![سامانه نشر مجلات علمی دانشگاه تهران](./data/logo.png)
تعداد نشریات | 162 |
تعداد شمارهها | 6,578 |
تعداد مقالات | 71,078 |
تعداد مشاهده مقاله | 125,707,003 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 98,941,289 |
تصویربرداری در سه جهت ساختار کاغذ با استفاده از میکروسکوپ روبشی همکانون لیزری | ||
نشریه جنگل و فرآورده های چوب | ||
دوره 77، شماره 1، خرداد 1403، صفحه 73-84 اصل مقاله (1.28 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jfwp.2024.374304.1288 | ||
نویسندگان | ||
حافظه شیخ علی؛ امیر خسروانی* | ||
گروه علوم صنایع چوب و کاغذ، دانشکدة منابع طبیعی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران. | ||
چکیده | ||
کاغذ، ورقه ای است پهن و نازک که از تجمع و درهم رفتگی الیاف، رشته ها و اجزای سلولزی تهیه می شود و در ابعاد مختلفی برای کاربردهای متنوعی مورد استفاده قرار میگیرد. پس از بررسی روش های رنگ آمیزی فلورسنت الیاف سلولزی در پژوهش های پیشین، این تحقیق با هدف مطالعة ساختار میکروسکوپی ورقه و اجزای آن در سه جهت کاغذ (طول، عرض و عمق) با استفاده از میکروسکوپ روبشی هم کانون لیزری (کانفوکال) انجام شد. همچنین، چگونگی مطالعة پراکنش الیاف و اجزای سلولزی در ساختار کاغذ در سه بعد آن با استفاده از خاصیت فلورسنت و روش بکارگرفته شده در میکروسکوپ کانفوکال مورد بررسی قرار گرفت. اجزای سلولزی ساختار کاغذ پس از تحریک در طول موج 405 نانومتر، بازتابش فلورسنت به رنگ سبز از ناحیة نور مرئی (500-420 نانومتر) از خود نشان دادند. مطالعة میکروسکوپی با استفاده از میکروسکوپ روبشی همکانون لیزری (کانفوکال)، علاوه بر بررسی پراکنش اجزاء بهصورت دوبعدی، بهصورت قابل توجهی، گستره ای از تصاویر متنوع در خصوص نحوة قرارگیری الیاف و اجزای سلولزی در عمق کاغذ (جهت ضخامت) را بدون نیاز به لایه لایه کردن کاغذ، به نمایش گذاشت. تهیة تصاویر در جهت ضخامت (عمق) کاغذ، در دو وزن پایة 20 و 60 گرم بر مترمربع بدون مشکل انجام شد. در این تصاویر، تغییر تجمع الیاف و اجزاء آن در عمق قابل بررسی بود. بنابراین، می توان میکروسکوپ روبشی همکانون لیزری را بهعنوان ابزار مناسبی برای مطالعة پراکنش الیاف و اجزاء نشاندار شده در سه بعد کاغذ معرفی نمود. | ||
کلیدواژهها | ||
ساختار کاغذ؛ فلورسنت؛ میکروسکوپ روبشی همکانون لیزری (کانفوکال)؛ نشاندار کردن | ||
مراجع | ||
[1] Azizi Samir, M.A.S., Alloin, F., & Dufresne, A. (2005). Review of recent research into cellulosic whiskers, their properties and their application in nanocomposite field. Biomacromolecules, 6(2), 612-626. [2] Jose, M. (2013). The study of cell wall structure and cellulose-cellulase interactions through fluorescence microscopy. Cellulose, 20, 2291-2309. [3] Hubbe, A. M., Chandra, R.P., Dogu, D., & Velzen, S.T.J. (2019). Analytical staining of cellulosic materials: A Review. BioResources, 14(3), 7387-7464. [4] Ding, Q., Han, W., Li, X., Jiang, Y., & Zhao, C. (2020). New insights into the autofluorescence properties of cellulose/ Nanocellulose. Scientific Reports, 10, 21387-21395. [5] Olmstead, J.A., Zhu, J.A., & Gray, D.G. (1995). Fluorescence spectroscopy of mechanical pulps III: Effect of chlorite delignification. Canadian Journal of Chemistry, 73(11), 1955-1959. [6] Hobisch, M.A., Bossu, J., Mandlez, D., Spirk, S., Eckhart, R., & Bauer, W. (2019). Localization of cellulose fines in paper via fluorescent labeling. Cellulose, 26, 6933-6942. [7] Coletta, V.C., Rezende, C.A., da Conceição, F.R., Polikarpov, I., & Guimarães, F.E.G. (2013). Mapping the lignin distribution in pretreated sugarcane bagasse by confocal and fluorescence lifetime imaging microscopy. Biotechnology for Biofuels, 6(1), 43. [8] Stockert, J.C., and Blázquez-Castro., A. (2017). Fluorescence Microscopy in Life Sciences. Bentham Science Publishers, Sharjah, UAE, ISBN 978-1-68108-519-7. [9] Hell, S.W., Stelzer, E.H.K., Lindek, S., & Cremer, C. (1994). Confocal microscopy with an increased detection aperture: Type-B 4Pi confocal microscopy. Optics Letters, 19(3), 222-224. [10] Vicidomini, G. (2005). Image Formation in Fluorescence Microscopy. In: Evangelista, V., Barsanti, L., Passarelli, V., & Gualtieri, P. (eds) From Cells to Proteins: Imaging Nature across Dimensions. NATO Security through Science Series. Springer, Dordrecht. https://doi.org/10.1007/1-4020-3616-7_18. [11] Ding, Q., Zeng, J., Wang, B., Gao, W., Chen, K., Yuan, Z., Xu, J., & Tang, D. (2018). Effect of retention rate of fluorescent cellulose nanofibrils on paper properties and structure. Carbohydrate Polymers, 186, 73-81. [12] Sheikhali, H., & Khosravani, A. (2023). Fluorescent labeling methods by rhodamine B isothiocyanate in cellulose materials. Iranian Journal of Wood and Paper Industries, 13(4), 405-417. (In Persian) [13] Donaldson, L. (2020). Autofluorescence in plants, Molecules, 25(10), 2393. [14] Liukko, S., Tasapuro, V., & Liitiä., T. (2007). Fluorescence spectroscopy for chromophore studies on bleached kraft pulps. Holzforschung, 61(5), 509-515. [15] Olmstead, J.A., & Gray, D.G. (1993). Fluorescence emission from mechanical pulp sheets. Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry, 73(1), 59-65. [16] Castellan, A., Ruggiero, R., Frollini, E., Ramos, L.A., & Chirat, C. (2007). Studies on fluorescence of cellulosics. Holzforschung, 61, 504-508. [17] Valeur, B., & Berberan-Santos, M.N. (2013). Molecular Fluorescence: Principles and Applications (2nd ed.), Wiley-VCH. [18] Wang, S., Gao, W., Chen, K., Zeng, J., Xu, J., & Wang, B. (2018). An effective method for determining the retention and distribution of cellulose nanofibrils in paper handsheets by dye labeling. Tappi Journal, 17(3), 157-164. [19] Whipple, W.L., & Maltesh, C. (2000). Visualizing flocculation and adsorbtion processes in papermaking using fluorescence microscopy. Langmuir, 16(7), 3124-3132. [20] Ding, Q., Zeng, J., Wang, B., Gao, W., Chen, K., Yuan, Z. & Xu, J. (2017). Influence of binding mechanism on labeling efficiency and luminous properties of fluorescent cellulose nanocrystals. Carbohydrate Polymers, 175, 105-112. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 105 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 118 |