سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,533
تعداد مقالات70,509
تعداد مشاهده مقاله124,128,964
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,236,141
اسدی, ابوذر, زبرجدی, علیرضا, عبداللهی, محمد رضا. (1397). بررسی اثر تنظیم ‏کننده ‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار (Cucumis sativus L.). , 49(4), 859-868. doi: 10.22059/ijhs.2017.230756.1223
ابوذر اسدی; علیرضا زبرجدی; محمد رضا عبداللهی. "بررسی اثر تنظیم ‏کننده ‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار (Cucumis sativus L.)". , 49, 4, 1397, 859-868. doi: 10.22059/ijhs.2017.230756.1223
اسدی, ابوذر, زبرجدی, علیرضا, عبداللهی, محمد رضا. (1397). 'بررسی اثر تنظیم ‏کننده ‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار (Cucumis sativus L.)', , 49(4), pp. 859-868. doi: 10.22059/ijhs.2017.230756.1223
اسدی, ابوذر, زبرجدی, علیرضا, عبداللهی, محمد رضا. بررسی اثر تنظیم ‏کننده ‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار (Cucumis sativus L.). , 1397; 49(4): 859-868. doi: 10.22059/ijhs.2017.230756.1223

بررسی اثر تنظیم ‏کننده ‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار (Cucumis sativus L.)

علوم باغبانی ایران
مقاله 2، دوره 49، شماره 4، اسفند 1397، صفحه 859-868    اصل مقاله (772.23 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2017.230756.1223
نویسندگان
ابوذر اسدی1؛ علیرضا زبرجدی* 2؛ محمد رضا عبداللهی3
1دانشجوی سابق دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه رازی، کرمانشاه
2گروه زراعت و اصلاح نباتات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران.
3دانشیار، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینا، همدان
چکیده
در مطالعه حاضر به­منظور بررسی اثر تنظیم­‏کننده‏های رشد گیاهی بر القای کالوس و جنین در کشت بساک خیار، 25 محیط مختلف برای القای کالوس و چهار مسیر مختلف برای القای جنین در نظر گرفته شد. دو آزمایش جداگانه به­صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار و سه تکرار، به­ترتیب برای القای کالوس و جنین انجام شد. در آزمایش القای کالوس، فاکتورها شامل دو ژنوتیپ خیار (اصفهانی و بتا آلفا)، و ترکیب غلظت‏های مختلفBAP  (0، 225/0، 45/0، 68/0 و 91/0 میلی‏گرم در لیتر) و 2,4-D (0، 25/0، 5/0، 75/0 و 1 میلی‏گرم در لیتر) بوده و در آزمایش القای جنین نیز فاکتورها شامل ترکیب غلظت‏های مختلف BAP (2، 3 و 4 میلی‏گرم در لیتر) و NAA (05/0 و 1/0 میلی‏گرم در لیتر) و همچنین انواع محیط مایع و جامد بودند. نتایج حاصل از تجزیه واریانس داده‏ها، اختلاف آماری معنی‏داری در سطح یک‏ درصد بین محیط‏های کشت و در سطح پنج درصد بین اثرهای متقابل ژنوتیپ و محیط کشت نشان داد. بساک‏های کشت­شده در محیط پایه MS و محیط‏های تهیه­شده با تنظیم‏کننده‏های رشد گیاهی، در حالت جداگانه پاسخی نشان ندادند و بعد از 4 هفته از کشت از بین رفتند، اما ترکیب تنظیم‏­کنند‏ه‏های رشد اثرات مختلفی بر القای کالوس داشت. بر اساس نتایج حاصل از مقایسه میانگین‏ها، محیط‏های M24، M22 و M15 به‌ترتیب با میانگین‏های 98، 75/97 و 96/75 درصد در بین 25 محیط مورد آزمایش، بیشترین کالوس و محیط M10 نیز با میانگین 5/77 درصد نیز کمترین کالوس را برای ژنوتیپ اصفهانی داشتند. محیط M22 با میانگین 45/98 درصد در رقم بتا آلفا، بیشترین کالوس و محیط M10 نیز با میانگین 7/59 درصد، کمترین میزان کالوس را برای این رقم داشت. در القای جنین نیز در هیچ­کدام از سه مسیر جامد- جامد، جامد-مایع و مایع-مایع جنینی مشاهده نشد؛ اما در مسیر مایع- جامد نرخ بالایی از جنین‏زایی مشاهده شد و تفاوت آماری معنی‏داری در سطح 5 درصد، در بین محیط‏های آزمایش­شده مشاهده شد. مقایسه میانگین محیط‏های مورد استفاده برای جنین‏زایی نیز نشان داد که محیط M6 با میانگین 58/60 درصد، بیشترین درصد جنین‏زایی و محیط M4 نیز با میانگین 20 درصد کمترین درصد جنین‏زایی را داشتند.
کلیدواژه‌ها
خیار؛ کشت اندام جنسی نر؛ BAP؛ 2؛ 4-D
مراجع
  1. Abdollahi, M. R., Najafi, S., Sarikhani, H. & Moosavi, S. S. (2016). Induction and development of anther-derived gametic embryos in cucumber (Cucumis sativus L.) by optimizing the macronutrient and agar concentrations in culture medium. Turkish Journal of Biology, 40, 571-579.
  2. Alverson, A. J., Rice, D. W., Dickinson, S., Barry, K. & Palmer, J. D. (2011). Origins and recombination of the bacterial-sized multichromosomal mitochondrial genome of cucumber. The Plant Cell, 23, 2499-2513.
  3. Armstrong, T., Metz, S. & Mascia, P. (1987). Two regeneration systems for the production of haploid plants from wheat anther culture. Plant Science, 51, 231-237.
  4. Ashok Kumar, H. & Murthy, H. (2004). Effect of sugars and amino acids on androgenesis of Cucumis sativus. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 78, 201-208.
  5. Ashok Kumar, H. G., Murthy, H. N. & Paek, K. Y. (2003). Embryogenesis and plant regeneration from anther cultures of Cucumis sativus L. Scientia horticulturae, 98, 213-222.
  6. Bajaj, Y. (1990). In vitro production of haploids and their use in cell genetics and plant breeding. Haploids in Crop Improvement I. Springer.
  7. Ball, S. T., Zhou, H. & Konzak, C. F. (1993). Influence of 2, 4-D, IAA, and duration of callus induction in anther cultures of spring wheat. Plant Science, 90, 195-200.
  8. Chu, C., Hill, R. & Brule-Babel, L. (1990). High frequency of pollen embryoid formation and plant regeneration in Triticum aestivum L. on monosaccharide containing media. Plant Science, 66, 255-262.
  9. Gałązka, J. & Niemirowicz-Szczytt, K. (2013). Review of research on haploid production in cucumber and other cucurbits. Folia Horticulturae, 25.
  10. Germanà, M. A. (2010). Anther culture for haploid and doubled haploid production. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 104, 283-300.
  11. Hamidvand, Y., Abdollahi, M. R., Chaichi, M. & Saeed, S. (2013). The effect of plant growth regulators on callogenesis and gametic embryogenesis from anther culture of cucumber (Cucumis sativus L.). International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 5, 1089.
  12. Hasandokht, M. R. (2006). Greenhouse managing (greenhouse production technology). Ed.^Eds. Thran: Marz Danesh. 320. (in Farsi)
  13. Jihad, M. O. A. (2016). Agricultural statistics year book.  Retrieved November 6, 2016, from http://amar.maj.ir/portal.
  14. Maheshwari, S., Rashid, A. & Tyagi, A. (1982). Haploids from pollen grains--retrospect and prospect. American Journal of Botany, 865-879.
  15. Organization, F. A. A. (2015). Statistical Yearbook of the Food and Agriculture Organization of the United Nations, from UN Food and Agriculture Organization:  http://faostat.fao.org/site/339/default.aspx.
  16. Sauton, A. & Dumas de Vaulx, R. (1988). Doubled haploid production in melon (Cucumis melo L.). Proc Eucarpia Meetg on Cucurbitaceae, Avignon-Monfavet, France, 119-128.
  17. Song, H., Lou, Q.-F., Luo, X.-D., Wolukau, J. N., Diao, W.-P., Qian, C.-T. & Chen, J.-F. (2007). Regeneration of doubled haploid plants by androgenesis of cucumber (Cucumis sativus L.). Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 90, 245-254.
  18. Suprunova, T., Shmykova, N. & Pitrat, M. (2008). In vitro induction of haploid plants in unpollinated ovules, anther and microspore culture of Cucumis sativus.
  19. Zhang, B., Tolstikov, V., Turnbull, C., Hicks, L. M. & Fiehn, O. (2010). Divergent metabolome and proteome suggest functional independence of dual phloem transport systems in cucurbits. In: Proceedings of the National Academy of Sciences, 107, 13532-13537.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 517
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 636


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب