سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,116,024
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,220,487
ستمدیده مسلمی, فاطمه, الفتی, جمالعلی, حمید اغلی, یوسف. (1398). ارزیابی نتاج حاصل از تلاقی لاین‌های منتخب خیار با هیبرید تجاری نگین. , 50(3), 539-548. doi: 10.22059/ijhs.2018.231888.1236
فاطمه ستمدیده مسلمی; جمالعلی الفتی; یوسف حمید اغلی. "ارزیابی نتاج حاصل از تلاقی لاین‌های منتخب خیار با هیبرید تجاری نگین". , 50, 3, 1398, 539-548. doi: 10.22059/ijhs.2018.231888.1236
ستمدیده مسلمی, فاطمه, الفتی, جمالعلی, حمید اغلی, یوسف. (1398). 'ارزیابی نتاج حاصل از تلاقی لاین‌های منتخب خیار با هیبرید تجاری نگین', , 50(3), pp. 539-548. doi: 10.22059/ijhs.2018.231888.1236
ستمدیده مسلمی, فاطمه, الفتی, جمالعلی, حمید اغلی, یوسف. ارزیابی نتاج حاصل از تلاقی لاین‌های منتخب خیار با هیبرید تجاری نگین. , 1398; 50(3): 539-548. doi: 10.22059/ijhs.2018.231888.1236

ارزیابی نتاج حاصل از تلاقی لاین‌های منتخب خیار با هیبرید تجاری نگین

علوم باغبانی ایران
مقاله 4، دوره 50، شماره 3، آذر 1398، صفحه 539-548    اصل مقاله (596.3 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2018.231888.1236
نویسندگان
فاطمه ستمدیده مسلمی1؛ جمالعلی الفتی* 2؛ یوسف حمید اغلی2
1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم باغبانی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان
2دانشیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان
چکیده
پارتنوکارپی توانایی تولید میوه بدون تلقیح است که حاصل بر­هم­کنش ژنتیک و عوامل فیزیولوژیکی است. در طی تحقیقات پیشین، لاین‌های مطلوب خیار (Cucumis sativus L.) با ترکیب­پذیری عمومی مطلوب و هیبرید­های برتر با هتروزیس بالا که ترکیب والدینی آنها، ترکیب‌پذیری خصوصی بالایی داشتند شناسایی شدند. در این بررسی امکان تلاقی آن­ لاین‌ها با هیبرید­های تجاری رایج ایران و بررسی نتاج آنها با هدف بهبود صفت پارتنوکارپی و ماده­گلی صورت گرفت. والد تجاری مورد استفاده در این تلاقی هیبرید تجاری نگین بود. لاین‌های مورد استفاده در این تلاقی نیز A10، B10و B12بودند. نتایج نشان داد که نتاج حاصل از تلاقی هیبرید تجاری نگین و لاین B12­، دارای بیشترین تعداد میوه­های پارتنوکارپ بودند. کمترین تعداد گل نر در نتاج حاصل از تلاقی هیبرید نگین و لاین A10 مشاهده شد. نتاج حاصل از تلاقی هیبرید نگین با لاین A10، کمترین ساقه­های فرعی را داشتند. نتاج حاصل از تلاقی هیبرید نگین با لاین‌های B12، A10 دارای بیشترین درصد میوه­های پارتنوکارپ بودند و کمترین درصد میوه­های پارتنوکارپ در نتاج حاصل از تلاقی کولتیوار هیبرید نگین با لاین B10­دیده شد. بیشترین درصد گل­های ماده در نتاج حاصل از تلاقی هیبرید نگین و لاینB10 دیده شد و کمترین درصد گل­های ماده در نتاج حاصل از تلاقی هیبرید نگین با لاین B12دیده شد. امید می­رود در تحقیقات بعدی، با انجام تلاقی‌های برگشتی، برترین نتاج به­دست آمده از این تحقیق با لاین‌های منتخب، بتوان به لاین‌هایی مشابه لاین‌های منتخب با دارا بودن صفت پارتنوکارپی دست یافت.
کلیدواژه‌ها
ارزیابی نتاج؛ پارتنوکارپی؛ گرده افشانی؛ ماده گلی
مراجع
  1. Acciarri, N., Restaino, F., Vitelli, G., Perrone, D., Zottini, M., Pandolfini, T., Spena, A. & Rotino, G. (2002). Genetically modified parthenocarpic eggplants: improved fruit productivity under both greenhouse and open field cultivation. BMC Biotechnology, 2(4), 1-7.
  2. Biriukova, N. & Maslovskaya, E. (2004). The influence of cultivation conditions on parthenocarpy of cucumber. In: Proceedings of Cucurbitaceae, the 8th EUCARPIA, 12-17 July, Palacký University, Olomouc, Czech Republic, pp. 51-56.
  3. Boonkorkaew, P., Hikosaka, S. & Sugiyama, N. (2008). Effect of pollination on cell division, cell enlargement, and endogenous hormones in fruit development in a gynoecious cucumber. Scientia Horticulturae, 116 (1), 1-7.
  4. Byers, R. E., Baker, L. R., Sell, H. M., Herner, R. C. & Dilley D. R. (1972). Female flower induction on androecious cucumber (Cucumis sativus L.). Journal of the American Society of horticultural Science, 98, 197-199.
  5. Cantliffe, D. J. & Phatak, S. C. (1975). Parthenocarpic fruit development from grafted ovaries of Cucumis sativus L. Plant Physiology, 55(6), 1107-1109.
  6. Cantliffe, D. J. (1981). Alteration of sex expression due to change in temperature, light intensity, and photoperiod. Journal of the American Society for Horticultural Science, 106 (2), 133-136.
  7. De ponti, O. M. B. & Garretsen, F. (1976). Inheritance of parthenocarpy in pickling cucumbers (Cucumis sativus L.) and linkage with other characters. Euphytica, 25(1), 633-642.
  8. Dudley, J. W. & Moll, R. H. (1968). Interpretation and use of estimates of heritability and genetic variances in plant breeding. Crop Science, 9(3), 257-262.
  9. Farshadfar, E. (2000). Application of Quantitative Genetics in Plant Breeding. Vol. 1. Tagh- E – Bostan Press, Kermanshah. (in Farsi)
  10. Fazio, G., Staub, J. E. & Stevens, M. R. (2003). Genetic mapping and QTL analysis of horticultural traits in cucumber (Cucumis sativus L.) using recombinant inbred lines. Theoretical Applied Genetics, 107(5), 864-874.
  11. Fukushima, E., Matsuo, E. & Fujieda, K. (1968). Studies on the growth behaviour of cucumber (Cucumis sativus L.), Journal of the Faculty of Agriculture, 14(3), 349-366.
  12. Galun, E. (1959). Effects of gibberellic acid and naphthalene acetic acid on sex expression and some morphological characters in the cucumber plant. Phyton, 13, 1-8.
  13. Galun, E., Izhar, S. & Atsmon, D. (1965). Determination of relative auxin content in hermaphrodite and andromonoecious Cucumis sativus L. Plant Physiology, 40(2), 321-326.
  14. Gustafson, F. G. (1939). The cause of natural parthenocarpy. American Journal of Botany, 26 (3), 135-138.
  15. Hawthorn, L. R. & Wellington, R. (1930) Geneva, a greenhouse cucumber that develops fruit without pollination. New York State Agricultural Experiment Station, 2, 3–11.
  16. Kikuchi, K., Honda, I., Matsuo, S., Fukuda, M. & Saito, T. (2008). Stability of fruit set of newly selected parthenocarpic eggplant lines. Scientia Horticulturae, 115, 111-116.
  17. Kim, I. S. Okubo, H. & Fujieda, K. (1992). Genetic and hormonal control of parthenocarpy in cucumber (Cucumis sativus L.). Journal Faculty of Agriculture, 36 (3.4), 173-181.
  18. Knapp, S. J. (1998). Marker-assisted selection as a strategy for increasing the probability of selecting superior genotypes. Crop Science, 38(5), 1164-1174. 
  19. Kvasnikov, B. V., Rogova, N. T., Tarakanova, S. I. & Ignatov, S. I. (1970). Methods of breeding vegetable crops under the covered ground. Bulletin of applied botany, genetics and plant breeding, 42, 45-57.
  20. Lietzow, C. D., Zhu, H., Pandey, S., Havey, M. J. & Weng, Y. (2016). QTL mapping of parthenocarpic fruit set in North America processing cucumber. Theoretical Applied Genetics, 129 (12), 2387-2401.
  21. Mibus, H. & Tatlioglu, T. (2004). Molecular characterization and isolation of the F/f gene for femaleness in cucumber (Cucumis sativus L.). Theoretical Applied Genetics, 109(8), 1669-1676.
  22. Mitchell, W. D. & Wittwer, S. H. (1962). Chemical regulation of flower sex expression and vegetative growth in Cucumis sativus L. Science, 136(3519), 880-881.
  23. Moradipour, F., Olfati, J. A., Hamidoghli, Y., Sabouri, A. & Zahedi, B. (2016). General and specific  combining ability and heterosis for yield in cucumber fresh market lines. International Journal of Vegetable Science, 23(1), 1-9.
  24. Nematzadeh, Gh. A. & Kiani, Gh. (2011). Plant breeding (Classical methods). Vol. 1. Rice and Citrus Institute. (in Farsi)
  25. Nitsch, J. P. (1970). Hormonal factors in growth and development. In. A.C. Hulme (ed.), The Biochemistry of Fruits and their Products. Vol. II, Academic Press, London, pp. 427-472. 
  26. Olfati, J. A., Babalar, M., Kashi, A. K., Dadashipoor, A. & Shahmoradi, Kh. (2008). The effect of ammonium and molybdenum on nitrate concentration in two cultivars of greenhouse cucumbers. Journal of Horticultural science, 22(1), 67-77.
  27. Panti, K., Das Munshi, A. & Kanti Behera T. (2015). Inheritance of gynoecism in cucumber (Cucumis sativus L.) using genotype gbs-1 as gynoecious parent. Genetika, 47 (1), 349-356.
  28. Pike, L. M. & Peterson, C. E. (1968). Inheritance of Pathenocarpy in the Cucumber (Cucumis sativus L.). Euphytica, 18(1), 101-105.
  29. Rudich, J. Baker, L. R. & Sell, H. M. (1977). Parthenocarpy in Cucumis sativus L. as affected by genetic parthenocarpy, thermo-photoperiod, and femaleness. Journal of the American Society of Horticultural Science, 102(2), 225-228.
  30. Rudich, J., Halevy, A. H. & Kedar, N. (1972). The level of phytohormones in monoecious and gynoecious cucumbers as affected by photoperiod and ethephon. Plant Physiology, 50(5), 585-590.
  31. Serquen, F. C., Bacher, J. & Staub, J. E. (1997). Genetic analysis of yield components in cucumber at low plant density. Journal of American Society of Horticultural Science, 122(4), 522-528.
  32. Sharma, J. R. (2008). Statistical and biometrical techniques in plant breeding. New age international publisher. New dehli. 432 pp.
  33. Spena, A. & Leonardo Rotina, G. (2001). Parthenocarpy. In: Current Trends in the Embryology of Aniosperms. (pp. 435-450.) Kluwer Academic Publishers.
  34. Staub, J. E., Bacher, J. & Crubaugh L. (1995). Problems associated with the selection of determinate cucumber (Cucumis sativus L.) plant types in a multiple lateral background. Cucurbit Genetics Cooperative, 18, 7-9.
  35. Sun, Z., Staub, J. E., Chung, S. M. & Lower, R. L. (2006a). Identification and comparative analysis of quantitative trait loci associated with parthenocarpy in processing cucumber. Plant Breeding, 125 (3), 281-287.
  36. Sun, Z., Lower, R. L. & Staub, J. E. (2006b). Analysis of generation and components of variance for parthenocarpy in cucumber (Cucumis sativus L.). Plant breeding, 125(3), 281-287.
  37. Takeno, K. & Ise, H. (1992). Parthenocarpic fruit set and endogenous indole-3-acetic acid content in ovary f Cucumis sativus L., Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 60(4), 941-946.
  38. Varoquaux, F. Blanvillain, R. Delseny, M. & Gallois, P. (2000). Less is better: new approaches for seedless fruit production. Trends Biotechnology, 18 (6), 233-242.
  39. Wehner, T. C. (1989). Breeding for improved yield in cucumber. Vol. 6. Timber Press.
  40. Wu, Z., Zhang, T., Li, L., Xu, J., Qin, X., Zhang, T., Cui, L., Lou, Q., Li J. & Chen, J. F. (2016). Identification of a stable major-effect QTL (Parth 2.1) controlling parthenocarpy in cucumber and associated candidate gene analysis via whole genome re-sequencing. BMC Plant Biology, 16(182), 1-14.
  41. Yan, L. Y., Lou, L. N., Feng, Z. H., Lou, Q. F. & Chen, J. F. (2010). Inheritance of parthenocarpy in monoecious cucumber (Cucumis sativus L.) under different eco-environments. Chinese Journal of Applied Ecology, 21(1), 61-66.
  42. Yan, L.Y., Lou, L. N., Lou, Q. F. & Chen, J. F. (2008). Inheritance of parthenocarpy in gynoecious cucumber. Acta Horticulturae Sinica, 35 (10), 1441-1446.
  43. Yoshida, T., Matsunaga, S. & Saito T. (2001). Effect of seasonal condition and genotype on fully developed parthenocarpy in eggplant. Journal of the Japanese Society for Horticultural Science, 70, 388. (in Japanese)
  44. Young, L. W., Wilen, R. W. & Bonham-Smith, P. C. (2004) High temperature stress of Brassica napus during flowering reduces micro- and mega-gametophyte fertility, induces fruit abortion, and disrupts seed production. Journal of Experimental Botany, 55(396), 485-495.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 369
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 515


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب