سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,096,660
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,203,775
جنگجو, خدیجه, حسنی, عباس, حسینی, بهمن, جعفری, مراد, علیزاده, مرتضی. (1393). اثر نوع ریز نمونه و ترکیبات مختلف هورمونی بر باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه (Melissa officinalis L.). , 45(4), 391-399. doi: 10.22059/ijhs.2015.53489
خدیجه جنگجو; عباس حسنی; بهمن حسینی; مراد جعفری; مرتضی علیزاده. "اثر نوع ریز نمونه و ترکیبات مختلف هورمونی بر باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه (Melissa officinalis L.)". , 45, 4, 1393, 391-399. doi: 10.22059/ijhs.2015.53489
جنگجو, خدیجه, حسنی, عباس, حسینی, بهمن, جعفری, مراد, علیزاده, مرتضی. (1393). 'اثر نوع ریز نمونه و ترکیبات مختلف هورمونی بر باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه (Melissa officinalis L.)', , 45(4), pp. 391-399. doi: 10.22059/ijhs.2015.53489
جنگجو, خدیجه, حسنی, عباس, حسینی, بهمن, جعفری, مراد, علیزاده, مرتضی. اثر نوع ریز نمونه و ترکیبات مختلف هورمونی بر باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه (Melissa officinalis L.). , 1393; 45(4): 391-399. doi: 10.22059/ijhs.2015.53489

اثر نوع ریز نمونه و ترکیبات مختلف هورمونی بر باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه (Melissa officinalis L.)

علوم باغبانی ایران
مقاله 8، دوره 45، شماره 4، بهمن 1393، صفحه 391-399    اصل مقاله (467.49 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2015.53489
نویسندگان
خدیجه جنگجو1؛ عباس حسنی* 2؛ بهمن حسینی3؛ مراد جعفری4؛ مرتضی علیزاده5
1دانشجوی سابق کارشناسی ارشددانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
2دانشیار،دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه،
3دانشیار دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
4استادیار دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
5دانشجوی سابق کارشناسی ارشد دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه
چکیده
بادرنجبویه (Melissa officinalis L.) گیاهی علفی، چندساله و متعلق به تیرۀ نعناعیان (Lamiaceae) است که کاربرد‏ دارویی و خوراکی وسیعی دارد. پژوهش حاضر به‏منظور بررسی پتانسیل 5 نوع ریزنمونۀ مختلف (قطعات گره، مریستم انتهایی، هیپوکوتیل، کوتیلدون و قطعات برگ) درراستای باززایی مستقیم گیاه بادرنجبویه با استفاده از غلظت‏های مختلف هورمون 6- بنزیل‏آمینوپورین (BAP) (2/2، 4/4 و 8/8 میکرومولار) با یا بدون 1 میکرومولار هورمون ایندول‏استیک اسید (IAA) به‏صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی و در سه تکرار انجام گرفت. بیشترین تعداد القای جوانه (به‏طور متوسط 59/23 و 90/16 جوانه به‏ترتیب برای ریزنمونه‏های مریستم انتهایی و قطعات گره) در غلظت 8/8 میکرومولار BAP مشاهده شد. بالاترین درصد باززایی (99درصد) در ریزنمونه‏های مریستم انتهایی و قطعات گره به‏ترتیب در محیط‏های MS تکمیل‌شده با 8/8 و 2/2 میکرومولار BAP حاصل شد. در سایر ریزنمونه‏ها هیچ‏گونه باززایی مشاهده نشد. ریشه‏زایی گیاهچه‏های باززایی‌شده در محیط‏های MS، ½ MS و MS تکمیل‌شده با 1، 5/2، 92/4 و 84/9 میکرومولار ایندول بوتیریک اسید (IBA) ارزیابی شد. بیشترین تعداد ریشة تشکیل‌شده (06/9 ریشه‏چه در گیاهچه) در محیط MS تکمیل‌شده با 92/4 میکرومولار IBA به دست آمد.‌
 
کلیدواژه‌ها
بادرنجبویه (Melissa officinalis L.)؛ باززایی مستقیم؛ قطعات گره؛ BAP؛ محیط MS
مراجع
  1. Akin-Idowu, P.E., Ibitoye, D.O. & Ademoyegun, O.T. (2009). Tissue culture as a plant production technique for horticulture crops. African Journal of Biotechnology, 8(16), 3782-3788.
  2. Allahverdiyev, A., Duran, N., Ozguven, M. & Koltas, S. (2004). Antiviral activity of the volatile oils of Melissa officinalis L. against herpes simplex virus type2. Phytomedicine, 11, 657-661.
  3. Asghari, F., Hosseini. B., Hassani, A. & Shirzad, H. (2012). Effect of explants source and different hormonal combinations on direct regeneration of basil plants (Ocimum basilicum L.). Australian Journal of Agricultural Engineering, 3(1), 12-17.
  4. Ashrafuzzaman, M., Hossain, M.M., Razi Ismail, M., Shahidul Haque, M., Shahidullah, S.M. & Shahin, Z. (2009). Regeneration potential of seedling explants of chilli (Capsicum annum). African Journal of Biotechnology, 8(4), 591- 596.
  5. Ayab, M. & Sumi, S. (1998). Establishment of a novel tissue culture method, stem disk culture, and its practical application to micropropagation of garlic (Allium sativum L.). Plant Cell Reports, 17, 773-780.
  6. Baroncelli, S., Buittiet, S., Bennici, M., Foroughi, W., Mix, G., Gaul, H., Tagliasacchi, A.M., Loiero, M. & Giorgi, B. (1978). Genetic control of in vitro and in vivo growth of hexaploid wheat. Z. Pflanzenzuecht, 80, 109-116.
  7. Bennett, C. (2003). Plant extract improves cognitive function in Alzheimer's disease. Health News Co. UK.
  8. Bhojwani, S.S. & Razdan, M.K. 1996. Plant tissue culture: Theory and practice. Developments in crop science. Vol.5. Elsevier, Amsterdam.
  9. Cline, M.G. (1996). Exogenous auxin effects on lateral bud outgrowth in decapitated shoots. Annals of Botany, 78, 255-266.
  10. Dai, Y., Wang, H., Li, B., Huang, J., Liu, X., Zhou, Y., Mou, Z. & Li, J. (2006). Increased expression of mapkinase kinase causes deficiency in polar auxin transport and leads to plant architectural abnormality in Arabidopsis. Plant Cell, 18, 308-320.
  11. Debnath, M., Malik, C.P. & Bisen, P.S. (2006). Micropropagation: A tool for the production of high quality plant-based medicine. Current Pharmaceutical Biotechnology, 7, 33-49.
  12. Erdei, I., Kiss, Z. & Maliga, P. (1981). Rapid clonal multiplication of Digitalis Lanata in tissue culture. Plant Cell Reports, 1, 34- 38.
  13. Gogu, I., Diana, S.T. & Daniela, N. (2005). Investigation on the in vitro morphogenetic reaction of Melissa officinalis L. Journal of Genetic and Molecular Biology, 54, 119-122.
  14. Gulatia, A., Bharel, S., Abdin, M.Z., Jain, S.K. & Srivastava, P.S. (1996). In vitro micropropagation and flowering in Artemisia annua. Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology, 5, 31- 37.
  15. Kabala-Dzik, A., Stojko, R., Szaflarska-Stojko, E., Wroblewska-Adamek, I., Stojko, A., Stojko, J. & Stawiarska-Pieta, B. (2004). Influence of honey balm on the rate of scare formation during experimental burn wound healing in pigs. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy, 48, 311-316.
    1. Kennedy, D.O., Little, W. & Scoley, A.B. (2004). Attenuation of laboratory induced stress in humans after acute administration of Melissa officinalis L. (lemon balm). Journal of Pharmacy and Pharmacology, 56, 677-681.
    2. Larkin, P.J. & Scowcroft, W.R. (1981). Somaclonal variation a novel source of variability from cell cultures for plant improvement. Theoretical and Applied Genetics, 60, 197-214.
    3. Liu, C.Z., Murch, S., Jain, J.C. & Saxena, P.K. (2004). Goldenseal Hydrastis canadensis L. in vitro regeneration for germplasm conservation and elimination of heavy metal contamination. In Vitro Cellular and Developmental Biology-Plant, 70, 73–79.
  16. Meena, M., Meena, R. & Patni, V. (2010). High frequency plant regeneration from shoot tip explants of Citrullus colocynthis an important medicinal herb. African Journal of Biotechnology, 9 (31), 5037- 5041.
  17. Meftahizade, H., Lotfi, M. & Moradkhani, H. (2010a). Optimization of micropropagation and establishment of cell suspension culture in Melissa officinalis L. African Journal of Biotechnology, 9, 4314-4321.
  18. Meftahizade, H., Moradkhani, H., Naseri, B., Lotfi, M. & Naseri, A. (2010b). Improved in vitro culture and micropropagation of different Melissa officinalis L. genotypes. Journal of Medicinal Plants Research, 4, 240-246.
  19. Misra, P. & Chaturvedi, H.C. )1984(. Micropropagation of Rosmarinus officinalis L. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 3, 163-166.
  20. Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum, 15, 473-497.
  21. Murch, S.J., Krishna, R.S. & Saxena, P.K. (2000). Tryptophan is a precursor for metalonin and serotonin biosynthesis in in vitro regenerated St. John's wort (Hypericum perforatum L. cv. Anthos) plants. Plant Cell Reports, 19, 698-704.
  22. Nagarathan, K.C., Prakash, H.S. & Shetty, H.S. (1991). Genotypic effects on the callus formation from different explants of pearl millet B lines. Advances in Plant Sciences, 4, 82-86.
  23. Nessler, C.L. (1982). Somatic embryogenesis in the Opium poppy, Papaver somniferum. Plant Physiology, 55, 453-456.
  24. Oluk, E. & Cakir, A. (2009). Micropropagation of Origanum sipyleum L. an endemic medicinal herb of Turkey. African Journal of Biotechnology, 8 (21), 5769- 5772.
  25. Omidbaigi, R. (2008). Production and processing of medicinal plants. Behnashr publisher. (In Farsi).
    1. Raoul, S., Gilbert, C., Hamidou, F.S., Yannick, T., Yao, D., Abdourahmane, S. & Michel, B. (2010). Protocols for callus and somatic embryo initiation for Hibiscus sabdariffa L. Australian Journal of Crop Science, 4, 98-106.
  26. Rech, E.L. & Pires, J.P. (1986). Tissue culture propagation of Mentha spp. by the use of the axillary buds. Plant Cell Reports, 5, 17-21.
  27. Rout, G.R., Saxena, C., Samantaray, S. & Das, P. (1999). Rapid clonal propagation of Plumbago zeylanica Linn. Plant Growth Regulation, 28, 1-4.
  28. Sarwar, S.Z., Rehman, M., Fatima, R.Z., Sial, R.A. & Chaudhary, M.F. (2009). In vitro direct regeneration in mint from different explants on half strength MS medium. African Journal of Biotechnology, 8(18), 4667- 4671.
  29. Shanshan, H., Chunzhao, L. & Praveen, S. (2007). Plant regeneration of an endangered medicinal plant Hydrastis canadensis L. Scientia Horticulturae, 113, 82-86.
  30. Tripathi, L. & Tripathi, J.N.(2003). Role of biotechnology in medicinal plant. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2, 243- 253.
  31. Wake, G., Court, J., Pickering, A., Lewis, R., Wilkins, R. & Perry, E. (2000). CNS acetylcholine receptor activity in European medicinal plants traditionally used to improve failing memory. Journal of Ethnopharmacology, 69(2), 105-114.
 

 

 

 

 

 

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,383
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,756


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب