سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,110,233
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,213,932
فرجی, آفاق, همتی, رقیه, معرفت, علیرضا. (1394). کنترل بیولوژیک عوامل قارچی عمدۀ پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا در استان زنجان با استفاده از باکتری‌های آنتاگونیست. , 46(2), 317-329. doi: 10.22059/ijpps.2015.57387
آفاق فرجی; رقیه همتی; علیرضا معرفت. "کنترل بیولوژیک عوامل قارچی عمدۀ پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا در استان زنجان با استفاده از باکتری‌های آنتاگونیست". , 46, 2, 1394, 317-329. doi: 10.22059/ijpps.2015.57387
فرجی, آفاق, همتی, رقیه, معرفت, علیرضا. (1394). 'کنترل بیولوژیک عوامل قارچی عمدۀ پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا در استان زنجان با استفاده از باکتری‌های آنتاگونیست', , 46(2), pp. 317-329. doi: 10.22059/ijpps.2015.57387
فرجی, آفاق, همتی, رقیه, معرفت, علیرضا. کنترل بیولوژیک عوامل قارچی عمدۀ پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا در استان زنجان با استفاده از باکتری‌های آنتاگونیست. , 1394; 46(2): 317-329. doi: 10.22059/ijpps.2015.57387

کنترل بیولوژیک عوامل قارچی عمدۀ پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا در استان زنجان با استفاده از باکتری‌های آنتاگونیست

دانش گیاهپزشکی ایران
مقاله 14، دوره 46، شماره 2، مهر 1394، صفحه 317-329    اصل مقاله (704.59 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2015.57387
نویسندگان
آفاق فرجی* 1؛ رقیه همتی2؛ علیرضا معرفت3
1کارشناس ارشد ، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه زنجان
2استادیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه زنجان
3دانشیار، گروه گیاه‌پزشکی، دانشگاه رازی کرمانشاه
چکیده
پوسیدگی ریشه و طوقۀ لوبیا ناشی از Rhizoctonia solani, Fusarium solaniوFusarium oxysporum  از بیماری‌های مهم لوبیا در استان زنجان است. کاربرد عوامل بیوکنترل بومی در تلفیق با روش‌های شیمیایی از روش‌های مدیریت مؤثر برای کاهش خسارات این بیماری است. به دلیل تأثیر هم‌زمان چندین قارچ در ایجاد این بیماری و امکان تأثر سینرژیستی عوامل بیماری‌زا، تأثیربخشی روش‌های مدیریتی بر آلودگی‌های هم‌زمان گیاه، حائز اهمیت و قابل بررسی است. در اوایل مردادماه 1390، جداسازی باکتری‌های آنتاگونیست از ریزوسفر گیاهان لوبیای منطقه انجام گرفت. دو جدایه از هر یک از سه گونۀ قارچی بیماری‌زا تهیه شد. دو جدایۀ رایزوباکتریایی با توانایی بالا در تولید آنتی‌بیوتیک، مواد فرار، سیانید هیدروژن و آنزیم پروتئاز علیه هر سه بیمارگر به عنوان بهترین جدایه‌ها برای آزمایش‌های گلخانه‌ای انتخاب شدند. نتایج گلخانه‌ای نشان داد که تیمار بذر با باکتری‌های آنتاگونیست اثر معناداری در کاهش شدت بیماری و افزایش شاخص‌های رشدی لوبیا در تیمارهای جداگانه و هم‌زمان قارچ‌های بیمارگر داشت. رابطۀ سینرژیستی بین هر سه بیمارگر اثبات شد. در این میان، اثر سینرژیستی بین F. oxysporumوR. solani آشکارتر بود. اثر سینرژیستی در علائم برگی آشکارتر از علائم ریشه بود.
 
 
 
 
کلیدواژه‌ها
اثر سینرژیستی؛ بیوکنترل؛ ریزوباکتری؛ عوامل قارچی؛ لوبیا
مراجع
 

  1. Anonymous. (2014). Statistical year book of Agriculture. Ministry of Jihade Agriculture. Available at: http://amar.maj.ir/Portal/File/ShowFile.aspx?ID=dc3a745e-6a35-4912-a6cd-edabe7d66b764. (in Farsi)
  2. Omati, F., Sharifi-Tehrani, A., Mohammadi, M., Hedjaroud, G.A. & Zad, J. (2004). Antagonistic effects of Bacillus and Peseudomonas isolates on Phytophthora capsici the causal agent of pepper damping-off.  Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 4, 45-52. (in Farsi)
  3. Abeysinghe, S. (2007). Biological control of Fusarium solani f. sp. Phaseoli the causal agent of root rot of bean using Bacillus subtilis CA32 and Trichoderma harzianum RU0. Ruhuna Journal of Sciences, 2, 82-88.
  4. Ahmadzadeh, M., Sharifi-Tehrani, A., Hejaroud, G.A., Zad, J., Okhovat, M., Mohammadi, M. (2003). Effects of Fluorescent Pseudomonads on Pythıum ultımum casual agent of seed rot of common bean. Iranian Journal of Plant Protection Science, 34(4), 793-807. (in Farsi)
  5. Alstron, S. (1987). Factors associated with detrimental effects of rhizobacteria on plant growth. Plant and Soil, 102, 3-9.
  6. Azcón-Aguilar, C. & Barea, JM. (1996). Arbuscular mycorrhizas and biological control of soil-borne plant pathogens-an overview of the mechanisms involved. Mycorrhiza, 6, 457-464.
  7. Balali, GR. & Kowsari, M. (2004). Pecticzymogram variation and pathogenicity of Rhizoctonia solani AG-4 to bean (Phaseolus vulgaris) isolates in Isfahn, Iran. Mycopathologia, 158, 377-384.
  8. Balali, GR., Neatef, SM. & Scott, DL. (1995). Anastomosis group and pathogenicity of isolates of Rhizoctonia. Plant Pathology, 44, 1050-1057.
  9. Bilgi, VN., Bradley, CA., Khot, SD., Grafton, KF. & Rasmussen, JB. (2008). Response of dry bean genotypes to Fusarium root rot, caused by Fusarium solani f. sp. phaseoli, under field and controlled conditions. Plant Disease, 92, 1197-1200.
  10. Castric, KF. & Castric, P. (1983). Method for rapid detection of cyanogenic bacteria. Applied Environmental Microbiology, 45, 701-702.
  11. Datnoff, LE. & Sinclair, JB. (1988). The interaction of Fusarium oxysporum and Rhizoctonia solani in causing root rot of soybeans. Phytopathology, 78, 771-777.
  12. Fahy, PC. & Hayward, AC. (1983). Media and Methods for isolation and diagnostic test. In Plant bacterial diseases a diagnostic guide (Eds.). Academic Press Sydney Publishing.
  13. Fawcett, HS. (1931). The importance of investigations on the effects of known mixtures of organisms. Phytopathology, 21, 545-548.
  14. Hagedorn, C., Gould, WD. & Bradinelli, RT. (1989). Rhizobacteria of cotton and their repression of seedling disease pathogens. Applied Environmental Microbiology, 55, 2793-2797.
  15. Hartman, GL., Huang, YH., Nelson, RL. & Noel, GR. (1997). Germplasm evaluation of Glycine max for resistance to Fusarium solani, the causal organism of sudden death syndrome. Plant Disease, 81, 515-518.
  16. Jayaraman, J., Parthasarathi, T. & Radhakrishnan, NV. (2007). Characterization of a Pseudomonas fluorescens strain from tomato rhizosphere and its use for integrated management of tomato damping-off. Biocontrol, 52, 683-702.
  17. Kim, DS., Cook, RJ. & Weller, DM. (1997). Bacillus sp. L324-92 for biological control of three root diseases of wheat grown with reduced tillage. Phytopathology, 87, 551-558.
  18. Little, TM. & Hills, FJ. (1978). Agricultural experimentation: design and analysi ( pp. 368). John Wiley and Sons Publishing, New York.
  19. Nakkeeran, S., Renukadevi, P. & Marimuthu, T. (2005). Antagonistic potentiality of Trichoderma viride and assessment of its efficacy for the management of cotton root rot. Archıves of Phytopathology and Plant Protection, 38, 209-225.
  20. Naseri, B. (2008). Root rot of common bean in Zanjan, Iran: major pathogens and yield loss estimates. Australasian Plant Pathology, 37, 546-551.
  21. Pieczarka, DJ. & Abawi, GS. (1978). Effect of interaction between Fusarium, Pythium and Rhizoctonia on severity of bean root rot. Phytopathology, 68, 403-408.
  22. Schaad, NW., Jones, JB. & Chun, W. (2001). Laboratory guid for identification of plant pathogenic bacteria. (3rd ed.). St. Paul, MN, APS Press Publishing.
  23. Scher, FM., Zeigle, JS. & Kloepper, JW. (1983). A method for assaying the root colonizing capacity of bacteria on maize. Canadian Journal of Microbiology, 69, 686-690.
  24. Sunish Kumar, R., Ayyadurai, N., Pandiaraja, P., Reddy, AV., Venkateswarlu, Y., Prakash, O. & Sakthive, N. (2005). Characterization of antifungal metabolite produced by a new strain Pseudomonas aeroginosa PUPa3 that exhibits broad-spectrum antifungal activity and biofertilizing traits. Journal of Microbiology, 98, 145-154.
  25. Wang, H., Hwang, SF., Chang, KF., Turnbull, GD. & Howard, RJ. (2003). Suppression of important pea diseases by bacterial antagonists. Biocontrol, 48, 447-460.
  26. Weller, DM. (1988). Biological control of soilborne plant pathogens in the rhizosphere with bacteria. Annual Review of Phytopathology, 26, 379-407.
  27. Weller, DM. & Cook, RJ. (1983). Suppression of take‑all of wheat by seed treatments with fluorescent Pseudomonads. Phytopathology, 73, 463‑469.
  28. Xu, GW. & Gross, DC. (1986). Field evaluation of the interactions among Pseudomonas fluorescens, Erwinia carotovora and potato. Phytopathology, 76, 423-430.

 

 

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,622
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 902


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب