سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,106,949
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,211,967
طباطبایی پور, سیده زهرا, معینی, احمد, ثابت, محمد صادق. (1394). بررسی اثر حفاظت فراسرد به‌روش شیشه‏ای کردن بر شاخص‏های رشد و نمو جنین‏های زیگوتی برنج. , 46(1), 115-122. doi: 10.22059/ijfcs.2015.54051
سیده زهرا طباطبایی پور; احمد معینی; محمد صادق ثابت. "بررسی اثر حفاظت فراسرد به‌روش شیشه‏ای کردن بر شاخص‏های رشد و نمو جنین‏های زیگوتی برنج". , 46, 1, 1394, 115-122. doi: 10.22059/ijfcs.2015.54051
طباطبایی پور, سیده زهرا, معینی, احمد, ثابت, محمد صادق. (1394). 'بررسی اثر حفاظت فراسرد به‌روش شیشه‏ای کردن بر شاخص‏های رشد و نمو جنین‏های زیگوتی برنج', , 46(1), pp. 115-122. doi: 10.22059/ijfcs.2015.54051
طباطبایی پور, سیده زهرا, معینی, احمد, ثابت, محمد صادق. بررسی اثر حفاظت فراسرد به‌روش شیشه‏ای کردن بر شاخص‏های رشد و نمو جنین‏های زیگوتی برنج. , 1394; 46(1): 115-122. doi: 10.22059/ijfcs.2015.54051

بررسی اثر حفاظت فراسرد به‌روش شیشه‏ای کردن بر شاخص‏های رشد و نمو جنین‏های زیگوتی برنج

علوم گیاهان زراعی ایران
مقاله 11، دوره 46، شماره 1، فروردین 1394، صفحه 115-122    اصل مقاله (360.16 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijfcs.2015.54051
نویسندگان
سیده زهرا طباطبایی پور1؛ احمد معینی* 2؛ محمد صادق ثابت3
1دانشجوی کارشناسی ارشد اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
2دانشیار، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
3استادیار، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران
چکیده
با توجه به اهمیت ژرم‏پلاسم ارقام برنج ایرانی و کاربرد آن در برنامه‏های اصلاحی و تبادل مواد ژنتیکی، اجرای تحقیقاتی در خصوص حفاظت این منابع ژنتیکی ارزشمند، ضروری است. در این زمینه، روش نوین حفاظت فراسرد که نگهداری نمونه‏های زیستی در ازت مایع با دمای 196- درجة سانتی‌گراد است، کاربرد دارد. ازاین‌رو در پژوهش حاضر، حفاظت فراسرد جنین‏های زیگوتی هفت رقم برنج بومی و اصلاح‏شده به‌روش شیشه‏ای‏کردن بررسی شده است. در این تحقیق، جنین‏ها به‌‏مدت 1، 7 و 30 روز در ازت مایع نگهداری شدند. پس از گذراندن دورة انجماد، جنین‏ها از ازت مایع خارج شده و به‌مدت 2 دقیقه در دمای 40 - 38 درجة سانتی‌گراد قرار داده شدند و سپس به محیط کشت MS انتقال یافتند. در بین ارقام مورد مطالعه برای صفت درصد جوانه‏زنی نهایی، تفاوت معنی‏داری وجود نداشت؛ اما در صفت شاخص بنیه در سطح 5 درصد و در سایر صفات در سطح 1 درصد تفاوت معنی‏دار وجود داشت. در اکثر صفات مورد بررسی، بین مدت زمان‏های نگهداری در ازت مایع تفاوت معنی‏داری وجود نداشت؛ ولی نسبت به زمان شاهد کاهش معنی‏دار بود. بررسی سایر روش‏ها و تیمارهای حفاظت فراسرد ژرم‏پلاسم ارقام برنج بومی ایران توصیه می‏شود.
کلیدواژه‌ها
جنین زیگوتی؛ حفاظت فراسرد؛ ژرم‏پلاسم برنج
مراجع
  1. Amiri Ardakani, M. (2007). Indigenous Knowledge in Rice Farming. Esfahan: Sabouh Publication. (In Farsi)
  2. Aryakia, E., Ramazani, H., Ghafoori, H., Dolatyari, A., Naghavi M. R. & Shahzadeh fazeli S. A. (2012). The effect of cryopreservation on germination and growth indices of some orthodox seeds. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 19, 218-230. (In Farsi)
  3. Arzani, A. (2004). Breeding Field Crops (Authored by: Sleper & Poehlman). 3th edition. Isfahan University of Technology Publication. (In Farsi)
  4. Benson, E. E.(2008). Cryopreservation of phytodiversity: a critical appraisal of theory and practice. Critical Reviews in Plant Sciences, 27, 141-219.
  5. Beardmore, T. & Whittle, C. A. (2005). Induction of tolerance to desiccation and cryopreservation in silver maple (Acer saccharinum) embryonic axes. Tree Physiology,25, 965-972.
  6. Brunakova, K., Zamecnik, J., Urbanova, M. & Cellarova, E.(2011). Dehydration status of ABA-treated and cold-acclimated Hypericum perforatum L. shoot tips subjected to cryopreservation. Thermochimica Acta, 525, 62-70.
  7. Chmielarz, P. (2009). Cryopreservation of dormant European ash (Fraxinus excelsior) orthodox seeds. Tree Physiology, 29, 1279-1285.
  8. Gale, S., John, A., Harding, K. & Benson, E.(2008). Developing cryopreservation for Picea sitchensis (sitka spruce) somatic embryos: a comparison of vitrification protocols. CryoLetters, 29, 135-144.
  9. Gonzalez-Arnao, M. T. & Engelmann, F. (2006). Cryopreservation of plant germplasm using encapsulation-dehydration technique: Review and case study on sugarcane. CryoLetters, 27, 155-168.
  10. Harding, K. (1996). Approaches to assess the genetic stability of plants recovered from in vitro culture. In: Normah, M. N., Narimah, M. K. & Clyde, M. M. (eds). In-vitro conservation of plant genetic resources. University Kebangsaan, Malaysia, pp 135-168.
  11. Harding, K. & Benson, E. E. (1994). A study of growth, flowering and tuberisation in plants derived from cryopreserved potato shoot-tips: implications for in vitro germplasm collections. CryoLetters, 15, 59-66.
  12. Hatami1, F., Jebelli, M., Naderi Shahab, M., Tabari, M. & Jafari, A. A. (2010). Cryopreservation of Acer monspessulanum seeds. Iranian Journal of Rangelands and Forests Plant Breeding and Genetic Research, 18(1), 12-23.
  13. Ishikawa, K., Harata, K., Mii, M., Sakai, A., Yoshimatsu, K. & Shimomura, K.(1997). Cryopreservation of zygotic embryos of a Japanese terrestrial orchid (Bletilla striata) by vitrification. Plant Cell Reports,16, 754-757.
  14. Jafari-Mofidabadi, A. (2007). Tissue Culture Methods in Breeding and Reproduction of Plants. Anemone Village, Publication. (In Farsi)
  15. Kami, D., Shi, L., Sato, T., Suzuki, T. & Oosawa, K. (2009). Cryopreservation of shoot apices of hawthorn in vitro cultures originating from East Asia. Scientia Horticulturae, 120, 84-88.
  16. Kandil, A. A., Sharief A. E. & Nassar, E. S. E.(2012). Response of some rice (Oryza sativa L.) cultivars to germination under salinity stress. International Journal of Agriculture Sciences, 4, 272-277.
  17. Kaviani, B., Padasht Dehkaei, M. N., Hashemabadai, D. & Darabi, A. H. (2010). Cryopreservation of Lilium Ledebourii (Baker) Bioss. By encapsulation-vitrification and in vivo media for planting of germplasm. American Eurasian Journal of Agricultural and Environmental Sciences, 8(5), 556-560.
  18. Khodabandeh, N. (2000). Cereals (6th ed). Tehran University Publications. (In Farsi)
  19. Matsumoto, T., Mochida, K., Itamura, H. & Sakai, A.(2001). Cryopreservation of persimmon (Diospyros kaki Thunb.) by vitrifiation of dormant shoot tips. Plant Cell Report, 20,398-402.
  20. Matsumoto, T., Sakai, A. & Yamada, K. (1994). Cryopreservation of in vitro grown apical meristems of wasabi (Wasabia japonica) by vitrification and subsequent high plant regeneration. Plant Cell Reports, 13, 442-446.
  21. Murashige, T. & Skoog, F.(1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum,15,473-497.
  22. Panis, B., Piette, B. & Swennen, R. (2005). Droplet vitrification of apical meristems: a cryopreservation protocol applicable to all Musaceae. Plant Science, 168, 45-55.
  23. Popov, A. S., Popova, E. V., Nikishina, T. V. & Vysotskaya, O. N. (2006). Cryobank of plant genetic resources in Russian Academy of Sciences. International Journal of Refrigeration, 29, 403-410.
  24. Raghavan, V. (2003). One hundred years of zygotic embryo culture investigations. In Vitro Cellular and Developmental Biology – Plant, 39, 437-442.
  25. Ravathi, S. & Pillia, M. A. (2011). In vitro callus induction in rice (Oryza sativa L.). Research in Plant Biology, 1(5), 13-15.
  26. Reed, B. M. (2008). Plant Cryopreservation: A Practical Guide. New York: Springer.
  27. Rong, H. S. & Hua, Y. M. (2009). High-efficiency vitrification protocols for cryopreservation of in vitro grown shoot tips of rare and endangered plant Emmenopterys henryi Oliv. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 99, 217-226.
  28. Sakai, A., Kobayashi, S. & Oiyama, I. (1990). Cryopreservation of nucellar cells of navel orange (Citrus sinensis Osb. var. brasiliensis Tanaka) by vitrification. Plant Cell Reports. 9, 30-33.
  29. Sershen, Varghese, B., Pammenter, N. W. and Berjak, P. (2012). Cryo-tolerance of zygotic embryos from recalcitrant seeds in relation to oxidative stress-A case study on two amaryllid species. Journal of Plant Physiology, 169, 999-1011. Available on the www.SciVerseScienceDirect.com.
  30. Shatnawi, M. A.(2011). Cryopreservation of Capparis spinosa shoot tips via vitrification, encapsulation dehydration and encapsulation vitrification. World Applied Sciences Journal, 15, 318-325.
  31. Suzuki, M., Ishikawa, M. & Akihama, T.(2005). Cryopreservation of encapsulated gentian axillary needed to increase recovery of tips after cryopreservation buds following 2 step preculture with sucrose and desiccation. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 83, 115-121.
  32. Tajadod, G., Farzami sepehr, M. & Kalami, Z. (2010). The effect of two plant growth regulators on callus generation of Oryza Sativa L. var Hashemi. Journal of Biology iau-garmsar, 5(3), 13-20. (In Farsi)
  33. Thorpe, T. A. and Yeung, E. C. (2011). Plant Embryo Culture: Methods and Protocols, Humana Press, Springer Science, Business Media, Spring Street, New York, USA.
  34. Usman, I. S. & Abdulmalik, M. M.(2010). Cryopreservation of embryonic axes of maize (Zea mays L.) by vitrification protocol. African Journal of Biotechnology,9,8955-8957.
  35. Wang, Y. L., Fan, M. J. & Liaw, S. I. (2005). Cryopreservation of in vitro-grown shoot tips of papaya (Carica papaya L.) by vitrification. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 46, 29-34.
  36. Wen, B., Wang, R., Cheng, H. & Song, S. (2010). Cytological and physiological changes in orthodox maize
  37. embryos during cryopreservation. Protoplasma, 239, 57-67.
  38. Withers, L. A. (1982). The development of cryopreservation techniques for plant cell, tissue and organ culture. In: Fujiwara A (ed), In: Proceedings of 5th International Congress Plant Cell Tissue Culture, Tokyo, Japan, pp 793–794.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,852
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 991


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب