سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,502
تعداد مشاهده مقاله124,117,541
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,223,127
کلانتری حصاری, علی, اسدی, محمدرضا, بابائی, محمد. (1401). اثرات سطوح پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و خصوصیات ریخت سنجی بافتی ژژنوم بلدرچین های ژاپنی. , 24(1), 47-58. doi: 10.22059/jap.2022.331295.623641
علی کلانتری حصاری; محمدرضا اسدی; محمد بابائی. "اثرات سطوح پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و خصوصیات ریخت سنجی بافتی ژژنوم بلدرچین های ژاپنی". , 24, 1, 1401, 47-58. doi: 10.22059/jap.2022.331295.623641
کلانتری حصاری, علی, اسدی, محمدرضا, بابائی, محمد. (1401). 'اثرات سطوح پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و خصوصیات ریخت سنجی بافتی ژژنوم بلدرچین های ژاپنی', , 24(1), pp. 47-58. doi: 10.22059/jap.2022.331295.623641
کلانتری حصاری, علی, اسدی, محمدرضا, بابائی, محمد. اثرات سطوح پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و خصوصیات ریخت سنجی بافتی ژژنوم بلدرچین های ژاپنی. , 1401; 24(1): 47-58. doi: 10.22059/jap.2022.331295.623641

اثرات سطوح پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و خصوصیات ریخت سنجی بافتی ژژنوم بلدرچین های ژاپنی

تولیدات دامی
مقاله 5، دوره 24، شماره 1، فروردین 1401، صفحه 47-58    اصل مقاله (1.28 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jap.2022.331295.623641
نویسندگان
علی کلانتری حصاری* 1؛ محمدرضا اسدی2؛ محمد بابائی3
1گروه پاتوبیولوژی، دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران.
2عضو هیأت علمی موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران.
3گروه علوم درمانگاهی، دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران.
چکیده
اثر سطوح مختلف پروبیوتیک بتاپلاس بر عملکرد رشد و ریخت شناسی بافتی ژژنوم بلدرچین ژاپنی با استفاده از تعداد 288 قطعه جوجه بلدرچین ژاپنی، با شش تیمار چهار تکرار و 12 پرنده در هر تکرار در قالب طرح کاملاً تصادفی از سن یک تا 42 روزگی بررسی شد. تیمارها شامل: گروه شاهد (بدون افزودنی)؛ سه جیره حاوی سطوح 0/5، یک و 1/5 گرم در کیلوگرم جیره پروبیوتیک بتاپلاس؛ جیره با کمبود پروتئین، و جیره با کمبود پروتئین و حاوی یک گرم در کیلوگرم بتاپلاس بود. مصرف خوراک، وزن بدن و افزایش وزن بدن به صورت هفتگی اندازه گیری و ضریب تبدیل محاسبه شد. در 42 روزگی دو پرنده از هر تکرار به طور تصادفی انتخاب، کشتار و صفات مربوط به تفکیک لاشه مورد سنجش قرار گرفت. به منظور بررسی صفات ریخت‌سنجی بافت روده، از ژژنوم نمونه برداری شد. استفاده از پروبیوتیک بتاپلاس در میزان یک گرم در کیلوگرم جیره، مصرف خوراک، افزایش وزن و ضریب تبدیل و برخی ریخت‌سنجی ژژنوم را بهبود داد (0/05> p). در پرندگانی که با جیره حاوی سطح 1/5 گرم بر کیلوگرم پروبیوتیک بتاپلاس تغذیه شدند ضخامت پرز، قطر کریپت و تعداد سلول های جامی کاهش یافت (0/05> p). بر اساس نتایج حاصل، استفاده از بتاپلاس در جیره در سطح یک میلی گرم بر کیلوگرم، فراسنجه های عملکرد رشد و بافتی ژژنوم را در بلدرچین ژاپنی بهبود می بخشد.
کلیدواژه‌ها
بافت روده؛ بلدرچین؛ پروبیوتیک؛ عملکرد؛ لاشه
مراجع
  1. Angel CR (1991) Long segment filamentous organism observed in poults experimentally infected with stunting syndrome agent. Avian Diseases, 34: 994-1001.
  2. Babazadeh D, Vahdatpour T, Nikpiran H, Jafargholipour MA and Vahdatpour S (2011) Effects of probiotic, prebiotic and synbiotic intake on blood enzymes and performance of Japanese quails (Coturnix japonica). Indian Journal of Animal Sciences, 81: 870–874.
  3. Bancroft JD and Camble M (2013) Theory and practice of Histological Technique. 5th edition. Churchill livingstone ednburgh, London, New York, Philadelphia, Oxford, Sydney and Torento. 179-220.
  4. Baurhoo B, Ferket PR and Zhao X (2009) Effects of diets containing different concentrations of mannanoligosaccharide or antibiotics on growth performance, intestinal populations, and carcass parameters of broilers. Poultry Science, 88: 2262-2272.
  5. Brumel JH and Finlay BB (2000) Bacterial adherence, colonization, and invasion of mucosal surfaces. In Virulence Mechanisms of Bacterial Pathogens. In: Brogden, K.A., Roth, J.A., Stanton, T.B., Bolin, C.A., Minion, F.C., Wannemuehler, M.J. (Eds), ASM Press, Washingto DC, pp. 3-17.
  6. Collins JK, O'sullivan GC, Thornton GM and O'sullivan MM (2007) Probiotic strains from Lactobacillus salivarius and antimicrobial agents obtained therefrom. International Dairy Journal, 7: 65-45.
  7. Duke GE (1986) Avian physiology. 4th Springer verlage. N.Y, pp. 269-288.
  8. Gunal M, Yayli G, Kaya O, Karahan N and Sulak O (2006) The effects of antibiotic growth promoter, probiotic or organic acid supplementation on performance, intestinal microflora and tissue of broilers. International Journal of Poultry Science, 5(2): 149-155.
  9. Hampson DJ (1986) Alteration in piglet small intestinal structure at weaning. Research in Veterinary Science, 40: 19-40.
  10. Jin LZ, Ho YW, Abdullah N and Jalaudin S (1996). Influence of dried Bacillus subtilis and lactobacilli cultures on intestinal microflora and performance in broilers. Asian- Australian Journal of Animal Science, 9: 99-107.
  11. Leeson S and Summers JD (2008) Protein and amino acids in Scott's Nutrition of the Chicken. 3rd edition. pp. 126-127.
  12. Liu JR, Lai SF and Yu B (2007) Evaluation of an intestinal Lactobacillus reuteri strain expressing rumen fungal xylanase as a probiotic for broiler chickens fed on a wheat-bassed diet. British Poultry Science, 48: 507-514.
  13. Mollaei Kandellosi MR and Mirzaeei Aghjeh Gheshlagh F (2013) Effects of Probiotic Saccharomyces cervisia and Organic Acids on Performance and Small Intestinal Morphology in Broiler Chickens. Research on Animal Production (Scientific and Research), 3(6): 25-34 (In Persian)
  14. Montagne L, Pluske JR and Hampson DJ (2003) A review of interactions between dietary fibre and the intestinal mucosa, and their consequences on digestive health in young non-ruminant animals. Animal Feed Science Technology, 108: 95-117.
  15. Navidshad B, Adibmoradi M and Pirsaraei ZA (2010) Effects of dietary supplementation of spergillus originated prebiotic (Fermacto) on performance and small intestinal morphology of broiler chickens fed diluted diets. Italian Journal of Animal Science, 9: 55-
  16. Ouwehand AC, Derrien M, de Vos W, Tiihonen K and Rautonen N (2005) Prebiotics and other microbial substrates for gut functionality. Current Opinion in Biotechnology, 16: 212-217.
  17. Rahimi S and Karimi K (2005) Effect of various levels of probiotic on morphology of small intestinal mucosa in broiler chicks. 14th World Vet. Poult. Congress, Istanbul, Turkey. World’s Poultry Science Association, Turkish Branch, Ankara, Turkey.
  18. Reynolds KL, Cloft SE and Wong EA (2020) Changes with age in density of goblet cells in the small intestine of broiler chicks. Poultry Science, 99(5): 2342-2348.
  19. Sandikci M, Eren U, Onol AG and Kum S (2004) The effect of heat stress and the use of Saccharomyces cerevisiae or (and) bacitracun zinc against heat stress on the intestinal mucosa in quails. Revue de Médecine Vétérinaire, 155(11): 552-556.
  20. Smirnov A, Sklan D and Uni Z (2004) Mucin dynamics in the chick small intestine are altered by starvation. The Journal of nutrition, 134(4): 736-742.
  21. Teshfam M, Rahimi S and Karimi K (2004) Effect of various levels of Probiotic on Morphology of Intestinal Mucosa in Brioler chicks. Journal of Tehran veterinary faculty, 60: 205-211.
  22. Vali N, Edriss MA and Rahmani HR (2005) Comparison between hatching of two quail stains. Pakistan Journal of Biological Science, 8: 1062-1063.
  23. Williams JA, Su HS, Bernards A, Field J and Sehgal A (2001) A circadian output in Drosophila mediated by Neurofibromatosis-1 and Ras/MAPK. Science, 293(5538):2251-2256.
  24. Zeweil HS and Ismail FSA (1998) Effect of probiotic or herbal feed additives on the production and egg quality of laying Japanese quail hens. The Journal of Agricultural Science, 23: 1039-1048.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 466
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 42


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب