سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات158
تعداد شماره‌ها6,228
تعداد مقالات67,753
تعداد مشاهده مقاله115,088,618
تعداد دریافت فایل اصل مقاله89,829,926
رامک, پروین, کریمیان, وحید, سیاه منصور, رضا. (1399). مقایسه عناصر غذایی و ترکیبات شیمیایی گیاه دارویی- خوراکی بن‌سرخ در رویشگاه و مزرعه ‏. , 51(1), 19-31. doi: 10.22059/ijhs.2019.270402.1545
پروین رامک; وحید کریمیان; رضا سیاه منصور. "مقایسه عناصر غذایی و ترکیبات شیمیایی گیاه دارویی- خوراکی بن‌سرخ در رویشگاه و مزرعه ‏". , 51, 1, 1399, 19-31. doi: 10.22059/ijhs.2019.270402.1545
رامک, پروین, کریمیان, وحید, سیاه منصور, رضا. (1399). 'مقایسه عناصر غذایی و ترکیبات شیمیایی گیاه دارویی- خوراکی بن‌سرخ در رویشگاه و مزرعه ‏', , 51(1), pp. 19-31. doi: 10.22059/ijhs.2019.270402.1545
رامک, پروین, کریمیان, وحید, سیاه منصور, رضا. مقایسه عناصر غذایی و ترکیبات شیمیایی گیاه دارویی- خوراکی بن‌سرخ در رویشگاه و مزرعه ‏. , 1399; 51(1): 19-31. doi: 10.22059/ijhs.2019.270402.1545

مقایسه عناصر غذایی و ترکیبات شیمیایی گیاه دارویی- خوراکی بن‌سرخ در رویشگاه و مزرعه ‏

علوم باغبانی ایران
دوره 51، شماره 1، خرداد 1399، صفحه 19-31    اصل مقاله (805.74 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2019.270402.1545
نویسندگان
پروین رامک* 1؛ وحید کریمیان2؛ رضا سیاه منصور1
1استادیار، بخش تحقیقات منابع طبیعی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان لرستان، سازمان تحقیقات، آموزش ‏و ترویج کشاورزی، خرم‌آباد، ایران
2دکتری مرتع، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد یاسوج، دانشگاه آزاد اسلامی، یاسوج، ایران
چکیده
بن‌سرخ (Allium jesdianum) از گیاهان دارویی-خوراکی مهم و در معرض خطر است که در ارتفاعات رشته کوه­های زاگرس، ایران می‌روید. در این مطالعه پیازهای سه اکوتیپ از گیاه دارویی بن‌سرخ؛ شامل اکوتیپ‌های کاکارضا در شهرستان خرم‌آباد، ذلقی در شهرستان الیگودرز و مله در شهرستان پلدختر، که در شرایط جغرافیایی و اقلیمی­ متفاوت در استان لرستان رویش می یابند، جمع‌آوری شدند. پیازهای جمع­آوری شده در قالب طرح بلوک­های کامل تصادفی در چهار تکرار در مزرعه کشت شدند. در بهار سال بعد از نمونه­های گیاهی کشت شده در مزرعه و نیز رویشگاه‌های طبیعی نمونه‌گیری شد. برای تعیین خصوصیات خاک، نمونۀ خاک از عمق 30-0 سانتی­متری در هر یک از رویشگاه­ها و مزرعه، با سه تکرار برداشت شد. صفات مورد مطالعه عبارت بودند از خصوصیات کمی و کیفی اسانس، فعالیت آنتی‌اکسیدانی،  پروتئین کل، ویتامین C، قندهای غیرساختمانی و عناصر غذایی شامل نیتروژن، ﭘﺘﺎﺳﻴﻢ، فسفر، آهن، منگنز، مس و روی. نتایج نشان داد که ترکیبات Dimethyl Trisulfide، Dipropyl trisulfide، Di-2-propenyl tetrasulfide، Hexadecanoic acid و Pentacosane عمده مواد تشکیل‌دهنده اسانس هستند که درصد این ترکیبات بین اکوتیپ‌های کشت‌شده و خودرو، تفاوت معنی‌داری (01/0p<) داشت. بیشترین عملکرد اسانس (22/0 درصد) در نمونه‌های خودرو برداشت‌شده از رویشگاه مله واقع در شهرستان پلدختر مشاهده شد  و کمترین عملکرد اسانس (12/0 درصد) در نمونه‌های برداشت‌شده از رویشگاه ذلقی در شهرستان الیگودرز ثبت شد. اگرچه عملکرد اسانس بین اکوتیپ‌ها در رویشگاه‌، تفاوت معنی‌داری داشت، اما عملکرد اسانس در اکوتیپ‌های کشت‌شده تفاوت معنی‌داری نشان ندادند. بیشترین میزان فسفر (mg/gDW50/4)، روی (μg/g DW30/2)، منگنز (μg/g DW 46/2)، قند محلول ( mg/g DW66/45) و پروتئین کل (mg/g DW 83/8) در گیاهان کشت شده اکوتیپ مله مشاهده شد. گیاهان برداشت شده از رویشگاه کاکارضا دارای بیشترین میزان ویتامین C (mg/100 g FW 66/80) و فعالیت آنتی‌اکسیدانی (μg/mL 42IC50=) بودند.
کلیدواژه‌ها
ترکیبات شیمیایی؛ رویشگاه؛ عناصر غذایی؛ کشت زراعی؛ ‏Allium jesdianum
عنوان مقاله [English]
Comparison of the nutrients and chemical composition of Allium jesdianum Boiss & ‎Buhse in the habitats and field
نویسندگان [English]
Parvin Ramak1؛ Vahid Karimian2؛ Reza Siahmansour1
1Assistant Professor, Research Division of Natural Resources, Lorestan Agricultural and Natural Resources Research and Education ‎Center, AREEO, Khorramabad, Iran
2Ph.D. in Pasture Science, Young Researchers and Elite Club, Yasooj Branch, Islamic Azad University, Yasouj, Iran
چکیده [English]
Allium jesdianum is an important and endangered medicinal plant that main habitats are located in the Zagros Mountains of Iran. In this study, onion of three ecotypes including Kakareza, Zalaghi and Meleh, which are grown in different geographical and climate conditions in Lorestan province, were collected. The collected onions were cultivated in a randomized complete block design with four replications. In the spring of the next year, plants are grown on the field and natural habitats were sampled to determine the physical and chemical properties of soil, soil samples were taken from 0-30 cm depth in each of the habitats and the farm, with three replications. The characteristics included quantitative and qualitative of essential oils, antioxidant activity total protein, vitamin C, non-structural sugars, and nutritional elements (nitrogen, potassium, phosphorus, iron, manganese, copper and zinc) of the shoots. The results showed that Dimethyl Trisulfide, Dipropyl trisulfide, Di-2-propenyl tetrasulfide, Hexadecanoic acid, and Pentacosane are the major components of the Allium­­ jesdianum essential oil. The percentage of essential oil components was a significant difference (p<0.01) between wild and cultivated ecotypes. The maximum yield of essential oil (0.22%) was observed in wild plants from Mela habitat, and the minimume yield of essential oil (12.2%) was recorded in wild plants from Zalaghi habitat. Although the essential oil yield was significantly different between wild ecotypes, but there are no significant differences between these ecotypes at the farm. The highest amount of phosphorus (4.5 mg/g DW), zinc (2.3 μg/g DW), manganese (2.46 μg/g DW), non-structural sugars (45.66 mg/g DW), and total protein (8.83 mg/g DW) was observed in the cultivated ecotype of Meleh. Kakareza ecotype in habitat had the highest amount of vitamin C (80.66 mg/100 g FW) and antioxidant activity (IC50=42 μg/mL).
کلیدواژه‌ها [English]
Allium jesdianum, chemical composition, cultivation, habitat
مراجع
  1. Adams, R.P. (2001). Identification of Essential Oil Components by Gas Chromatography/Mass Spectroscopy. Allured Publishing, Corpora- tion, Carol Stream. 456p.
  2. Amiri, H. (2007). Chemical Composition and Antibacterial Activity of the Essential Oil of Allium jesdianum Boiss. & Buhse from Iran. Journal of Medicinal Plants, 1(3), 39-44. (in Farsi)
  3. Amiri, N., Yadegari, M. & Hamedi, B. (2018). Essential Oil Composition of Cirsium arvense L. Produced in Different Climate and Soil Properties. Journal of Rec. Nat. Prod, 12(3), 251-262
  4. Bernath, J. (2008). Production ecology of secondary plant products: 185-239. In: Craker, L.E. and Simon, J.E., (Eds.). Herbs, Spices, and Medicinal Plants: Recent Advances in Botany, Horticulture and Pharmacology. (Vol. I). Oryx Press, Phoenix, Arizona, 363p.
  5. Bertome, J., Isabel Arrillage, M. & Segura, J. (2007). Essential oil variation within and among natural population of Lavandula latifolia and its relation to their ecological areas. Biochemical Systematics and Ecology, 35, 479-488.
  6. Bradford, M.M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analitical Biochemistry. 72: 248-254.
  7. Canter, P.H., Thomas, H. & Ernst, E. (2005). Bringing medicinal plants into cultivation: opportunities and challenges for biotechnology. Trends in Biotechnology, 23,180-185.
  8. Chorli, S., Khorasaninejad, S., Hemmati, K. & Kashefi, B. (2017). The study of morphological characteristics, antioxidant and essential oil contents of the medicinal plant Stachys lavandulifolia Vahl. in habitats of Semnan, Razavi,and North Khorasan provinces, Journal of Iranian Plant Ecophysiological Research, 11(41),41-52. (in Farsi)
  9. Figueiredo, A.C., Barroso, J.G., Pedro, L.G. & Scheffer, J.J.C. (2008). Factors affecting secondary metabolite production in plants: volatile components and essential oils. Flavour and Fragrance Journal, 23(4), 213-226.
  10. Georgé, S., Brat, P., Alter, P. &  Amiot, M. J. (2005). Rapid Determination of Polyphenols and Vitamin C in Plant-Derived Products. J. Agric. Food Chem, 53­(5), 1370-1373.
  11. Ghasemi Pirbalouti, A., Hashemi, M. & Ghahfarokhi, F.T. (2013). Essential oil and chemical compositions of wild and cultivated Thymus daenensis Celak and Thymus vulgaris L. Industrial Crops and Products, 48, 43-48.
  12. González-Coloma, A., Delgado, F., Rodilla, J.M., Silva, L ,.Sanz, J. & Burillo, J. (2011). Chemical and biological profiles of Lavandula luisieri essential oils from western Iberia Peninsula populations. Biochemical Systematics and Ecology, 39,1-8.
  13. Heywood, V.H. (2002). The conservation of genetic and chemical diversity in medicinal and aromatic plants. In: biodiversity: bio molecular aspects of biodiversity and innovative utilization. Sener B (Ed.). Springer, Berlin, Heidelberg, 13-22pp.
  14. Hesse, P. R. (1971) A text book of soil chemical analysis. John Murray. London.
  15. Iranshahi, M. & Amanzadeh, Y. (2008). Rapid isocratic HPLC analysis of caffeic acid derivatives from Echinacea purpurea cultivated in Iran. Chem Nat Comp, 44, 190-3.
  16. Jafari Haghighi, M. (2004). Methods of soil analysis. 1st ed. Nedaye Zahi Publishing, 240p. (in Farsi)
  17. Karimian, V., Vahabi, M.R., roustakhiz, J. & Nodehi, N. (2017). Identification of Some Ecological Factors Affecting on Essential Oil of Verbascum songaricum Schrenk Shoots (Case Study: Rangelands of Isfahan and Kohgiluyeh and Buyerahmad Provinces, Iran). Journal of Rangeland Science, 7, 183-194.
  18. Khaksarian, M., Gholami, E., Alipour, M., Sabooteh, T. & Asadi-Samani, M. (2017). Investigation of the effects of the essence and extract of Allium jesdianum on the activity of COX-1 and COX-2 enzymes. International Journal of Advanced Biotechnology and Research,8, 1095-1101.
  19. Kochert, G. (1978). Carbohydrate determination by the phenol sulfuric acid method, In Helebust, J. A., Craig, J. S. (ed) Handbook physiological methods, Cambridge University. Press Cambridge.
  20. Koleva, I.I., van Beek, T.A., Linssen, J.P.H., Groot, A.d. & Evstatieva, L.N. (2002). Screening of Plant Extracts for Antioxidant Activity: a Comparative Study on Three Testing Methods. Phytochem Anal, 13, 8-17.
  21. Leops, D., Godog, R., Goncalves, S., Koketsu, M. & Olivera, A. (1997). Sulfur constituent of essential oil of nira (Allium tuberosum Rott) cultivated in Brazil. Flavour and Fragrance Journal, 12 (4), 237-239.
  22. Lindsay, W.L. & Norvell, W.A. (1978). Development of a DTPA soil test for zinc, iron, manganese and copper. Soil Science Society of America Journal, 42, 421-428.
  23. Lorigooini, Z., Ayatollahi, S.A., Amidi, S. & Kobarfard, F.(2015). Evaluation of Anti-Platelet Aggregation Effect of Some Allium Species. Iranian Journal of Pharmaceutical Research, 14 (4), 1225-1231. (in Farsi)
  24. Moghaddam, M. & Farhadi, N. (2015). Influence of environmental and genetic factors on resin yield, essential oil content and chemical composition of Ferula assa-foetida L. populations. Journal of Applied Research on Medicinal and Aromatic Plants, 2, 69-76.
  25. Neshati, F. & Fritsch, RM. (2009). Seed characters and testa sculptures of some Iranian Allium L. species (Alliaceae). Feddes Repert, 120, 322-332.
  26. Norouzi, R. & Norouzi, M. (­2018). Variations in essential oil of Salvia reuterana Boiss. under wild and field conditions. Journal of Plant Process and Function, 23, 7, 347-360. (in Farsi)
  27. Omidbeygi, R. (2000). Approaches to Production and Processing of Medical Plants. Tarahan Publisher, Mashhad. 283p. (in Farsi)
  28. Rechinger, K.H. (Ed.). (1971). Flora Iranica. Vol. 76. Akademische Druck-U Verlagsanstalt, Graz.
  29. Rouis-Soussi, L., Boughelleb-M'Hamdi, N., Ayeb-Zakhama, A., Flamini, G., Ben Jannet, H. & Harzallah-Skhiri, F. (2014). Phytochemicals, antioxidant and antifungal activities of Allium roseumvar grandiflorum subvar. typicum Regel. South African Journal of Botany, 91, 63-70.
  30. Saadatmand, L., Ghorbanli, M. & Neyakan, M. (2015). Evaluation of some morphological characteristics of medicinal plant Olive (Elaeagnus angustifolia) at four different sites Razavi Khorasan province. Journal of Iranian Plant Eco physiological Research. 10, 37. 21-30. (in Farsi)
  31. Sefidkon, F., Alavha, M. & Mcshkizadeh, S. (2004). Quantitative and qualitative variation of the essential oil of Diplotaenia cachrydifolia in different stage of plant growth. Journal of Medicinal Plants, 11(3), 31-37. (in Farsi)
  32. Shafeezadeh, F. (2003). Herbal medicine of Lorestan. 8(2), 49-50. (in Farsi)
  33. Soysal, Y. & Öztekin, S. (1999). Equilibrium Moisture content equations for some medicinal and aromatic plants. Journal of Agricultural Engineering Research, 74, 317-324.
  34. Suttle, F.N. (2010). Mineral nutrition of livestock. 4th Edition. Midlothian CABI International, Wallingford, UK.
  35. Tabrizi, L. & Koocheki, A. (2014). Ecology of Medicinal Plants, Production and Sustainable Utilization. Tehran University Press. (in Farsi)
  36. Tian, L., Zho, L., Wu, X., Fang, H., Zho, Y., Hu, G., Yue, G., Sheng, Y., Wu, J., Wang, Z., Zou, D. & Zhang, G. (2018). Soil moisture and texture primarily control the soil nutrient stoichiometry across the Tibetan grassland. Science of the Total Environment, 622, 192-202.
  37. Walkley, A. & Black, I. A. (1934) Estimation of soil organic carbon by the chromic acid titration method. Soil Science, 37, 29-38.
  38. Yan, X., Wu, S., Wang, Y., Shang, X. & Dai, S. (2004). Soil nutrient factors related to salidroside production of Rhodiola sachalinensis distributed in Chang Bai Mountain. Environmental and experimental botany, 52(3), 267-276.
  39. Zarrin Kafsh, M. (1999). Soil Sciences Related to Plant and Environment. Islamic Azad University press. 342p. (in Farsi)
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 455
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 382


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب