تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,533 |
تعداد مقالات | 70,518 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,133,115 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,239,148 |
تاثیر محیط کشت ریزنمونه و سیتوکینینهای مختلف در ریزازدیادی کاج مطبق (Araucaria excelsa R.) | ||
به نژادی گیاهان زراعی و باغی | ||
مقاله 1، دوره 3، شماره 1، فروردین 1394، صفحه 1-12 اصل مقاله (661.8 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
میترا تقی پور1؛ رحیم حداد* 2؛ مریم قنادنیا3 | ||
1کارشناس ارشد بیوتکنولوژی کشاورزی، گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین | ||
2دانشیار گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین | ||
3استادیار گروه بیوتکنولوژی کشاورزی، دانشکدۀ فنی و مهندسی، دانشگاه بین المللی امامخمینی(ره)، قزوین | ||
چکیده | ||
بهمنظور بررسی اثر محیط کشت، ریزنمونه و سیتوکینینها بر کاج مطبق آزمایشی بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در 3 تکرار در دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره) قزوین در سال 1392 اجرا شد. کاج مطبق (Araucaria excelsa) از خانوادۀ آروکاریاسه[1] و بومی جزیرۀ نورفک در استرالیاست. این گیاه بهمنزلۀ یک گیاه زینتی چوبی، ارزش تجاری زیادی دارد. ازآنجاکه این گیاه از طریق بذر تکثیر میشود، دستیابی به یک روش ریزازدیادی برای آن یکی از اهداف مهم در کشت بافت گیاهان چوبی به حساب میآید. بهمنظور بررسی تأثیر محیط کشتها و سیتوکینینها طی فرایند اندامزایی مستقیم برای القای جوانههای جانبی در ریزنمونه[2]ها، از 3 سیتوکینین مختلف (تیدیازرون[3]، کاینتین[4] و 2ip) و 4 محیط کشت (WPM، BE، MS½ و TE) استفاده شد. ریزنمونۀ ساقۀ میانی بهترین ریزنمونه، 2ip بهمنزلۀ بهترین هورمون در القای جوانههای جانبی و همچنین محیط TE و WPM بهترین محیطها برای صفات بررسیشده و ریزازدیادی کاج مطبق هستند. نتایج همبستگی نیز نشاندهندۀ همبستگی مثبت بین تعداد جوانهها، طول جوانهها و 3 شاخص کلروفیل بررسیشده بودند. بهطورکلی، تولید ریزساقهها به نوع هورمون بهکاررفته و محیط کشت بستگی دارد. نتایج ریشهزایی نشان داد که تنها هورمون BAP قادر به تولید ریشه در ریزساقهها بود. لازم به یادآوری است که بررسی مقدار کلروفیل و همچنین تعیین بهترین محیط کشت، برای اولینبار در کاج مطبق گزارش میشود. [1]. Araucariaceae [2]. Explant [3]. Thidiazuron [4]. Kinetin | ||
کلیدواژهها | ||
آروکاریا؛ اندامزایی؛ ریشهزایی؛ کلروفیل؛ هورمون | ||
مراجع | ||
1. اثنیالعشری م، کریمی ا و محمودپور ع (1386) «تولید پینه از ریزنمونههای کاج مطبق ((Araucaria excelsa L. در شرایط درونشیشهای». علوم کشاورزی ایران. 38(4): 659ـ 664. 2. تقیپور م (1392) ریزازدیادی کاج مطبق (.Araucaria heterophylla L) از طریق جنینهای زایشی. دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره). قزوین. پایاننامۀ کارشناسی ارشد. 3.محمودی ح (1388) «جنینزایی سوماتیکی در کاج مطبق (.Araucaria heterophylla L)». دانشگاه بینالمللی امامخمینی(ره). قزوین. پایاننامۀ کارشناسی ارشد. 4.ArnonDI (1949) Copper enzymes in isolated chloroplasts. Poly phenol oxide in (Beta vulgaris).Plant Physiology. 24: 1-15.
5. Brinker M, Zyl LV, Liu W, Craig D, SederoffRR, Clapham DH and Arnold SV(2004) Microarray Analyses of Gene Expression during Adventitious Root Development in Pinuscontorta. Plant Physiology135 (3): 1526-1539.
6. Burrows G, DoleyDD, Haines RJ and Nikles DG (1988) In vitro propagation of Araucaria cunninghamii and other species of the Araucariaceae via axillary meristems. Australian Journal of Botany. 36(6): 665-676.
7.Cortizo M, De Diego N, MoncaleánP, and Ordás RJ (2009) Micropropagation of adult stone pine (Pinus pinea L.). Trees Structure and Function. 23(4): 835-842.
8. De Diego N, Montalbán I and Moncaleán P (2010) In vitro regeneration of adult Pinus sylvestris L. trees. South African Journal of Botany. 76(1): 158-162.6.
9.Dobranszki Jand DrienyovszkiNM (2014) Cytokinin-induced changes in the chlorophyll content and fluorescence of in vitro apple leaves. Journal of Plant Physiology.171 (16): 1472–1478.
10.Humanez A, Blasco M, Brisa C, Segura J and Arrillaga I (2011) Thidiazuron enhances axillary and adventitious shoot proliferation in juvenile explants of Mediterranean provenances of maritime pine (Pinus pinaster). In vitro Cellular & Developmental Biology Plant. 1-9.
11. Kaul K and Sabharwal P (1971) Effects of sucrose and kinetin on growth and chlorophyll synthesis in tobacco tissue cultures. Plant Physiology. 47(5): 691-695.
12. Lloyd G and McCown B (1980) Commercially feasible micropropagation of mountain laurel, Kalmia latifoliaby use of shoot tip culture. Proc. Intl. Plant Prop. Soc., 30: 421-427.
13.Murashing T and Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15:473-479.
14. Murthy B, Murch S and Saxena P (1998) Thidiazuron: a potent regulator of in vitro plant morphologenesis. In vitro Cellularand Developmental Biology Plant. 34: 267-275.
15.RagoneziC,KlimaszewskaK, CastroMR, LimaM, de OliveiraP and ZavattieriMA (2010) Adventitious rooting of conifers: influence of physical and chemical factors.Trees. 24(6): 975-992.
16.Sabovljevi A, Sabovljevi M and Vukojevi V (2010) Effects of different cytokinins onchlorophyll retentionin the moss Bryumargenteum(Bryaceae). PeriodicumBologorum. 112 (3): 301–305.
17.Sarmast KM, Salehi H and Khosh- Khui M (2009) using plagiotropic shoot explants in tissue culture of Araucaria excelsa R. Br. var. glauca. Advances in Environmental Biology. 3(2): 191-194.
18.Sarmast KM, Salehi H Ramezani A, Abolimoghadam AA Niazi A andKhosh-Khui, M (2012) RAPD fingerprint to appraise the genetic fidelity of in Vitro propagated Araucaria excelsa R. Br. var. glauca plantlets. Molecular Biotechnology.1-8.
19.Sarmast KM, Salehi H and Khosh- Khui M (2012) Micropropagation of Araucaria excelsa R. Br. var. glauca Carrière from orthotropic stem explants. Physiology and Molecular Biology of Plants. 1-7.
20. Santo ALW, Silveira V, Steiner N, Vidor M and Guerra M.P (2002) Somatic embryogenesis in parana pine (Araucaria angustifolia (Bert.) O. Kuntze). Brazilian Archives of Biology and Technology. 45(1): 97-106.
21. Stojicic D, Budimir S and Ćulafić L (1999) Micropropagation of Pinus heldreichii. Plant Cell, Tissue and Organ Culture.59 (2): 147-150.
22. Sul IIIW and Korban SS (2004) Effects of salt formulations, carbon sources, cytokinins, and auxin on shoot organogenesis from cotyledons of Pinus pinea L. Plant Growth Regulation. 43(3): 197-205.
23. Tang W, Newton RJ and Charles TM (2006) Plant regeneration through multiple adventitious shoot differentiation from callus cultures of slash pine (Pinus elliottii). Journal of Plant Physiology. 163 (1): 98-101.
24. Tang W, Newton RJ (2005) Peroxidase and catalase activities are involved in direct adventitious shoot formation induced by thidiazuron in eastern white pine (Pinus strobus L.) zygotic embryos. Plant Physiology and Biochemistry. 43(8): 760-769.
25. Vieira LN, Santa CC Fraga HPF, Santos ALW, SteinmacherDA, Schlogl PS, Silveira V, Steiner N, Floh EIS and Guerra MP (2012) Glutathione improves early somatic embryogenesis in Araucaria angustifolia (Bert) O. Kuntze by alteration in nitric oxide emission. Plant Science.DOI: 10.1016/j.plantsci.2012.06.011.
26. Yew CK, Balakrishnan B, Sundasekaran J and Subramaniam S (2010) The effect of cytokinins on invitro shoot length and multiplication of Hymenocallislittoralis. Journal of Medicinal Plants Research 4(24): 2641-2646.
27. Zhang H, Horgan KJ, Reynolds PHS and Jameson PE (2010) 6-Benzyladenine metabolism during reinvigoration of mature Pinus radiata buds in vitro. Tree Physiology. 30(4): 514-526. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,489 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,169 |