![سامانه نشر مجلات علمی دانشگاه تهران](./data/logo.png)
تعداد نشریات | 162 |
تعداد شمارهها | 6,579 |
تعداد مقالات | 71,071 |
تعداد مشاهده مقاله | 125,680,037 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 98,910,676 |
بررسی برخی شاخص های فیزیولوژیک و آنزیم های آنتی اکسیدانت در دو رقم رز (Pearl و Angelina) تحت تنش بیمارگر Agrobacterium tumefaciens | ||
به زراعی کشاورزی | ||
مقاله 11، دوره 24، شماره 1، فروردین 1401، صفحه 145-157 اصل مقاله (528.59 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jci.2021.325318.2564 | ||
نویسندگان | ||
اکرم وطنخواه1؛ زهرا ایزدی2؛ سعید ریزی* 3؛ عبدالرحمان معتمدی4؛ مهدی قاسمی ورنامخواستی5 | ||
1دانشجوی دکتری، بخش علوم و مهندسی باغبانی، دانشکده کشاورزی شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
2استادیار، بخش علوم و مهندسی باغبانی، دانشکده کشاورزی شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
3استادیار، بخش مکانیک بیوسیستم، دانشکده کشاورزی شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
4استادیار، بخش گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
5دانشیار، بخش مکانیک بیوسیستم، دانشکده کشاورزی شهرکرد، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
چکیده | ||
تنشهای زیستی و غیرزیستی منجر به تولید گونههای فعال اکسیژن (ROS) در گیاهان، آسیب به گیاه میزبان، کاهش قدرت آن و گاهی مرگ گیاه میشوند. گل رز شاخهبریده، یکی از محبوبترین گیاهان زینتی است که به بیماری گال طوقه ناشی از Agrobacterium tumefaciens دچار میشود. برای بررسی فعالیت برخی آنزیمهای آنتیاکسیدانت و شاخصهای فیزیولوژیک در دو رقم رز شاخهبریده، مایهکوبی عامل گال، بهصورت طرح فاکتوریل در قالب طرح کامل تصادفی در سه تکرار در زمان پیوند بهروش استنتینگ در گلخانه تحقیقاتی دانشگاه شهرکرد در شهریورماه 1399 انجام شد. تیمارها شامل آلودگی (مایهکوبی سوسپانسیون اگروباکتریوم و مایهکوبی آب) بهعنوان عامل اول و تیمار رقم (Angelina و Pearl) بهعنوان عامل دوم بودند. سه ماه پس از پیوند، نتایج نشان داد برهمکنش رقم و آلودگی (باکتری) بر صفات نشت یونی، پرولین و گایاکول پراکسیداز در سطح احتمال یک درصد اثر معنیدار داشت. بیشترین میزان قندهای محلول، MDA و پروتئین در نمونههای آلوده بهترتیب 6/ 298 میکروگرم بر گرم بر وزن تر، 6/488 میکرومول بر گرم در وزن تر و 7/36 میلیگرم بر گرم بر وزن تر مشاهده شد و بیشترین RWC و سطح برگ در نمونههای سالم بهترتیب به میزان 5/68 درصد و 5/21 سانتیمترمربع بود. در این پژوهش مایهکوبی عامل گال طوقه، موجب ایجاد گونههای فعال اکسیژن و تنش اکسیداتیو و ایجاد تغییر در لیپیدها، قندهای محلول و پروتئین کل شد. | ||
کلیدواژهها | ||
آنزیمهای آنتی اکسیدانت؛ تنشهای بیولوژیک؛ گال طوقه؛ Agrobacterium tumefaciens؛ Rosa hybrida | ||
مراجع | ||
Atson, E. (2019). Use of Amino Oligosaccharins and Alternaria Activated Protein in Management of Crown Gall and Enhancement of Growth in Roses. M.Sc. Thesis. Department of Plant Science and Crop Protection. College of Agriculture and Veterinary Sciences. University of Nairobi. 86p. Agrios, G.N. (2005). Plant Pathology, Academic press, Elsevier academic press. New York. 922 p. Azadi, P., Beyrami Zadeh, E., & Otang Ntui, V. (2013). A simple protocol for somatic embryogenesis in Rosa hybrida L. cv. Apollo. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 88(4), 399-402. Azari, A., Modares Sanavi, S.A.M., Askari, H. F., Ghanati, A., Naji, M., & Alizade, B. (2012). Effect of salinity stress on morphological and physiological of canola and turnip (Brassica napus and B. rapa). (In Persian, with English Abstract) Iran. Iranian Journal of Crop Sciences, 14(2), 121-135. Abei, H. (1984). Catalase in vitro. Methods in Enzymology, 105, 121-126. Arun, K., Mali, P.C., & Manga, V.K. (2010). Changes in some phenolic compounds and enzyme activities of infected pearl millet caused by Sclerospora graminicola. International Journal of Plant Physiology and Biochemistry, 2(1), 6-10. Atwal, A.K., Kaur, R., Munshi, S.K., & Mann, A.P.S. (2004). Biochemical changes in relation to Alternaria leaf blight in Indian mustard. Plant Disease Research, 19, 57-59. Bastam, N., Baninasab, B., & Ghobadi, C. (2012). Improving salt tolerance by exogenous application of salicylic acid in seedling of pistachio. Plant Growth Regulation, 69(3), 275-284. Bates, L.S., Waldren, R.P., & Teare, I.D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. Bradford, M.M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein- dye binding. Analytical biochemical, 72(1), 248-254. Chandrasekaran, M., Lee, J.M., Moon, Ye.B., Jung, S.M., Kim, J., Kim, J.W., & Chul Chun, S. (2019). Isolation and characterization of a virulent and virulent strains of Agrobacterium tumefaciens from rose crown gall in selected regions of South Korea. Journal Plants, 8(11), 452. https:// doi: 10.3390/plants8110452. Cubero, J., Lastra, B.C., Salcedo, L., Diquer, J., & Lopez, M.M. (2006). Systemic movement of Agrobacterium tumefaciens in several plant species. Journal of Applied Microbiology, 101(2), 412-421. https:// doi.org/10.1111/j.1365-2672.2006.02938.x. Chhabra, R., Kaur, S., Vij, L., & Gaur, K. (2020). Exploring Physiological and Biochemical Factors Governing Plant Pathogen Interaction: A Review. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 9(11), 1650-1666. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2020.911.197. Chen, P.S., Wang, L.Y., Chen, Y.J., Tzeng, K.C., Chang, S.C., Chung, K.R., & Lee, M.H. (2012). Understanding cellular defense in kumquat and calamondin to citrus canker caused by Xanthomonas citri subsp. citri. Physiological and Molecular Plant Pathology, 79, 1-12. https://doi.org/10.1016/j.pmpp.2012.03.001. Danon, A., Miersch, O., Felix, G., Camp, R.G.L., & Apel, K. (2005). Concurrent activation of cell death regulating signaling pathways by singlet oxygen in Arabidopsis thaliana. Plant Journal, 41(1), 68-80. https:// doi: 10.1111/j.1365-313x.2004.02276.x. Goodman, R.N., Kialy, Z., & Saitlin, M. (1967). The biochemistry and physiology of infections plant disease. David Van Nostrand Inc. p. 354. Heath, R.L., & Packer, L. (1969). Photoperoxidation in isolated chloroplast. Ι. Kinetics and stoichiometry of fatty acid peroxidation. Archives of Biochemistry and Biophysics, 125(1), 189-198. Irigoyen, J.J., Emerich, D.W., & Sanchez-Diaz, M. (1992). Water stress induce changes in concentration of proline and total soluble sugar in modulated alfalfa (Medicgo sativa) plants. Physiologia Plantarum, 84(1), 55-60. Khizar, M., Haroon, U., Kamal, A., Inam, W., Chaudhary, H.J., Farooq, M., & Munis, H. (2021). Evaluation of virulence potential of Aspergillus tubingensis and subsequent biochemical and enzymatic defense response of cotton. Microscopy Research and Technique, 84(11), 2694-2701. https://doi.org/10.1002/jemt.23832. Khatun, S., Bandhopadhyay, P.K., & Chatterjee, N.C. (2009). Phenols with their oxidizing enzymes in defense against black spot of rose (Rosa centifolia). Asian Journal of Experimental Sciences, 23(1), 249-252. Kumar, D., Al Hassan, M., Naranjo, M. A., Agrawal, V., Boscaiu, M., & Vicente, O. (2017). Effects of salinity and drought on growth, ionic relations, compatible solutes and activation of antioxidant systems in oleander (Nerium oleander L.). Public Library of Science, 12(9), e0185017. https:// doi.org/10.1371/journal.pone.0185017. Kumar, N., Ebel, R.C., & Roberts, P.D. (2011). H2O2 degradation is suppressed in kumquat leaves infected with Xanthomonas axonopodis pv. citri. Scientia Horticulturae, 130(1), 241-247. doi.org/10.1016/j.scienta.2011.07.005. Murria, S., Kaur, N., Arora, A., & Arora, N.K. (2018). Biochemical characterization of superior seedless variety of grape (Vitis vinifera L.) for resistance to anthracnose. Indian Phytopathology, 71(3), 399-405. Mac-Adam, J.W., Nelson, C.J., & Sharp, R.E. (1992). Peroxidase Activity in the leaf elongation zone of tall fescue. Plant Physiology, 99(3), 872- 878. Morkunas, I., & Ratajczak, L. (2014). The role of sugar signaling in plant defense responses against fungal pathogens. Acta Physiologiae Plantarum, 36, 1607-1619. Malhotra, S.K. (1993). Biochemical components of tomato genotypes in relation to Fusarium wilt. Indian journal of mycology and plant pathology, 23(3), 302-304. Narwal, S.S., Bogatek, R., Zagdaneska, B.M., Samoietro, D.A., & Vattuone, M.A. (2009). Plant Biochemistry. Studium Press LLC, Texas. 632 p. Naglaa, A.A., & Heba, I.M. (2011). Impact of secondary metabolites and related enzymes in flax resistance and or susceptibility to powdery mildew. African Journal of Biotechnology, 11(5), 1073-1077. Okushima, Y., Koizumi, N., Kusano, T., & Sano, H. (2000). Secreted proteins of tobacco cultured BY2 cells: identification of a new member of pathogenesis-related proteins. Plant Molecular Biology, 42(3), 479-488. https:// doi: 10.1023/a:1006393326985. Pang, Y.Z., Wang, Z. H., Guo, S.S., Zhang, S.S., Zheng, L.W., Zhang, J.Z., & Guo, D.P. (2021). Verticillium dahliae reduces plant growth, constitutively induces antioxidant metabolism and gene expression in eggplant (Solanum melongena L.). Physiological and Molecular Plant Pathology. https://114,101641.doi.org/10.1016/j.pmpp.2021.101641 Pérez-Pérez, J.G., Robles, J.M., Tovar, J.C., & Botía, P. (2009). Response to drought and salt stress of lemon ‘Fino 49’ under field conditions: Water relations, osmotic adjustment and gas exchange. Scientia Horticulturae, 122(1), 83-90. https://10.1016/j.scienta.2009.04.009. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 621 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 249 |