سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات162
تعداد شماره‌ها6,578
تعداد مقالات71,072
تعداد مشاهده مقاله125,695,870
تعداد دریافت فایل اصل مقاله98,925,375
اسدی, اکبر, زهرایی صالحی, تقی, جمشیدیان, محمود. (1397). بررسی مولکولی ژن‌های ‌مقاومت پادزیستی در جدایه‌های اشریشیا‌کلی در طیور گوشتی شهرستان شهربابک به روش MULTIPLEX PCR. , 49(2), 203-211. doi: 10.22059/ijas.2018.256297.653633
اکبر اسدی; تقی زهرایی صالحی; محمود جمشیدیان. "بررسی مولکولی ژن‌های ‌مقاومت پادزیستی در جدایه‌های اشریشیا‌کلی در طیور گوشتی شهرستان شهربابک به روش MULTIPLEX PCR". , 49, 2, 1397, 203-211. doi: 10.22059/ijas.2018.256297.653633
اسدی, اکبر, زهرایی صالحی, تقی, جمشیدیان, محمود. (1397). 'بررسی مولکولی ژن‌های ‌مقاومت پادزیستی در جدایه‌های اشریشیا‌کلی در طیور گوشتی شهرستان شهربابک به روش MULTIPLEX PCR', , 49(2), pp. 203-211. doi: 10.22059/ijas.2018.256297.653633
اسدی, اکبر, زهرایی صالحی, تقی, جمشیدیان, محمود. بررسی مولکولی ژن‌های ‌مقاومت پادزیستی در جدایه‌های اشریشیا‌کلی در طیور گوشتی شهرستان شهربابک به روش MULTIPLEX PCR. , 1397; 49(2): 203-211. doi: 10.22059/ijas.2018.256297.653633

بررسی مولکولی ژن‌های ‌مقاومت پادزیستی در جدایه‌های اشریشیا‌کلی در طیور گوشتی شهرستان شهربابک به روش MULTIPLEX PCR

علوم دامی ایران
مقاله 4، دوره 49، شماره 2، شهریور 1397، صفحه 203-211    اصل مقاله (449.82 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijas.2018.256297.653633
نویسندگان
اکبر اسدی1؛ تقی زهرایی صالحی* 2؛ محمود جمشیدیان3
1دانشجوی دکتری، گروه میکرو‌بیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
2استاد بخش ایمنی‌شناسی و میکرو‌بیولوژی دانشکدۀ دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
3استاد، گروه میکرو‌بیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
چکیده
اشریشیاکلی بیماری‌زای طیور عامل ایجاد طیف بسیار گسترده‌ای از بیماری‌های خارج روده‌ای ازجمله سلولیت و کلی باسیلوز است. مشکل مقاومت به پادزیست (آنتی‌بیوتیک)‌ها در سرتاسر جهان وجود دارد. هدف از این پژوهش ارزیابی مولکولی ژن‌های مقاومت پادزیستی مانند: aac، aad، qnr، tet، anr، sul و تعیین حساسیت پادزیستی بود. نمونه‌برداری از کشتارگاه صنعتی طیور شهربابک در 6 ماه سال 95 انجام و شمار 83 جدایه از نمونه‌های کلی باسیلوزی و 34 جدایه از نمونه‌های سلولیتی جدا و به روش‌های بیوشیمیایی تأیید شدند. سپس آزمون‌های MultiplexPCR و تست حساسیت پادزیستی روی نمونه‌ها انجام شد. نتایج بررسی نشان داد، فراوانی ژن‌های tetA 85/63%، tetB65/62%، qnrs 3/49%،  09/24%،  91/28%،  32/31%،  5/26%، 1- aac(3)66/25%،  89/22%، flor 91/28%،  31/33% و  30/12درصد بود. هیچ‌کدام از نمونه‌ها از نظر ژن‌های blaTEM  مثبت نبودند. در این بررسی مشخص شد که 40 تا 90 درصد همۀ جدایه‌ها به یک یا چند پادزیست مقاوم هستند. بیشترین مقاومت به ترتیب نسبت به پادزیست‌های تتراسایکلین، سولفومتوکسازول، کلرامفنیکل و تریمتوپریم بود. همچنین مشخص شد که بروز مقاومت پادزیستی به دلیل حضور ژن‌های مقاومت است. شناخت الگوی مقاومت و حساسیت ریزجانداران (میکروارگانیسم‌)ها نسبت به پادزیست‌ها در انتخاب مناسب و درست دارو و مهار (کنترل) عفونت‌ها نقش مؤثری دارد.
کلیدواژه‌ها
اشریشیاکلی؛ جوجه‌های گوشتی؛ سلولیت؛ کلی باسیلوز؛ مقاومت پادزیستی
مراجع
  1. Ahsani, M. R., Bafti, M. S., Esmailizadeh, A. K. & Mohammadabadi, M. R. (2011). Genotyping of isolates of Clostridium perfringens from vaccinated and unvaccinated sheep. Small Ruminant Research, 95(1), 65-69.
  2. Ahsani, M. R., Mohammadabadi, M. R. & Shamsaddini, M. B. (2010). Clostridium perfringens isolate typing by multiplex PCR. Journal of Venomous Animals and Toxins including Tropical Diseases, 16(4), 573-578.
  3. Barnes, H. J., Nolan, L. K. & Vailan Court, J. P. (2008). Colibacillosis. In: Saif Y. M., Fadly A. M., Glisson J.R., McDougald L.R., Nolan L.K., Swayne D.E.: Diseases of Poultry. 12th Ed., Blackwell publishing, chapter 18, 691-738.
  4. Dho, M. & Lafont, J. P. (2009). Adhesive properties and iron uptake abilities in E. coli lethal and non-lethal for chicks. Avian Diseases, 28, 1116-1125.
  5. 5-Escobar-Paramo, P., Clermont, O., Blanc-Potard, A. B., Bui, H., Bouguenec C. Le. & Denamur, E. (2004a). A specific genetic background is required for acquisition and expression of virulence factors in Escherichia coli. Mol Biol Evol, 21, 1085-1094.
  6. 6-Ghanbarpour, R. (2017). Genetipicanalysis of virulence genes antimicrobial profile of diarrrea agenic Escherichia coli isolaited from disease poultray in Iran tropanima healtprod. Dol 10. 1007/s 11250-017-1234-7.
  7. Gordon, D. M., Clermont, O., Tolley, H. & Denamur, E. (2011). Assigning Escherichia coli strains to phylogenetic groups: multi-locus sequence typing versus the PCR triplex method. Environ Microbiol, 10, 2484-2496.
  8. Fankhauser, C., Schrenzel, J., Prendki, V., Ris, F., Schiffer, E., Gastmeier, P. & Harbarth, S. (2015). Prevalence of extended-spectrum betalactamase producing–Enterobacteriaceae (ESBL-E) carriage on admission at Geneva University Hospitals (HUG). Antimicrob Resist Infect Control, 4(1), 120.
  9. Facklam, R. R., Carvalho, M. & Teixeira, L. M. (2012). History, taxonomy, biochemical characteristics, and antibiotic susceptibility testing of enterococci. Washington DC: ASM Science, 1-54.
  10. Hadizadeh, M. R., Mohammadabadi, A., Niazi, A. K., Esmailizadeh Koshkoiyeh, Y., Mehdizadeh Gazooei, Y. & Molaei, S. (2013). Use of bioinformatics tools to study exon 2 of GDF9 gene in Tali and Beetal goats. Modern Genetics Journal (MGJ), 8(334), 283-288.
  11. Hadizadeh, M., Niazi, A., Mohammad Abadi, M., Esmailizadeh, A. & Mehdizadeh Gazooei, Y. (2014). Bioinformatics analysis of the BMP15 exon 2 in Tali and Beetal goats. Modern Genetics, 9(1), 117-120
  12. Jeffrey, J. S., Nolan, L. K., Tonooka, K. H. & et al. (2012). Virulence factors of Escherichia coli from cellulitis or colisepticemia lesions in chickens. Avian Diseases, 46, 48-52
  13. Johnson, J. R., Kuskowski, M. A., Gajewski, A., Soto, S., Horcajada, J. P., Jimenez, M. T., de Anta, H. & Vila, J. (2013). Extended virulence genotypes and phylogenetic background of Escherichia coli isolates from patients with cystitis, pyelonephritis, or prostatitis. The Journal of Infectious Diseases, 191, 46-50.
  14. Kawano, M., Yaguchi, K. & Osawa, R. (2016). Genotypic analyses of Escherichia coli isolated from chickens with colibacillosis and apparently healthy chickens in Japan. Microbiol Immunol, 51, 961-966.
  15. McPeak, S. J. W., Smyth, J. A. &Ball, H. J. (2005). Characterisation of avian pathogenic Escherichia coli (APEC) associated with colisepticaemia compared to fecal isolates from healthy bird. Veterinary Microbiology, 110,245-253.
  16. Moazeni, S., Mohammd Adabadi, M. R., Sadeghi, M., Moradi Shahrbabak, H., Koshkoieh, A. & Bordbar, F. (2016a). Association between UCP Gene Polymorphisms and Growth, Breeding Value of Growth and Reproductive Traits in Mazandaran Indigenous Chicken. Open Journal of Animal Sciences, 6(1), 1-8.
  17. Moazeni, S. M., Mohammadabadi, M. R., Sadeghi, M., Moradi Shahrbabak, H. & Esmailizadeh, A. K. (2016). Association of the melanocortin-3 (MC3R) receptor gene with growth and reproductive traits in Mazandaran indigenous chicken. Journal of Livestock Science and Technologies, 4(2), 51-56.
  18. Mohammadabadi, M. R., Nikbakhti, M., Mirzaee, H. R., Shandi, A., Saghi, D. A., Romanov, M. N. & Moiseyeva, I. G. (2010). Genetic variability in three native Iranian chicken populations of the Khorasan province based on microsatellite markers. Russian Journal of Genetics, 46(4), 505-509.
  19. Mohammadifar, A. & Mohammadabadi, M. R. (2017). The Effect of Uncoupling Protein Polymorphisms on Growth, Breeding Value of Growth and Reproductive Traits in the Fars Indigenous Chicken. Iranian Journal of Applied Animal Science, 7(4), 679-685.
  20. Murakamin, M., Kwaga, J. K., White, D. G. & et al. (2006). Escherichia coli cellulitis in broiler chickens: clonal relationships among strains and analysis of virulence-associated factors of isolates from diseased birds. Infect Immun, 64, 3118-3126.
  21. Murray, C., Ratcliff, R., Cameron, P. & Dixon, S. (2014). The resistance of antimicrobial agents in salmonella from veterinary sources in Australia from 1995-2011. Australian Veterinary, 63(9), 286-291.
  22. Murray, P. R., Kobayashi, G. S., Pfaller, M. A. & Rosenthal Ken, S. (2010). Medical Microbiolog    (2nd Ed.). International Edition, 227-232.
  23. Ragion, R. M., Sayers, A. R. & Woodward, M. J. (2009). The role of fimbriae and flagella in the in clonization, invasion and persistence of Escherichia coli O78: K80 in the day-old chick model. Epidemiology and Infection,124, 351-363.
  24. Ramazanzadeh, R., Farhadifar, F. & Mansouri, M. (2010). Etiology and antibiotic resistance pattern of community-acquired extended-spectrum beta-lactamas-producing gram negative isolates in Sanandaj. Research Journal of Medical Sciences, 4, 243-7.
  25. Sader, H. S. (2016). Antimicrobial activity of tetracycline tested against nosocomial bacterial pathogens from patients hospitalized in the intensive care unit.Diagnostic Microbiology and Infectious Disease, 52(3), 203-8.
  26. Shahdadnejad, N., Mohammadabadi, M. R. & Shamsadini, M. (2016). Typing of Clostridium Perfringens Isolated from Broiler Chickens Using Multiplex PCR. Genetics in the 3rd millennium, 14(4).
  27. Stordeur, P., Bree, A., Mainil, J. & Moulin-Schouleur, M. (2007). Pathogenicity of pap-negative avian Escherichia coli isolated from septicaemic lesions. Microbes Infect, 6, 637-645.
  28. Suwanich Kul, A., Paningrahy, B. & Wagner, M. (2009).Antigen relateness and partial amino acid sequence of pili of Escherichia coli serotype O1, O2 and O78 pathogenic to poultry. Avian Diseases, 31, 809-813.
  29. Van Bost, S., Jacquemin, E., Oswald, E. & Mainil, J. (2016). Multiplex PCRs for indentification of necrotoxigenic Escherichia coli. Clinical Microbiology, 41(9), 4480-4482.
  30. Zandi, E., Mohammadabadi, M. R., Ezzatkhah, M. & Esmailizadeh, A. K. (2014). Typing of Toxigenic Isolates of Clostridium Perfringens by Multiplex PCR in Ostrich. Iranian Journal of Applied Animal Science, 4, 509-514.
  31. West, B. & Zhou, B. X. (1989). Did Chicken go North? New Evidence for Domestication, World's Poultry Science Journal, 45, 205-218.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 464
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 360





سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب