سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,573
تعداد مقالات71,037
تعداد مشاهده مقاله125,517,333
تعداد دریافت فایل اصل مقاله98,777,764
داودی, زهرا, صارمی, حسین, احمد زاده, مسعود, ملیحی پور, علی. (1399). اثرات باکتری Bacillus velezensis UTB96 در کاهش توکسین زرالنون ناشی از قارچ Fusarium graminearum جدا شده از گندم. , 51(2), 275-285. doi: 10.22059/ijpps.2020.298702.1006931
زهرا داودی; حسین صارمی; مسعود احمد زاده; علی ملیحی پور. "اثرات باکتری Bacillus velezensis UTB96 در کاهش توکسین زرالنون ناشی از قارچ Fusarium graminearum جدا شده از گندم". , 51, 2, 1399, 275-285. doi: 10.22059/ijpps.2020.298702.1006931
داودی, زهرا, صارمی, حسین, احمد زاده, مسعود, ملیحی پور, علی. (1399). 'اثرات باکتری Bacillus velezensis UTB96 در کاهش توکسین زرالنون ناشی از قارچ Fusarium graminearum جدا شده از گندم', , 51(2), pp. 275-285. doi: 10.22059/ijpps.2020.298702.1006931
داودی, زهرا, صارمی, حسین, احمد زاده, مسعود, ملیحی پور, علی. اثرات باکتری Bacillus velezensis UTB96 در کاهش توکسین زرالنون ناشی از قارچ Fusarium graminearum جدا شده از گندم. , 1399; 51(2): 275-285. doi: 10.22059/ijpps.2020.298702.1006931

اثرات باکتری Bacillus velezensis UTB96 در کاهش توکسین زرالنون ناشی از قارچ Fusarium graminearum جدا شده از گندم

دانش گیاهپزشکی ایران
دوره 51، شماره 2، دی 1399، صفحه 275-285    اصل مقاله (383.46 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2020.298702.1006931
نویسندگان
زهرا داودی* 1؛ حسین صارمی1؛ مسعود احمد زاده1؛ علی ملیحی پور2
1دانشگاه تهران
2استادیار، بخش تحقیقات غلات، مؤسسه تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، استان البرز، ایران
چکیده
گندم در معرض آلودگی به بیمارگرهای قارچی و مایکوتوکسین‌های تولیدی آنها قرار دارد. در این بین، توکسین استروژنیک زرالنون یکی از معروف‌ترین توکسین‌هایی است که توسط قارچ عامل بیماری بلایت فوزاریومی سنبله گندم (گونه‌Fusarium graminearum) در گندم تولید می‌شود. آلوده شدن گندم و محصولات غذایی بدست آمده از آن به زرالنون و خطرات ناشی از آن برای سلامت انسان و دام سبب شده است تمهیدات مختلف فیزیکی، شیمیایی و بیولو‌ژیکی برای کاهش میزان آلودگی به این توکسین اتخاذ شود. جدایه F. graminearum تهیه شده از کلکسیون آزمایشگاه بخش تحقیقات غلات موسسه تحقیقات اصلاح و تهیه نهال و بذر به منظور انجام این پژوهش استفاده شد. بر اساس روش کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC)، جدایه F. graminearum مورد بررسی توانایی تولید توکسین زرالنون را دارا بود. نتایج آزمایشات بیوکنترلی و کشت متقابل قارچ F. graminearum و جدایه باکتری Bacillus velezensis UTB96 نشان داد که این جدایه از باکتری منجر به کنترل رشد قارچ تا 40 درصد می‌گردد. همچنین، ترکیبات خارج سلولی بدست آمده از این جدایه باکتری توانایی کنترل قارچ را تا 5/54 درصد داشت. بعلاوه، این باکتری توانایی کاهش زرالنون تا 79 درصد را دارا بود. برعکس، جدایه باکتری Bacillus subtilis UTB1 در کاهش میزان زرالنون در شرایط آزمایشگاه در سطح یک درصد تفاوت معنی داری نشان نداد. با توجه به نتایج بدست آمده از این تحقیق، جدایه باکتری Bacillus velezensis UTB96 توانایی کنترل قارچ عامل بلایت فوزاریومی سنبله گندم و همچنین کاهش میزان توکسین زرالنون را دارا می‌باشد، لذا می‌تواند بعنوان عامل بیوکنترل مورد بررسی بیشتر قرار گیرد.
کلیدواژه‌ها
گندم؛ توکسین؛ زرالنون؛ عامل بیوکنترل
مراجع
  1. Ahlberg, S. H., Joutsjoki, V., & Korhonen, H. J. (2015). Potential of lactic acid bacteria in aflatoxin risk mitigation. International Journal of Food Microbiology, 207, 87-102.
  2. Alberts, J. F., Engelbrecht, Y., Steyn, P. S., Holzapfel, W. H., & Van Zyl, W. H. (2006). Biological degradation of aflatoxin B1 by Rhodococcus erythropolis cultures. International Journal of Food Microbiology, 109(1-2), 121-126.
  3. Broadbent, P., & KF, B. (1977). Effect of Bacillus spp. on increased growth of seedlings in steamed and in nontreated soil.
  4. Cho, K. J., Kang, J. S., Cho, W. T., Lee, C. H., Ha, J. K., & Song, K. B. (2010). In vitro degradation of zearalenone by Bacillus subtilis. Biotechnology Letters, 32(12), 1921-1924.
  5. Cotty, P. J., & Bhatnagar, D. (1994). Variability among atoxigenic Aspergillus flavus strains in ability to prevent aflatoxin contamination and production of aflatoxin biosynthetic pathway enzymes. Applied and Environmental Microbiology, 60(7), 2248-2251.
  6. Desjardins, A. E. (2006). Fusarium mycotoxins: chemistry, genetics, and biology. American Phytopathological Society (APS Press).
  7. Dunlap, C. A., Schisler, D. A., Price, N. P., & Vaughn, S. F. (2011). Cyclic lipopeptide profile of three Bacillus subtilis strains; antagonists of Fusarium head blight. The Journal of Microbiology, 49(4), 603.
  8. EFSA. (2011). (http://onlinelibrary.wiley.com/doi/10.2903/j.efsa.2011.2197/epdf).
  9. Farzaneh, M., Ahmadzadeh, M., Gasempour, A., Mirabolfathy, M., Javan-Ninkkhah, M., & Sharifi-Tehrani, A. (2011). survey on degradation mechanism of Bacillus subtilis in aflatoxin produced by Aspergillus flavous. Plant Protection Science, 42(2), 191-198.(in farsi)
  10. Farzaneh, M., Shi, Z. Q., Ghassempour, A., Sedaghat, N., Ahmadzadeh, M., Mirabolfathy, M., & Javan-Nikkhah, M. (2012). Aflatoxin B1 degradation by Bacillus subtilis UTBSP1 isolated from pistachio nuts of Iran. Food Control, 23(1), 100-106.
  11. Fiddaman, P. J., & Rossall, S. (1993). The production of antifungal volatiles by Bacillus subtilis. Journal of Applied Bacteriology, 74(2), 119-126.
  12. Gromadzka, K., Waśkiewicz, A., Goliński, P., & Świetlik, J. (2009). Occurrence of estrogenic mycotoxin–zearalenone in aqueous environmental samples with various NOM content. Water Research, 43(4), 1051-1059.
  13. International Agency for Research on Cancer, IARC. (1999). Overall Evaluations of Carcinogenicity to Humans. Monographs on the Evaluation of Carcinogenic Risk to Humans, IARC Monographs (Vol. 1). Lyon: IARC. 1–36.
  14. Iranian National Standards Organization. (2011). (http://isiri.gov.ir/oldstandard/portal/home/?65660)
  15. Ji, S. H., Paul, N. C., Deng, J. X., Kim, Y. S., Yun, B. S., & Yu, S. H. (2013). Biocontrol activity of Bacillus amyloliquefaciens CNU114001 against fungal plant diseases. Mycobiology, 41(4), 234-242.
  16. Kai, M., & Piechulla, B. (2009). Plant growth promotion due to rhizobacterial volatiles–An effect of CO2. FEBS Letters, 583(21), 3473-3477.
  17. Kazempour, M. N. (2004). Biological control of Rhizoctonia solani, the causal agent of rice sheath blight by antagonistics bacteria in greenhouse and field conditions. Plant Pathology Journal, 3(2), 88-96.
  18. Kokkonen, M., Jestoi, M. & Rizzo, A. (2005). The effect of substrate on mycotoxin production of selected Penicillium strains. International Journal of Food Microbiology, 99(2), 207-214.
  19. Leifert, C., Li, H., Chidburee, S., Hampson, S., Workman, S., Sigee, D. ... & Harbour, A. (1995). Antibiotic production and biocontrol activity by Bacillus subtilis CL27 and Bacillus pumilus CL45. Journal of Applied Bacteriology, 78(2), 97-108.
  20. Martins, M. L. & Martins, H. M. (2002). Influence of water activity, temperature and incubation time on the simultaneous production of deoxynivalenol and zearalenone in corn (Zea mays) by Fusarium graminearum. Food Chemistry, 79(3), 315-318.
  21. Melnick, R. L., Zidack, N. K., Bailey, B. A., Maximova, S. N., Guiltinan, M. & Backman, P. A. (2008). Bacterial endophytes: Bacillus spp. from annual crops as potential biological control agents of black pod rot of cacao. Biological Control, 46(1), 46-56.
  22. Mirocha, C. J., Schauerhamer, B., Christensen, C. M., Niku-Paavola, M. L. & Nummi, M. (1979). Incidence of zearalenol (Fusarium mycotoxin) in animal feed. Applied and Environmental Microbiology, 38(4), 749-750.
  23. Ongena, M. & Jacques, P. (2008). Bacillus lipopeptides: versatile weapons for plant disease biocontrol. Trends in Microbiology, 16(3), 115-125.
  24. Pitt, J. I. (2000). Toxigenic fungi: which are important?. Sabouraudia, 38(Supplement_1), 17-22.
  25. Raaijmakers, J. M., De Bruijn, I., Nybroe, O. & Ongena, M. (2010). Natural functions of lipopeptides from Bacillus and Pseudomonas: more than surfactants and antibiotics. FEMS Microbiology Reviews, 34(6), 1037-1062.
  26. Sadiq, F. A., Yan, B., Tian, F., Zhao, J., Zhang, H. & Chen, W. (2019). Lactic Acid Bacteria as Antifungal and Anti‐Mycotoxigenic Agents: A Comprehensive Review. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, 18(5), 1403-1436.
  27. Samsudin, N. I. P. B. (2015). Potential biocontrol of fumonisin B1 production by Fusarium verticillioides under different ecophysiological conditions in maize. Cranfield University.
  28. Sanchis, V. & Magan, N. (2004). Environmental conditions affecting mycotoxins. Mycotoxins in Food: Detection and Control, 174-189.
  29. Shahcheraghi, S. H., Ayatollahi, J. & Lotfi, M. (2015). Applications of Bacillus subtilis as an important bacterium in medical sciences and human life. Tropical Journal of Medical Research, 18(1), 1.
  30. Sierra, A.G., El- Hassan, A., Hoglinger, B. & Voegele, R.T. (2016). Inhibitory actions of Bacillus subtilis HG77 on Fusarium graminearum and its zearalenone production. University of Hohenheim, Germany.
  31. Sundlof, S. F. & Strickland, C. (1986). Zearalenone and zeranol: potential residue problems in livestock. Veterinary and Human Toxicology, 28(3), 242.
  32. Tinyiro, S. E., Wokadala, C., Xu, D. & Yao, W. (2011). Adsorption and degradation of zearalenone by Bacillus strains. Folia Microbiologica, 56(4), 321.
  33. Toure, Y., Ongena, M. A. R. C., Jacques, P., Guiro, A. & Thonart, P. (2004). Role of lipopeptides produced by Bacillus subtilis GA1 in the reduction of grey mould disease caused by Botrytis cinerea on apple. Journal of Applied Microbiology, 96(5), 1151-1160.
  34. Vahidinasab, M., Ahmadzadeh, M., Henkel, M., Hausmann, R. & Heravi, K. M. (2019). Bacillus velezensis UTB96 Is an Antifungal Soil Isolate with a Reduced Genome Size Compared to That of Bacillus velezensis FZB42. Microbiology Resource Announcements, 8(38), e00667-19.
  35. Zalila-Kolsi, I., Mahmoud, A. B., Ali, H., Sellami, S., Nasfi, Z., Tounsi, S. & Jamoussi, K. (2016). Antagonist effects of Bacillus spp. strains against Fusarium graminearum for protection of durum wheat (Triticum turgidum L. subsp. durum). Microbiological Research, 192, 148-158.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 643
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 436





سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب