تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,113,562 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,217,338 |
تأثیر محیط کشت و هورمونهای مختلف بر پرآوری و معماری ریشه گیاه دارویی زوفا (Hyssopus officinalis L.) در شرایط درونشیشهای | ||
به زراعی کشاورزی | ||
مقاله 11، دوره 26، شماره 2، خرداد 1403، صفحه 409-421 اصل مقاله (1014.39 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jci.2024.363422.2837 | ||
نویسندگان | ||
محمد سادات حسینی* 1؛ ناصر عسکری2 | ||
1گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران. | ||
2استادیار، گروه باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران | ||
چکیده | ||
هدف: مطالعه حاضر بهمنظور بررسی اثر نوع محیطهای کشت مختلف شامل MS، WPM و B5 و هورمون بنزیل آمینوپورین بر خصوصیات پرآوری و همچنین اثر غلظتهای مختلف هورمونهای ایندولبوتیریکاسید و ایندولاستیکاسید بر ریشهزایی گیاه زوفا انجام شد. روش پژوهش: آزمایشها بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار در آزمایشگاه کشت بافت دانشکده کشاورزی دانشگاه جیرفت انجام شد. بهمنظور تولید گیاهچههای استریل بذرهای جمعآوریشده از مناطق کوهستانی استان کرمان بر روی محیط کشت MS کاشته شد. ریزنمونههای تکگره بر روی محیطهای کشت MS، WPM و B5 با ترکیب هورمونی بنزیل آمینوپورین با غلظتهای صفر، 1 و 2 میلیگرم بر لیتر قرار گرفتند. برای تولید ریشه شاخسارههای تولیدشده بر روی محیط کشت MS با ترکیب هورمونی ایندولبوتیریکاسید و ایندولاستیکاسید با غلظتهای 5/0 و 1 میلیگرم در لیتر قرار گرفتند. در نهایت معماری ریشههای تولیدشده با استفاده از نرمافزار GiaRoots مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. یافتهها: طبق نتایج پژوهش بهترین ضریب پرآوری در محیط کشت MS بههمراه غلظت 2 میلیگرم بر لیتر از هورمون بنزیل آمینوپورین بهدست آمد. همچنین نتایج مربوط به آنالیز معماری ریشه نیز نشان داد بهترین تیمار ریشهزایی استفاده از هورمون ایندولبوتیریکاسید با غلظت 1 میلیگرم بر لیتر بود. نتیجهگیری: نتایج مربوط به سازگاری نشان داد که 85 درصد از گیاهان منتقلشده به گلخانه زنده ماندند. | ||
کلیدواژهها | ||
تنظیمکننده رشد؛ ریزازدیادی؛ کشت بافت؛ گیاه دارویی | ||
مراجع | ||
منابععلیزاده، مرتضی و حسینی، بهمن (1392). بررسی اثر نوع توده و تیمار هورمونی BAP بر باززایی درونشیشه ای گیاه دارویی زوفا (Hyssopus officinalis L.). نشریه علوم باغبانی. 27 (2)، 207-201.
ReferencesAlizadeh, M., & Hosseini, B. (2013). Effect of population type and BAP treatments on In vitro regeneration of Hyssop (Hyssopus officinalis L.). Journal of Horticultural Science, 27(2), 201-207. (In Persian). Babich, O., Sukhikh, S., Pungin, A., Ivanova, S., Asyakina, L., & Prosekov, A. (2020). Modern trends in the in vitro production and use of callus, suspension cells and root cultures of medicinal plants. Molecules, 25(24), 5805. Borrelli, F., Pagano, E., Formisano, C., Piccolella, S., Fiorentino, A., Tenore, G. C., & Pacifico, S. (2019). Hyssopus officinalis subsp. aristatus: An unexploited wild-growing crop for new disclosed bioactives. Industrial Crops and Products, 140, 111594. Cardoso, J. C., Oliveira, M. E., & Cardoso, F. D. C. (2019). Advances and challenges on the in vitro production of secondary metabolites from medicinal plants. Horticultura Brasileira, 37, 124-132. Džamić, A. M., Soković, M. D., Novaković, M., Jadranin, M., Ristić, M. S., Tešević, V., & Marin, P. D. (2013). Composition, antifungal and antioxidant properties of Hyssopus officinalis L. subsp. pilifer (Pant.) Murb. essential oil and deodorized extracts. Industrial Crops and Products, 51, 401-407. Galkovskyi, T., Mileyko, Y., Bucksch, A., Moore, B., Symonova, O., Price, C. A., & Weitz, J. S. (2012). GiA Roots: software for the high throughput analysis of plant root system architecture. BMC plant biology, 12(1), 1-12. Gamborg, O. L., Miller, R., & Ojima, K. (1968). Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental cell research, 50(1), 151-158. Hosseini, B., Alizadeh, M., Hassani, A., Jafari, M., & Rahimi, A. (2016). High-frequency in vitro direct shoot regeneration from nodal explants of hyssop plant (Hyssopus officinalis L.). Journal of Medicinal plants and By-product, 5(2), 187-193. Hristova, Y., Wanner, J., Jirovetz, L., Stappen, I., Iliev, I., & Gochev, V. (2015). Chemical composition and antifungal activity of essential oil of Hyssopus officinalis L. from Bulgaria against clinical isolates of Candida species. Biotechnology & Biotechnological Equipment, 29(3), 592-601. Judžentien ̇e, A. (2016). Hyssop (Hyssopus officinalis L.) Oil. In Essential Oils in Food Preservation, Flavor and Safety. Edited by Preedy, V. London: Academic Press, Elsevier. Kulpa, D., Wesołowska, A., & Jadczak, P. (2018). Micropropagation and composition of essentials oils in garden thyme (Thymus vulgaris L.). Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 46(2), 525-532. Lloyd, G., & McCown, B. (1980). Commercially-feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Combined Proceedings, International Plant Propagators' Society, 30, 421-427. Ma, X., Ma, X., Ma, Z., Sun, Z., Yu, W., Wang, J., & Ding, J. (2014). The effects of uygur herb Hyssopus officinalis L. on the process of airway remodeling in asthmatic mice. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2014, 710870. Mićović, T., Topalović, D., Živković, L., Spremo-Potparević, B., Jakovljević, V., Matić, S., & Maksimović, Z. (2021). Antioxidant, antigenotoxic and cytotoxic activity of essential oils and methanol extracts of Hyssopus officinalis L. subsp. aristatus (Godr.) Nyman (Lamiaceae). Plants, 10(4), 711. Monfort, L. E. F., Bertolucci, S. K. V., Lima, A. F., de Carvalho, A. A., Mohammed, A., Blank, A. F., & Pinto, J. E. B. P. (2018). Effects of plant growth regulators, different culture media and strength MS on production of volatile fraction composition in shoot cultures of Ocimum basilicum. Industrial Crops and Products, 116, 231-239. Monfort, L. E. F., Bertolucci, S. K. V., Lima, A. F., de Carvalho, A. A., Mohammed, A., Blank, A. F., & Pinto, J. E. B. P. (2018). Effects of plant growth regulators, different culture media and strength MS on production of volatile fraction composition in shoot cultures of Ocimum basilicum. Industrial Crops and Products, 116, 231-239. Morinaka, H., Coleman, D., Sugimoto, K., & Iwase, A. (2023). Molecular mechanisms of plant regeneration from differentiated cells: approaches from historical tissue culture systems. Plant and Cell Physiology, 64(3), 297-304. Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia plantarum, 15(3), 473-497. Nagella, P., & Murthy, H. N. (2010). Establishment of cell suspension cultures of Withania somnifera for the production of withanolide A. Bioresource Technology, 101(17), 6735-6739. Nanova, Z., Slavova, Y., Nenkova, D., & Ivanova, I. (2007). Microclonal Propagation propagation of Hyssop (Hyssopus officinalis L.). Bulgarian journal of agricultural science, 13(2), 213. Nanova, Z., Slavova, Y., Nenkova, D., & Ivanova, I. (2007). Microclonal Propagation of Hyssop (Hyssopus officinalis L.) Bulgarian journal of agricultural science, 13(2), 213-219. Nathiya, S., Pradeepa, D., Devasena, T., & Senthil, K. (2013). Studies on the effect of sucrose, light and hormones on micropropagation and in vitro flowering of Withania somnifera Var. JAWAHAR-20. The Journal of Animal and Plant Sciences, 23(5), 1391-1397. Nazir, U., Gul, Z., Shah, G. M., & Khan, N. I. (2022). Interaction effect of auxin and cytokinin on in vitro shoot regeneration and rooting of endangered medicinal plant Valeriana jatamansi jones through tissue culture. American Journal of Plant Sciences, 13(2), 223-240. Otroshy, M., & Moradi, K. (2011). Micropropagation of medicinal plant Dracocephalum kotschyi Boiss. via nodal cutting technique. Journal of Medicinal Plants Research, 5(25), 5967-5972. Salehi, A., & Setorki, M. (2017). Effect of Hyssopus officinalis essential oil on chronic stress-induced memory and learning impairment in male mice. Bangladesh Journal of Pharmacology, 12(4), 448-454. Schuchovski, C.S., & Biasi, L.A. (2019). In vitro establishment of ‘Delite’rabbiteye blueberry microshoots. Horticulturae, 5(1), 24. Shoja, H., & Shishavani, H. (2021). Effects of different hormonal treatments on growth parameters and secondary metabolite production in organ culture of Hyssopus officinalis L. BioTechnologia, 102(1), 33-41. Slimani, C., Sqalli, H., Rais, C., Wafae, S., Lazraq, A., El Ghadraoui, L., & Echchgadda, G. (2020). Improvement of germination rate and in vitro multiplication of Lavandula angustifolia. Journal of Applied Biology and Biotechnology, 8(2), 52-57. Venditti, A., Bianco, A., Frezza, C., Conti, F., Bini, L. M., Giuliani, C., & Maggi, F. (2015). Essential oil composition, polar compounds, glandular trichomes and biological activity of Hyssopus officinalis subsp. aristatus (Godr.) Nyman from central Italy. Industrial crops and products, 77, 353-363. Vlase, L., Benedec, D., Hanganu, D., Damian, G., Csillag, I., Sevastre, B., & Tilea, I. (2014). Evaluation of antioxidant and antimicrobial activities and phenolic profile for Hyssopus officinalis, Ocimum basilicum and Teucrium chamaedrys. Molecules, 19(5), 5490-5507. Xiao, Y., Niu, G., & Kozai, T. (2011). Development and application of photoautotrophic micropropagation plant system. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 105, 149-158. Zayova, E., Geneva, M., Stancheva, I., Dimitrova, L., Petrova, M., Hristozkova, M., & Salamon, I. (2018). Evaluation of the antioxidant potential of in vitro propagated hyssop (Hyssopus officinalis L.) with different plant growth regulators. Medicinal Plants-International Journal of Phytomedicines and Related Industries, 10(4), 295-304. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 237 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 163 |