تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,118,052 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,223,869 |
مقایسه کارایی باکتری های محرک رشد و کود شیمیایی در بهبود رشد و عملکرد گیاه گندم | ||
نشریه محیط زیست طبیعی | ||
مقاله 2، دوره 73، شماره 2، مرداد 1399، صفحه 211-225 اصل مقاله (1.34 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jne.2020.292277.1849 | ||
نویسندگان | ||
سمیه امامی* ؛ حسینعلی علیخانی؛ احمد علی پوربابایی؛ حسن اعتصامی؛ فریدون سرمدیان؛ بابک متشرع زاده | ||
دانشگاه تهران | ||
چکیده | ||
امروزه استفاده بیرویه از کودهای شیمیایی در زمینهای کشاورزی به دلیل نگرانیهای زیست محیطی مورد بحث است، بنابراین یافتن راهکارهای جایگزین برای کاهش اثرات مضر فعالیتهای کشاورزی حائز اهمیت است. هدف از این تحقیق، بررسی پتانسیل جدایههای فراریشهای و درونرست جداسازی شده از ریشه گیاه گندم به منظور بررسی ویژگیهای محرک رشد و اثر آنها بر شاخصهای رشد گیاه گندم و کاهش مصرف کودهای شیمیایی فسفر بود. به این منظور ابتدا باکتریها از نظر تولید هورمون ایندول استیک اسید در محیط کشت حاوی ال-تریپتوفان غربالگری شدند و توانایی آنها در انحلال فسفاتهای نامحلول معدنی و آلی ارزیابی شد. در ادامه توانایی این باکتریها در بهبود رشد گیاه گندم در یک آزمایش گلخانهای در قالب طرح کاملاً تصادفی مورد بررسی قرار گرفت. جدایههای فراریشهای R185 و درونرست E240 بهترتیب با تولید 2/299 و 1/330 میکروگرم بر میلیلیتر فسفر و همچنین تولید 2/19 و 22 میکروگرم بر میلیلیتر هورمون ایندول استیک اسید به عنوان جدایههایی با توان انحلال فسفاتهای نامحلول و مولد ایندول استیک اسید انتخاب شدند. نتایج حاصل از تعیین توالی 16S rRNA نشان داد که جدایههای باکتریایی فراریشهای (R185) و درونرست (E240) از جنس Pseudomonas بودند. به استناد نتایج حاصله، مایهکوبی تلفیقی با باکتریهای فراریشهای و درونرست موجب افزایش 6/55 درصدی در مقدار فسفر گیاه شد در حالیکه این مقدار در مورد مایهکوبی جداگانه با باکتریهای فراریشهای و درونرست بهترتیب 6/35 و 4/36 درصد بود. در ارتباط با ارقام گندم، رقم روشن نسبت به رقم مرودشت درصد فسفر بالاتر (7/4 درصد) و بیومس ریشه بیشتری (2/14 درصد) تولید کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
باکتریهای فراریشهای و درونرست؛ کود شیمیایی؛ گندم؛ کود زیستی؛ مؤلفههای محرک رشد گیاه | ||
مراجع | ||
Alikhani, H., Etesami, H. & Mohammadi, L. (2018). Evaluation of the Effect of Rhizospheric and Non-Rhizospheric phosphate Solubilizing Bacteria on Improving the Growth Indices of Wheat under Salinity and Drought Stress. Journal of Sol Biology, 6(1), 1-14. Alikhani, H., Saleh-Rastin, N., & Antoun, H. (2007). Phosphate solubilization activity of rhizobia native to Iranian soils. First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization, 35-41. Babu, S. V., Triveni, S., Reddy, R. S., & Sathyanarayana, J. (2017). Screening of Maize Rhizosperic Phosphate Solubilizing Isolates for Plant Growth Promoting Characteristics. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 6(10), 2090-2101. Batool, S., & Iqbal, A. (2018). Phosphate Solubilizing Rhizobacteria as Alternative of Chemical Fertilizer for Growth and Yield of Triticum aestivum (Var. Galaxy 2013). Saudi Journal of Biological Sciences, 26(7), 1400-1410. Bread Wheat Improvement and Production. Rome, Italy: FAO: Plant Production and Protection Series. Bric, J. M., Bostock, R. M., & Silverstone, S. E. (1991). Rapid in situ assay for indoleacetic acid production by bacteria immobilized on a nitrocellulose membrane. Applied and Environmental Microbiology, 57(2), 535-538. Chen, L., Shi, H., Heng, J., Wang, D., & Bian, K. (2019). Antimicrobial, plant growth-promoting and genomic properties of the peanut endophyte Bacillus velezensis LDO2. Microbiological Research, 218, 41-48. Curtis, B. C., Rajaram, S., & Gómez, M. (2002). Bread Wheat Improvement and Production. Rome, Italy: FAO: Plant Production and Protection Series. Delfim, J., Schoebitz, M., Paulino, L., Hirzel, J., & Zagal, E. (2018). Phosphorus availability in wheat, in volcanic soils inoculated with phosphate-solubilizing Bacillus thuringiensis. Sustainability, 10(1), 144. Emami, S., Alikhani, H. A., Pourbabaei, A. A., Etesami, H., Motashare Zadeh, B., & Sarmadian, F. (2018). Improved growth and nutrient acquisition of wheat genotypes in phosphorus deficient soils by plant growth-promoting rhizospheric and endophytic bacteria. Soil Science and Plant Nutrition, 64(6), 719-727. Gopalakrishnan, S., Sathya, A., Vijayabharathi, R., Varshney, R. K., Gowda, C. L., & Krishnamurthy, L. (2015). Plant growth promoting rhizobia: challenges and opportunities. 3 Biotech, 5(4), 355-377. Gouda, S., Kerry, R. G., Das, G., Paramithiotis, S., Shin, H.-S., & Patra, J. K. (2018). Revitalization of plant growth promoting rhizobacteria for sustainable development in agriculture. Microbiological Research, 206, 131-140. Kasim, W. A., Osman, M. E., Omar, M. N., El-Daim, I. A. A., Bejai, S., & Meijer, J. (2013). Control of drought stress in wheat using plant-growth-promoting bacteria. Journal of Plant Growth Regulation, 32(1), 122-130. Korir, H., Mungai, N. W., Thuita, M., Hamba, Y., & Masso, C. (2017). Co-inoculation effect of rhizobia and plant growth promoting rhizobacteria on common bean growth in a low phosphorus soil. Frontiers in Plant Science, 8, 141-150. Ova, E. A., Kutman, U. B., Ozturk, L., & Cakmak, I. (2015). High phosphorus supply reduced zinc concentration of wheat in native soil but not in autoclaved soil or nutrient solution. Plant and Soil, 393(1-2), 147-162. Rajaee, S., Alikhani, H., & Raiesi, F. (2007). Effect of plant growth promoting potentials of Azotobacter chroococcum native strains on growth, yield and uptake of nutrients in wheat. Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources, 11(41), 285-297. Ramteke, L., Sahayam, A., Ghosh, A., Rambabu, U., Reddy, M., Popat, K., & Ghosh, P. (2018). Study of fluoride content in some commercial phosphate fertilizers. Journal of Fluorine Chemistry, 210, 149-155. Rana, A., Kabi, S. R., Verma, S., Adak, A., Pal, M., Shivay, Y. S., & Nain, L. (2015). Prospecting plant growth promoting bacteria and cyanobacteria as options for enrichment of macro-and micronutrients in grains in rice–wheat cropping sequence. Cogent Food & Agriculture, 1(1), 1-16. Ribeiro, V. P., Marriel, I. E., Sousa, S. M. d., Lana, U. G. d. P., Mattos, B. B., Oliveira, C. A. d., & Gomes, E. A. (2018). Endophytic Bacillus strains enhance pearl millet growth and nutrient uptake under low-P. Brazilian Journal of Microbiology, 49, 40-46. Sambrook, J., Russell, D. W., & Russell, D. W. (2001). Molecular cloning: a laboratory manual (3-volume set). Immunol, 49, 895-909. Schwyn, B., & Neilands, J. (1987). Universal chemical assay for the detection and determination of siderophores. Analytical Biochemistry, 160(1), 47-56. Sharma, S. B., Sayyed, R. Z., Trivedi, M. H., & Gobi, T. A. (2013). Phosphate solubilizing microbes: sustainable approach for managing phosphorus deficiency in agricultural soils. Springer Plus, 2(1), 587. Singh, S., Raju, N. J., & Nazneen, S. (2015). Environmental risk of heavy metal pollution and contamination sources using multivariate analysis in the soils of Varanasi environs, India. Environmental Monitoring and Assessment, 187(6), 1-12. Sparks, D.L. (1996). Methods of Soil Analysis. Part 3. Chemical Methods, Soil Science Society of American, Inc. American Society of Agronomy, Inc, Madison Wisconsin, USA. Sperber, J. I. (1958). The incidence of apatite-solubilizing organisms in the rhizosphere and soil. Australian Journal of Agricultural Research, 9(6), 778-781. Syers, J. K., Johnston, A. E., & Curtin, D. (2008). Efficiency of soil and fertilizer phosphorus use—reconciling changing concepts of soil phosphorus behaviour with agronomic information. FAO Fertilizer and Plant Nutrition Bulletin 18. FAO, United Nations, Rome. Westerman, R. L. (1990) Soil Testing and Plant Analysis, Third Edition. Madison, Wisconsin; Soil Science Society of America. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 513 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 534 |