تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,493 |
تعداد مقالات | 70,185 |
تعداد مشاهده مقاله | 123,323,945 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 96,531,376 |
مطالعه اثرات تجویز خوراکی نانو ذرات نقره بر برخی بافتهای حیاتی ماهی زبرا (Danio rerio) | ||
مجله تحقیقات دامپزشکی (Journal of Veterinary Research) | ||
مقاله 4، دوره 72، شماره 1، فروردین 1396، صفحه 23-32 اصل مقاله (4.63 M) | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jvr.2017.61287 | ||
نویسندگان | ||
طاهره یزدان پرست1؛ عیسی شریف پور* 2؛ مهدی سلطانی3 | ||
1گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران، تهران، ایران | ||
2بخش بهداشت و بیماریهای آبزیان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران | ||
3گروه بهداشت و بیماریهای آبزیان دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران- دکتری دامپزشکی و بیماریهای آبزیان | ||
چکیده | ||
زمینه مطالعه: در سالهای اخیر فنآوری نانو بویژه استفاده از این مواد در آبزی پروری گسترش یافته که دارای تأثیرات مثبت و منفی بر روی آبزیان است. هدف: هدف از انجام پژوهش حاضر کاربرد و اثرات استفاده مستقیم (تجویز خوراکی) نانو ذرات نقره در جیره غذایی ماهی زبرا (Danio rerio) میباشد. روش کار: برای سنجش استاندارد بودن نانو ذرات نقره مورد استفاده توسط روشهای TEM، SEM، EDX و طیف سنجی UV-Vis، در شرایط آزمایشگاهی ویژگیهای این کلوئید با موفقیت ارزیابی گردید. در مطالعه سمیت حاد (LC50 96 ساعته) تعداد 540 ماهی زبرا ( میانگین وزن g 5/0± 2)، به 9تیمار در سه تکرار که در معرض غلظتهای mg/kgfood 0، 10، 50، 100، 200، 400، 600، 800 و 1000 قرار گرفتند، تقسیم گردیدند (OECD، 2000). پس از تعیین غلظت کشنده به منظور بررسی ضایعات میکروسکوپی بافتهای کبد، روده، آبشش و کلیه ماهی زبرا از غلظت های زیر کشنده (100mg/kgfood، 400، 600 و 800) استفاده گردید. ماده مورد استفاده بصورت همگن با خوراک ماهی زبرا مخلوط شده و به مدت 8 هفته ماهیها با خوراک مخصوص هر تیمار تغذیه گردیدند. سپس به منظور سنجش نانو ذرات نقره در بافتهای ماهی از روش هضم مرطوب، با کمک دستگاه کوره گرافیتی استفاده گردید. نتایج: بر اساس نتایج آزمون های سم شناسی حاد میزان LC50 96 ساعته نانو ذرات نقره در 24، 48، 72 و 96 ساعت به ترتیب mg/kgfood 601/804 ، 637/486، 696/323، 208/195 محاسبه گردید. مهمترین ضایعات میکروسکوپی و هیستوپاتولوژیک به ترتیب در بافتهای کبد؛ (پرخونی عروق و سینوزوئیدها، دژنراسیون هپاتوسیتها)، روده؛ (همجوشی قسمتهایی از لایه های مخاطی روده، تنگ شدن مجرای روده) آبشش و در کلیه نیز مشاهده گردید. بیشترین تجمع زیستی نقره به ترتیب در بافتهای کبد، آبشش و ماهیچه اتفاق افتاد (05/۰>p). نتیجه گیری نهایی: با توجه به آسیبهای مشاهده شده، استفاده از این نانو ذرات در آبزی پروری و تغذیه ماهیان با این نانو ذرات به عنوان یک ماده ضد میکروبی و نیز رهایش آنها به محیط زیست توصیه نمیشود. | ||
کلیدواژهها | ||
نانو ذرات نقره؛ آسیب شناسی بافتی؛ LC50؛ ماهی زبرا؛ تجمع زیستی | ||
مراجع | ||
Alishahi, A., Mirvaghefi, A., Tehrani, M.R., Farahmand, H., Shojaosadati, S.A., Dorkoosh, F.A (2011) Shelf life and delivery enhancement of vitamin C using chitosan nanoparticles. Food Chem. 126: 935-940. Asharani, Y.L., Wu, Z.Y., Gong and Valiyaveettil, S. (2008) Toxicity of silver nanoparticles in zebrafish models. Nanotechnology. Volume 24, (9)-255102.Doi:10.1088/0957-4484/19/25/255102. Bhui, D.K., Bar, H., Sarkar, P., Sahoo, G.P., De, S.P., Misra, A. (2009) Synthesis and UV-vis spectroscopic study of silver nanoparticles in aqueous SDS solution. J Mol Liq. 145: 33-37. Braydich-Stolle, L., Saber, H., Schlager, J.J., Hofmann, M-C. (2005) In vitro cytotoxicity of nanoparticles in mammalian germline stem cells Toxicol Sci. 88: 412-9. Chen, R., Lok, C.N., Ho, C.M., , He, Q.Y., Yu, W.Y., Sun, H. (2007) Silver nanoparticles: partial oxidation and antibacterial activities. J Biol Inorg Chem. 12: 527-34. Federici, G., Shaw, B.J., Handy, R.D. (2007) Toxicity of titanium dioxide nanoparticles to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Gill injury, oxidative stress, and other physiological effects. Aquat Toxicol. 84: 415-430. Fu-ping, T., Zhi-guo, Z., Dun-fu, W., Dun-hu, W. (2009) Study on the effect of bionano-selenium feed additive on the breed of freshwater fish. Studies of Trace Elements and Health. 5: 31-34. Gajjar, P., Pettee, B., Britt, D.W., Huang, W. (2009) Antimicrobial activities of commercial nanoparticles against an environmental soil microbe, Pseudomonas putida KT2440. J Biol Eng. 3: 26-9. Griffitt, R.J., Griffitt, R., Weil, K.A., Hyndman. N.D., Denslow, K., Taylor, D. (2007) Exposure to copper nanoparticles causes gill injury and acute lethality in zebrafish (Danio rerio). Environ Sci Technol. 41: 8178-8186. Griffitt, R.J., Griffitt, J., Luo, J., Gao, J.C., Bonzongo, D., Barber, S. (2008) Effects of particle composition and species on toxicity of metallic nanomaterials in aquatic organisms. Environ Toxicol Chem, 27: 1972-1978. Griffitt, R.J., Griffitt, K., Hyndman, N.D., Denslow, D., Barber, S. (2009) Comparison of molecular and histological changes in zebrafish gills exposed to metallic nanoparticles. Toxicol Sci. 107: 404-415. Grosell, M., Nielsen, C., Bianchini, A. (2002) Sodium turnover rate determines sensitivity to acute copper and silver exposure in freshwater animals. Comparative Biochemistry and physiology, Part C: Toxicology & Pharmacology. 133: 287-303. Handy, R.D., Shaw, B.J. (2011) Ecotoxicity of nanomaterials to fish: challenges for ecotoxicity testing. Integr Environ Assess Manag. 3: 458-460. Handy, R.D., Henry, T.B., Scown, T.M., Johnston, B.D., Tyler, C.R. (2008) Manufactured nanoparticles: their uptake and effects on fish: a mechanistic analysis. Ecotoxicology. 17: 396-409. Kim, J.S., Kuk, E., Yu, K.N., Kim, J.H., Park, S.J., Lee, H.J. (2007) Antimicrobial effect of silver nanoparticles. Nanomed: Nanotechnology, Biology and Medicine. 3: 95-101. Kim, S.H., Woo, K.S., Liu, B.Y.H., Zachariah, M.R. (2005) Method of measuring charge distribution of nanosized aerosols. J Colloid Interface Sci. 282: 46-57, 1-23. Kittler, S., Greulich, C., Diendorf, J., Keoller, M., Epple, M. (2010) Toxicity of silver nanoparticles increases during storage because of slow dissolution under release of silver ions. Chemistry of Materials. 22: 4548-4554. Kong, H., Jang, J. (2006) One-step fabrication of silver nanoparticle embedded polymer nanofibers by radical-mediated dispersion polymerization. Chem Commun. 28: 3010-3012. Kumar, V., Cotran, R., Robbins, S.L. (1992) Basic Pathology. (5th ed.) W.B. The University of Chicago, Chicago, Illinois. Lanno, R.P., Hicks, B., Hilton, J.W. (1987) Histological observations on intrahepatocytic coppercontaining granules in rainbow trout reared on diets containing elevated levels of copper. Aquat Toxicol. 12: 291-376. Liu, S., Huang, W., Chen, S., Avivi, S., Gedanken, A. (2001) Synthesis of X-ray amorphous silver nanoparticles by the pulse sonoelectrochemical method. J Non Cryst Solids. 283: 231-236. MOOPAM. (1993) Manual of oceanographic and pollutant Analysis Methods. (3rd ed.) Kuwait, Regional Organization for the Protection of the Marine Environment, (OCoLC) 646961227. Obserdorster, E. (2004) Manufactured nanomaterials (fullerenes, C60) induce oxidative stress in the brain of juvenile largemouth bass Environ. Health Perspect. 112: 1058-62. Petit, C., Lixon, P., Pileni, M.P. (1993) In-situ synthesis of silver nanocluster in AOT reverse micelles. J Phys Chem. 97: 12974-12983. Reynolds, G.H. (2001) Environmental regulation of nanotechnology: some preliminary observations. Nano Archive. 31: 10681-10688. Richard, R.O., Handy, R., Eugenia, V.J. (2008) The ecotoxicology of nanoparticles and nanomaterials: current status, knowledge gaps, challenges, and future needs. Ecotoxicology. 17: 315-325. Rushton, E.K., Jiang, J., Leonard, S.S., Eberly, S., Castranova, V., Biswas, P. (2010) Concept of assessing nanoparticle hazards considering nanoparticle dosemetric and chemical/biological response metrics. J Toxicol Environ Health Part A. 73: 445-461. Scown, T.M., Santos, E.M., Johnston, B.D., Gaiser, B., Baalousha, M., Mitov, S. (2010) Effects of aqueous exposure to silver nanoparticles of different sizes in rainbow trout. Toxicol Sci. 115: 521-534. Shahverdi, A.R., Fakhimi, A., Shahverdi, H.R., Minaian, S. (2007) Synthesis and effect of silver Nanoparticles on the antibacterial activity of different antibiotics against Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Nanomedicine: Nanotechnology, Biology and Medicine. 3: 168-171. Sharma, V.K., Yngard, R.A., Lin, Y. (2009) Silver nanoparticles: Green synthesis and their antimicrobial activities. Adv Colloid Interface Sci. 145: 83-96. Skebo, J.E., Grabinski, C.M., Schrand, A.M., Schlager, J.J., Hussain, S.M. (2007) Assessment of metal nanoparticle agglomeration, uptake, and interaction using high-illuminating system Int. J Toxicol. 26: 135-41. Smith, C.J., Shaw, B.J., Handy, R.D. (2007) Toxicity of single walled carbon nanotubes on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): respiratory toxicity, organ pathologies, and other physiological effects. Aquat Toxicol. 82: 94-109. Snell, T.W., Hicks, D.G. (2009) Assessing Toxicity of Nanoparticles Using Brachionus manjavacas (Rotifera). Environ Toxicol. 26:146-152. Soltani, M., Esfandiary, M., Sajadi, M.M., Khazraeenia, S., Bahonar, A.R., Ahari. H. (2011) Effect of nanosilver particles on hatchability of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) egg and survival of the produced larvae. Iran J Fish Sci. 10: 167-176. Tian, J., Wong, K.K., Ho, C.M., Lok, C.N., Yu, W.Y., Che, C.M. (2007) Topical delivery of silver nanoparticles promotes wound healing. J Med Chem. 2: 129-36. Wang, Y., Li, J. (2011) Effects of chitosan nanoparticles on survival, growth and meat quality of tilapia, Oreochromis nilotica. Nanotoxicology. 5: 425-431. Webb, N.A., Wood, C.M. (1998) Physiological analysis of the stress response associated with acute silver nitrate exposure in freshwater rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Environ Toxicol Chem. 17: 579-88. Yoon, K.Y., Hoon-Byeon, J., Park, J.H., Hwang, J. (2007) Susceptibility constants of Escherichia coli and Bacillus subtilis to silver and copper nanoparticles. J Sci Total Environ. 373: 572-5. Zhuo, P.F., Yu, X.C., Du, Q., Song, K.S., He, Z.H. (2011) Photocatalytic degradation of ammonia nitrogen in aquaculture wastewater by using nano-TiO2. Adv Mat Res. 197-198: 774-779. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,164 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,742 |