سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,504
تعداد مشاهده مقاله124,123,133
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,231,193
سلطانی, الهام, حسین زاده, عبدالهادی, عباسی, علی رضا. (1395). ارزیابی تغییرپذیری‌های بیوشیمیایی و مولکولی شماری از ژنوتیپ‌های لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) در شرایط تنش خشکی. , 47(3), 401-411. doi: 10.22059/ijfcs.2016.60120
الهام سلطانی; عبدالهادی حسین زاده; علی رضا عباسی. "ارزیابی تغییرپذیری‌های بیوشیمیایی و مولکولی شماری از ژنوتیپ‌های لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) در شرایط تنش خشکی". , 47, 3, 1395, 401-411. doi: 10.22059/ijfcs.2016.60120
سلطانی, الهام, حسین زاده, عبدالهادی, عباسی, علی رضا. (1395). 'ارزیابی تغییرپذیری‌های بیوشیمیایی و مولکولی شماری از ژنوتیپ‌های لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) در شرایط تنش خشکی', , 47(3), pp. 401-411. doi: 10.22059/ijfcs.2016.60120
سلطانی, الهام, حسین زاده, عبدالهادی, عباسی, علی رضا. ارزیابی تغییرپذیری‌های بیوشیمیایی و مولکولی شماری از ژنوتیپ‌های لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) در شرایط تنش خشکی. , 1395; 47(3): 401-411. doi: 10.22059/ijfcs.2016.60120

ارزیابی تغییرپذیری‌های بیوشیمیایی و مولکولی شماری از ژنوتیپ‌های لوبیا (Phaseolus vulgaris L.) در شرایط تنش خشکی

علوم گیاهان زراعی ایران
مقاله 6، دوره 47، شماره 3، آذر 1395، صفحه 401-411    اصل مقاله (790.7 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijfcs.2016.60120
نویسندگان
الهام سلطانی1؛ عبدالهادی حسین زاده* 2؛ علی رضا عباسی2
1دانشجوی سابق کارشناسی ارشد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
2دانشیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
چکیده
به‌منظور بررسی­ تأثیر بیوشیمیایی و مولکولی تحمل به تنش خشکی ژنوتیپ­های K-S-31167، GE-288 و Naz به‌دست‌آمده از غربالگری آزمون جوانه­زنی در سطوح تنش خشکی 50 و 25 درصد ظرفیت زراعی به همراه شاهد در مرحلۀ گیاهچه­ای بررسی شد. تنش خشکی پنج هفته پس از کاشت بذر اعمال و ده روز پس از اعمال تنش نمونه­گیری از سه ­برگچۀ دوم انجام شد. نتایج نشان داد که تنش خشکی باعث تغییر در نشت یونی، پرولین و کربوهیدرات‌های محلول می­شود. ژنوتیپ متحمل K-S-31167 نسبت به دو ژنوتیپ به نسبت متحمل  GE-288و حساس Naz نشت یونی کمتر داشت که نشان‌دهندۀ پایداری غشایی بالاتر این ژنوتیپ در شرایط تنش است. محتوای پرولین بیشتر در ژنوتیپ K-S 31167 نشان‌دهندۀ سامانة پاداکسندگی (آنتی‌اکسیدانی) قوی‌تر این ژنوتیپ نسبت به دو ژنوتیپ GE-288 و Naz است. نتایج به‌دست‌آمده از سنجش کربوهیدرات­های محلول و بیان ژن­های اینورتاز واکوئلی و سوکروز سنتاز نیز نشان داد که افزایش و کاهش بیان این ژن­ها در پاسخ به تنش خشکی به ترتیب باعث افزایش و کاهش فعالیت آنزیم­های اینورتاز و سوکروز سنتاز و در نهایت افزایش و کاهش غلظت مواد محلول در یاخته­ها شده و به­عنوان یک نشانة سوخت‌وسازی (متابولیک) در پاسخ به تنش عمل می­کند.
کلیدواژه‌ها
اینورتاز واکوئلی؛ بیان ژن؛ تنش خشکی؛ سوکروز سنتاز؛ کربوهیدرات‌های محلول؛ لوبیا
مراجع
  1. Ashraf, M. & Foolad, M. (2007). Roles of glycine betaine and proline in improving plant abiotic stress resistance. Journal of Environmental and Experimental Botany, 59, 206-216.
  2. Bajji, M., Kinet, J. M. & Lutts, S. (2002). The use of the electrolyte leakage method for assessing cell membrane stability as a water stress tolerance test in durum wheat. Journalof Plant Growth Regulation, 36(1), 61-70.
  3. Barker, L., Kuhn, C., Weise, A., Schulz, A., Gebhardt, C., Hirner, B., Hellman, H., Schulze, W., Ward, J. M. & Frommer, W. B. (2000). SUT2, a putative sucrose sensor in sieve elements. Journalof Plant Cell, 12, 1153-1164.
  4. Bates, L. S., Waldren, R. P. & Teare, L. D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Journalof Plant and Soil, 39, 205-208.
  5. Bewley, J. D. & Larsen, K. M. (1982). Differences in the responses to water stress of growing and non-growing regions of maize mesocotyls: Protein synthesis on total, free and membrane-bound polyribosome fractions. JournalofExperimentalBotany, 33(134), 406-415.
  6. Borges, A., Tsai, S. M., Gregorio, D. & Caldas, D.G. (2012). Validation of reference genes for RT-qPCR normalization in common bean during biotic and abiotic stresses. Journal of Plant Cell Reports, 31(5), 827-838.
  7. Cheikh, N. & Brenner, M. L. (1992). Regulation of key enzymes of sucrose biosynthesis in soybean leaves: Effect of dark and light conditions and role of gibberellins and abscisic acid. Journal of Plant Physiology, 100, 1230–1237.
  8. Comis, D. B., Tamayo, D. M. & Alonso, J. M. (2001). Determination of monosaccharids in cider by reversed-phase liquid chromatography. Journal of Analytics Chimica Acta, 436, 173-180.
  9. Crow, J. H., Hoekstra, F. A. & Crow, L. M. (1992). Anhydrobiosis. Annual Review plant physiology, 54, 579-599.
  10. Demin, I. N., Deryabin, A. N., Sinkevich, M. S. & Trunova, T. I. (2008). Insertion of Cyanobacterial desA Gene Coding for Δ12_Acyl_Lipid Desaturase Increases Potato Plant Resistance to Oxidative Stress Induced by Hypothermia. Russian Journal of PlantPhysiology, 55, 639-648.
  11. FAO Statistical Yearbook. (2013). World Food and Agriculture.
  12. Franca, M. G. C., Thi, A. T. P., Pimentel, C., Rossiello, R. O. P., Zuily-Fodil, Y. & Laffray, D. (2000). Differences in growth and water relations among Phaseolus vulgaris cultivars in response to induced drought stress. Journal of Environmental and Experimental Botany,43(3), 227-237.
  13. Geigenberger, P., Reimholz, R., Geiger, M., Merlo, L., Canale, V. & Stitt, M. (1997). Regulation of sucrose and starch metabolism in potato tubers in response to short-term water deficit. Journal of Planta, 201, 502–518.
  14. Gunes, A., Inal, A., Adak, M. S., Bagci, E. G., Cicek, N. & Eraslan, F. (2008). Effect of drought stress implemented at pre-or post-anthesis stage on some physiological parameters as screening criteria in chickpea cultivars. Russian Journal of Plant Physiology, 55(1), 59-67.
  15. Gupta, A. k. & Kaur, N. ( 2005). Sugar signalling and gene expression in relation to carbohydrate metabolism under abiotic stresses in plants. Journal of Biosciences, 30(5), 101-112.
  16. Kameli, A. & Losel, D. M. (1996). Growth and sugar accumulation in durum Wheat plants under water stress. Journal of New Phytologist, 132, 57-62.
  17. Krasensky, J. & Jonak, C. (2012). Drought, salt, and temperature stress-induced metabolic rearrangements and regulatory networks. Journal of Experimental Botany, 10(1093), 1-16.
  18. Lalonde, S., Boles, E., Hellmann, H., Barker, L., Patrick, J. W., Frommer, W. B. & Wood, J. M. (1999). The dual action of sugar carriers: Transport and sugar sensing. Journal of Plant Cell, 11, 707-726.
  19. Levitt, J. (1980). Responses of plants to environmental stress: Water, radiation, salt and other stresses, (2nd ed.). Academic Press, NewYork, PP: 3-211.
  20. Lutts, S., Kinet, J. M. & Bouharmont, J. (1996). NaCl-induced senescence in leaves of rice (oryza sativa L.) cultivars differing in salinity resistance. Journal AnnalsofBotany, 78, 389-398.
  21. Molinari, H. B. C., Marur, C. J., Bespalhok, J. C., Kobayashi, A. K., Pileggi, M., Pereira, F. P. P. & Vieira, L. G. E. (2004). Osmotic adjustment in transgenic Citrus rootstocks (Carrizo citrange) overproducing proline. Journal of Plant Science, 167, 1375-1381.
  22. Movahedie Dehnavi, M., Modarese Sanavi, S. A. M., Sorushzadeh, A. & Jalali, M. (2004). Changes of proline, total soluble sugar, chlorophyll (spad) and chlorophyll fluorescence in varieties of autumn Carthamus in effect of drought stress and spray of Zn and Mn. DesertJournal, 9, 93-110. (in Persian with English Summary).
  23. Nanjo, T., Kobayashi, M., Yoshiba, Y., Kakubari, Y., Yamaguchi-Shinozaki, K. & Shinozaki, K. (1999). Antisense suppression of proline degradation improves tolerance to freezing and salinity in Arabidopsis thaliana. Febs Letters, 461(3), 205-210.
  24. Naya, L., Ladrera, R., Ramos, J., Gonzalez, E. M., Arrese-Igor, C., Minchin, F. R. & Becana, M. (2007). The response of carbon metabolism and antioxidant defenses of alfalfa nodules to drought stress and to the subsequent recovery of plants. Journal of Plant Physiology, 144, 1104-1114.
  25. Price, J., Laxmi, A., Martin, S. K. & Jang, J. C. (2004). Global transcription profiling reveals multiple sugar signal transduction mechanisms in arabidopsis. Journal of plant Cell,16, 2128-2150.
  26. Roitsch, T. (1999). Source-sink regulation by sugar and stress. Journal of Current Opinion in Plant Biology, 2, 198-206.
  27. Shin, K. S., Chakrabarty, D. & Paek, K. Y. (2002). Sprouting rate, change of carbohydrate contents and related enzymes during cold treatment of lily bulblets regenerated in vitro. Scientia Horticulturae, 96(1), 195-204.
  28. Singh, S. P. (2007). Drought resistant in race Durango dry bean landraces and cultivars. Journal of agronomy, 99, 1219-1225.
  29. Sukumaran, N. P. & Weiser, C. J. (1972). An excised leaflet test for evalu- ating potato frost tolerance. Hortscience, 7, 467-468.
  30. Valliyodan, B. & Nguyen, H. T. (2006). Undertanding regulatory networks and engineering for enhanced drought tolerance in plants. Journal of Current Opinion in Plant Biology, 9, 189-195.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,076
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 991


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب