochondrial membranes and aerobic enzyme activity in cardiomyocytes of rats after submaximal training. Folia medica. 2006;48(2):50-6.
  10. Greijer A, Van der Wall E. The role of hypoxia inducible factor 1 (HIF-1) in hypoxia induced apoptosis. Journal of clinical pathology. 2004;57(10):1009-14.
  11. Sari-Sarraf V, Amirsasan R, Sheikholeslami-Vatani D, Faraji H. Effect of creatine supplementation on the factors involved in apoptosis-related process (Bax, Bcl-2) and their ratio (Bcl-2/Bax) during acute resistance exercise in middle-aged men. Scientific Journal of Kurdistan University of Medical Sciences. 2016;21(4):17-28.
  12. Morishima N, Nakanishi K, Takenouchi H, Shibata T, Yasuhiko Y. An endoplasmic reticulum stress-specific caspase cascade in apoptosis: cytochrome c-independent activation of caspase-9 by caspase-12. Journal of Biological Chemistry. 2002;277(37):34287-94.
  13. Young S, Marshall R, Hill R. Hypoxia induces DNA overreplication and enhances metastatic potential of murine tumor cells. Proceedings of the National Academy of Sciences. 1988;85(24):9533-7.
  14. Koeva Y, Delchev S, Georgieva K, Atanassova P, editors. Heat Shock protein-70 expression in testis following endurance training of rats. Proceedings of the Balkan scientific conference of biology, Plovdiv, Bulgaria; 2005.
  15. Feng HL, Sandlow JI, Sparks AE. Decreased expression of the heat shock protein hsp70-2 is associated with the pathogenesis of male infertility. Fertility and sterility. 2001;76(6):1136-9.
  16. Santana ET, Serra AJ, Silva JA, Bocalini DS, Barauna VG, Krieger JE, et al. Aerobic exercise training induces an anti-apoptotic milieu in myocardial tissue. Motriz: Revista de Educação Física. 2014;20:233-8.
  17. Samadian Z, Azar JT, Moshari S, Razi M, Tofighi A. Moderate-intensity exercise training in sole and simultaneous forms with insulin ameliorates the experimental type 1 diabetes-induced intrinsic apoptosis in testicular tissue. International journal of sports medicine. 2019;40(14):909-20.
  18. Marques-Aleixo I, Santos-Alves E, Balca M, Rizo-Roca D, Moreira P, Oliveira P, et al. Physical exercise improves brain cortex and cerebellum mitochondrial bioenergetics and alters apoptotic, dynamic and auto (mito) phagy markers. Neuroscience. 2015;301:480-95.
  19. Majidi A, Poozesh Jadidi R, Azali Alamdari K, Bashiri J, Nourazar MAR. Effects of Aerobic Training and Curcumin Supplementation on Cardiomyocyte Apoptosis and MiRNAs Expression in Rats Exposed to Arsenic. Sport Physiology. 2020;12(48):39-60.

52.Yoo S-Z, No M-H, Heo J-W, Chang E, Park D-H, Kang J-H, et al. Effects of a single bout of exercise on mitochondria-mediated apoptotic signaling in rat cardiac and skeletal muscles. Journal of exercise rehabilitation. 2019;15(4):512.

  1. Oláh A, Németh BT, Mátyás C, Horváth EM, Hidi L, Birtalan E, et al. Cardiac effects of acute exhaustive exercise in a rat model. International journal of cardiology. 2015;182:258-66.
  2. Hasani S, Habibian M. The effect of regular high-intensity interval exercise on some apoptotic factors in the brain tissue of old female rats. Feyz Journal of Kashan University of Medical Sciences. 2018;22(2):128-33.
  3. Colombo R, Siqueira R, Conzatti A, Fernandes TRG, Tavares AMV, da Rosa Araújo AS, et al. Aerobic exercise promotes a decrease in right ventricle apoptotic proteins in experimental cor pulmonale. Journal of cardiovascular pharmacology. 2015;66(3):246-53.
  4. Koçtürk S, Kayatekin B, Resmi H, Açıkgöz O, Kaynak C, Özer E. The apoptotic response to strenuous exercise of the gastrocnemius and solues muscle fibers in rats. European journal of applied physiology. 2008;102(5):515-24.
  5. McMillan EM, Graham DA, Rush JW, Quadrilatero J. Decreased DNA fragmentation and apoptotic signaling in soleus muscle of hypertensive rats following 6 weeks of treadmill training. Journal of Applied Physiology. 2012.
  6. Liu W, He W, Li H. Exhaustive training increases uncoupling protein 2 expression and decreases Bcl-2/Bax ratio in rat skeletal muscle. Oxidative medicine and cellular longevity. 2013;2013.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 821
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 564


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب