سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,102,236
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,208,721
نظری, فهیمه, صفایی, ناصر, سلطانی, بهرام محمد, شمس بخش, مسعود, شریفی, محسن. (1397). نقش سورفکتین در القا مقاومت گیاه توتون علیه آگروباکتریوم. , 49(2), 255-262. doi: 10.22059/ijpps.2018.239051.1006797
فهیمه نظری; ناصر صفایی; بهرام محمد سلطانی; مسعود شمس بخش; محسن شریفی. "نقش سورفکتین در القا مقاومت گیاه توتون علیه آگروباکتریوم". , 49, 2, 1397, 255-262. doi: 10.22059/ijpps.2018.239051.1006797
نظری, فهیمه, صفایی, ناصر, سلطانی, بهرام محمد, شمس بخش, مسعود, شریفی, محسن. (1397). 'نقش سورفکتین در القا مقاومت گیاه توتون علیه آگروباکتریوم', , 49(2), pp. 255-262. doi: 10.22059/ijpps.2018.239051.1006797
نظری, فهیمه, صفایی, ناصر, سلطانی, بهرام محمد, شمس بخش, مسعود, شریفی, محسن. نقش سورفکتین در القا مقاومت گیاه توتون علیه آگروباکتریوم. , 1397; 49(2): 255-262. doi: 10.22059/ijpps.2018.239051.1006797

نقش سورفکتین در القا مقاومت گیاه توتون علیه آگروباکتریوم

دانش گیاهپزشکی ایران
مقاله 8، دوره 49، شماره 2، اسفند 1397، صفحه 255-262    اصل مقاله (741.29 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2018.239051.1006797
نویسندگان
فهیمه نظری1؛ ناصر صفایی* 2؛ بهرام محمد سلطانی3؛ مسعود شمس بخش2؛ محسن شریفی4
1دانشجوی دکتری، گروه بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس
2دانشیار، گروه بیماری‌شناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس
3دانشیار، گروه ژنتیک مولکولی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه تربیت مدرس
4دانشیار، گروه زیست‌شناسی گیاهی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه تربیت مدرس
چکیده
بیماری گال طوقه یکی از خسارت‏زاترین بیماری‌های باکتریایی است. کنترل زیستی بیماری‌های گیاهی به لحاظ خطرهای ناشی از کاربرد آفت‏کش‏ها امروزه جایگاه ویژه‌ای دارد. این پژوهش برای درک دقیق‌تر‏‏ سازوکار مولکولی سورفکتین روی آگروباکتریوم مولد گال طوقه به‌عنوان پیش‌نیاز امکان استفاده از عامل کنترل زیستی باسیلوس تولیدکننده سورفکتین علیه این بیماری انجام شد. بدین منظور از گیاه توتون، سویه آگروباکتریوم IBRC-M10701 و سورفکتین خالص تجاری (25 میکرومولار) استفاده شد. به دلیل اهمیت اثر miRNAها در مسیر سیگنال‏دهی اکسین و ژن lox در مسیر القای مقاومت، سطح بیان miRNA167‏‏‏nta- و ژن lox در برهمکنش باکتریایی IBRC-M10701 و سورفکتین در روزهای اول، سوم و ششم بعد از تیمار با روش qRT-PCR مورد ارزیابی قرار گرفت. سطح بیان ژن lox پس از تیمار با آگروباکتریوم در زمان‌های‏‏ فوق به ترتیب افزایش بیانی 47/0، 9/22 و 8/61 برابری، در تیمار با سورفکتین افزایش بیانی 6/4، 6/3 و 6/11 برابری و در تیمار تلفیقی سورفکتین-آگروباکتریوم افزایش بیانی 2/4، 8/38 و کاهش بیانی 3/20 برابری داشت. همچنین سطح بیانی nta-miR167 در تیمار آگروباکتریوم بیانگر روند افزایشی 4/3، 4/214 برابری (روز اول و سوم) سپس روند کاهشی 5/2 برابری (روز ششم)، در تیمار با سورفکتین افزایش بیانی 12/3، 2/13 برابری (روز اول و سوم) و کاهش بیانی 5/4 برابری (روز ششم) و همچنین در تیمار تلفیقی سورفکتین-آگروباکتریوم بیانگر افزایش بیانی 6/1، 2/2 و 6/9 برابری نسبت به شاهد بود. به‌طورکلی مقایسۀ الگوی تغییرهای بیانی در ژن lox و nta-miR167 بیانگر اثر مثبت بیوکنترلی سورفکتین علیه آگروباکتریوم به‌واسطۀ کاهش اثر تهاجمی آن بود. این مطلب بیانگر ارزشمندی این ترکیب و سویه‌های‏‏ باکتریایی باسیلوس تولیدکنندۀ سورفکتین به‌عنوان عوامل کنترل زیستی است.
کلیدواژه‌ها
ژن lox؛ سورفکتین؛ miRNA
مراجع
  1. Abel, S. & Theologis, A. (1996).  Early genes and auxin action. Plant Physiology, 111, 9-17.
  2. Adam, A., Jourdan, E., Ongena, M., Duby, F., Dommes, J. & Thonart, P. (2005). Resistance induced in cucumber and tomato by a non-pathogenic Pseudomonas putida strain. Parasitica, 61, 13-22.
  3. Alami, I., Jouy, N. & Clerivet, A. (1999). The lipoxygenase pathway is involved in elicitor-induced phytoalexin accumulation in plane tree (Platanusacerifolia) cell-suspension cultures. Journal of Phytopathology, 147, 515-519.
  4. Allen, O. N. & Holding, A. J. (1974). Genus II. Agrobacterium Conn 1942, 359.In R.E.Buchanan & N. E. Gibbons (Eds.), Bergey’s manual of determinative bacteriology. Baltimore: Williams and Wilkins Co. 8th ed., pp. 264–267.
  5. Amani, B. (1966). Stem and root gall of grapevine. Iranian Journal of Plant Pathology, 3, 12-18.
  6. Bartel, D. P. (2004). MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function. Cell, 116, 281-297.
  7. Baulcombe, D. (2004). RNA silencing in plants. Nature, 431, 356-363.
  8. Ding, S. T., McNeel, R. L. & Mersmann, H. J. (1999). Expression of porcine adipocyte transcripts: Tissue distribution and differentiation in vitro and in vivo.Comparative Biochemistry and Physiology Part B Biochemistry and Molecular Biology, 123, 307-318.
  9. Dunoyer, P., Himber, C. & Voinnet, O. (2006). Induction, Suppression and requirement of RNA silencing pathways in virulent Agrobacterium tumefaciens infections.Nature genetics, 38, 258-263.
  10. Hagen, G. & Guilfoyle, T. (2002). Auxin-responsive gene expression: genes, promoters and regulatory factors. Plant Molocular and Biology, 49, 373-385.
  11. Henry, G., Deleu, M., Jourdan, E., Thonart, P. & Ongena, M. (2011). The bacterial lipopeptidesurfactin targets the lipid fraction of the plant plasma membrane to trigger immune-related defence responses. Cell Microbiology, 13(11), 1824-1837.
  12. Kasschau, K. D., Xie, Z., Allen, E. et al. (2003). P1/HC-Pro, a viral suppressor of RNA silencing, interferes with Arabidopsis development and miRNA function. Developmental Cell, 4, 205-217.
  13. Kennedy, B. W. & Alcorn, S. M. (1980). Estimates of U.S. crop losses to prokaryote plant pathogens. Plant Disease, 64, 674-676.
  14. Khraiwesha, B., Zhua, J. K. & Zhuc, J. (2012). Role of miRNAs and siRNAs in biotic and abiotic stress responses of plants. Biochimica et BiophysicaActa, 1819(2), 137-148.
  15. Kracht, M., Rokos, H., Ozel, M., Kowall, M., Pauli, G. &Vater, J. (1999). Antiviral and hemolytic activities of surfactin isoforms and their methyl ester derivatives.The Journal of Antibiotics, 52(7), 613-619.
  16. Lin, T. C. & Ishii, H. (2009). Accumulation of H2O2 in xylem fluids of cucumber stems during ASM-induced systemic acquired resistance (SAR) involves increased LOX activity and transient accumulation of shikimic acid. European Journal of Plant Pathoogyl, 125, 119-130.
  17. Liu, H. H., Tian, X., Li, Y. J., Wu, C. A. & Zheng, C. C. (2008). Microarray-based analysis of stress-regulated micro RNAs in Arabidopsis thaliana. RNA, 14, 836-843.
  18. Navarro, L., Dunoyer, P., Jay, F., Arnold, B., Dharmasiri, N., Estelle, M., Voinnet, O. & Jones, J. D. G. (2006). A Plant miRNA contributes to antibacterial resistance by repressing auxin signaling. Science, 312, 436.
  19. Nazari, F., Safaie, N., Soltani, BM., Shams-Bakhsh, M. & Sharifi, M. (2017). Bacillus subtilis affects miRNAs and flavanoids production in Agrobacterium-Tobacco interaction. Plant Physiology and Biochemistry, 118, 98-106.
  20. Ongena, M., Jourdan, E., Adam, A., Paquot, M., Brans, A., Joris, B. et al. (2007). Surfactin and fengycinlipopeptides of Bacillus subtilis as elicitors of induced systemic resistance in plants. Environmental Microbiology, 9, 1084-1090.
  21. Peypoux, Á. F., Bonmatin, Á. J. M. & Wallach, J. (1999). Recent trends in the biochemistry of surfactin. Applied Microbiology and Biotechnology, 51, 553-563.
  22. Phookaew, P., Netrphan, S., Sojikul, P. & Narangajavana, J. (2014). Involvement of miR164- and miR167-mediated target gene expressions in responses to water deficit in cassava. Biologia Plantarum, 58(3), 469-478.
  23. Pruss, G. J., Nester, E. W. & Vance, V. (2008). Infiltration with Agrobacterium tumefaciens Induces host defense and development-dependent responses in the infiltrated zone. Molecular Plant-Microbe Interactions, 21(12), 1528-1538.
  24. Sheppared, J., Jumarie, C., Coopre, D. & Laprade, R. (1991). Ionic channels induced by surfactin in planar lipid bilayer membrane. Biochimica etBiophysicaActa, 1064, 13-23.
  25. Smith, E. F. & Townsend, C. O. (1907). A plant-tumor of bacterial origin.Science, 25, 671-673.
  26. Sunkar, R., Li, Y. F. & Jagadeeswaran, G. (2012). Functions of microRNAs in plant stress responses. Trends in Plant Science, 17(4), 196-203.
  27. Yang, J. H., Han, S. J., Yoon, E. K. & Lee, W. S. (2006). Evidence of an auxin signal pathway, microRNA167-ARF8-GH3, and its response to exogenous auxin in cultured rice cells. Nucluic Acids and Research, 34(6), 1892-1899.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 395
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 247


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب