| تعداد نشریات | 127 |
| تعداد شمارهها | 7,140 |
| تعداد مقالات | 76,861 |
| تعداد مشاهده مقاله | 154,555,020 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 116,593,562 |
تأثیر محرک رشدی سیانوباکتری جداسازی شده از خاک بر رشد و کیفیت غدهچه سیبزمینی (Solanum tuberosum L) در کشت گلخانهای | ||
| تحقیقات آب و خاک ایران | ||
| دوره 57، شماره 2، اردیبهشت 1405، صفحه 375-391 اصل مقاله (1.03 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijswr.2026.408464.670076 | ||
| نویسندگان | ||
| صاحب سودایی مشایی* 1؛ اعظم خیرالهی نجف آبادی2؛ رحیم برزگر3؛ صادق موسوی فرد2 | ||
| 1گروه علوم و مهندسی خاک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران | ||
| 2گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، چهارمحال و بختیاری، ایران | ||
| 3گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، چهارمحال و بختیاری، ایران. | ||
| چکیده | ||
| این پژوهش به منظور بررسی تأثیر محرکهای رشدی سیانوباکتریهای جداسازی شده از خاک بر کیفیت رشد غدهچه سیب زمینی در کشت بستر خاکی گلخانه انجام شد. کشت و جداسازی سویههای سیانوباکتری از خاک، تعیین ویژگیهای فیزیولوژیکی و تولید زیست توده و تهیه عصاره آنها و سپس آزمایش در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با چهار تیمار و سه تکرار در سال 1403 انجام شد. برخی خصوصیات رشدی و غلظت عناصر غذایی گیاه ارزیابی شد. نتایج بررسی ویژگیهای مورفولوژیک و رشتهای سلول این دو سیانوباکتری نشان داد که مربوط به دو سویه آنابنا و نوستوک میباشند. هر دو سویه تواناییهای قابل توجهی در تثبیت نیتروژن اتمسفری، حلکنندگی تریکلسیم فسفات و تولید هورمون گیاهی ایندول-3-استیک اسید (IAA) نشان دادند. نتایج تجزیه واریانس نشان داد اثر تیمارها بر بیشتر صفات اندازهگیری شده از لحاظ آماری تفاوت معنیداری داشت. نتایج نشان داد که همه تیمارها ویژگیهای رشد گیاهان سیبزمینی را در مقایسه با گیاهان تیمار نشده افزایش دادند. طول و قطر ساقه، تعداد برگ، تعداد کل غدهچهها، غلظت فسفر آهن و روی برگ در تیمار محلولپاشی عصاره سیانوباکتری بیشتر از تیمار شاهد بود. وزن کل غدهچهها در تیمار تلقیح ریشه با سیانوباکتری با افزایش 46/24 درصد نسبت به تیمار شاهد مشاهده شد. تعداد کل غدهچهها با تعداد غدهچههای متوسط و تعداد غدهچههای کوچک همبستگی مثبت و معنیدار در سطح احتمال یک درصد و غلظت نیتروژن برگ با غلظت پتاسیم برگ (r=0.66*) همبستگی مثبت و معنیدار در سطح احتمال 5 درصد نشان داد. این یافتهها، فعالیت محرک رشدی سیانوباکتریهای جدا شده از خاک را به عنوان تیمار بهبود دهنده رشد گیاه و همچنین کاربرد عصاره زیستی را به عنوان ابزارهای پایدار برای افزایش رشد و کیفیت غدهچههای سیبزمینی برجسته کرد | ||
| کلیدواژهها | ||
| محلولپاشی عصاره سیانوباکتری؛ نیتروژن؛ نوستوک؛ غدهچه سیب زمینی؛ سودوموناس | ||
| مراجع | ||
|
Alvarez, A.L.; Weyers, S.L.; & Gardner, R.D. (2024). Cyanobacteria-Based Soil Amendments in the Soil-Plant System: Effects of Inoculations on Soil Nutrient and Microbial Dynamics under Spring Wheat Growth. Algal Research. 77, 103326. https://doi.org/10.1016/j.algal.2023.103326. Bakker, A.W., & Schippers, B. (1987). Microbial cyanide production in the rhizosphere in relation to potato yield reduction and Pseudomonas SPP-mediated plant growth-stimulation. Soil Biology and Biochemistry, 19 (4): 451-457. https://doi.org/10.1016/0038-0717(87)90037-X. Berruti, A., Lumini, E., Balestrini, R., & Bianciotto, V. (2015). Arbuscular Mycorrhizal Fungi as Natural Biofertilizers: Let's Benefit from Past Successes. Frontiers in Microbiology, 6, 1559. https://doi.org/10.3389/fmicb.2015.01559 Bolandi, A. R. (2007). Study the effects of size and dormancy of microtuber on production of potato seed - minituber. Proceedings of the 5th National Horticultural Congress of Iran. Shiraz, Iran. P. 40. Chabili, A., Hakkoum, Z., Minaoui, F., Douma, M., Meddich, A., & Loudiki, M. (2025). Germination Screen of Eco-Extracts from Soil Cyanobacteria and Microalgae for Their Biostimulant Effects on Wheat Seeds Emergence and Vigor. Algal Research. 89, 104087. Chabili, A., Minaoui, F., Hakkoum, Z., Douma, M., Meddich, A., & Loudiki, M. (2024). A Comprehensive Review of Microalgae and Cyanobacteria-Based Biostimulants for Agriculture Uses. Plants, 13(2), 159. https://doi.org/10.3390/plants13020159 Chamizo, S., Adessi, A., Mugnai, G., Simiani, A., & De Philippis, R. (2019). Soil Type and Cyanobacteria Species Influence the Macromolecular and Chemical Characteristics of the Polysaccharidic Matrix in Induced Biocrusts. Microbial Ecology, 78, 482–493. Chamizo, S., Mugnai, G., Rossi, F., Certini, G., & De Philippis, R. (2018). Cyanobacteria inoculation improves soil stability and fertility on different textured soils: gaining insights for applicability in soil restoration. Frontiers in Environmental Science, 6, 49. Chittora, D., Meena, M., Barupal, T., Swapnil, P., & Sharma, K. (2020). Cyanobacteria as a source of biofertilizers form sustainable agriculture, BB Reports, 22, 100737. El-Ayouty, Y.M., Ghazal, F.M., Hassan, A.Z.A., & Abd El-Aal, A.A.M. (2004). Effect of Algal Inoculation and Different Water Holding Capacity Levels on Soil Aggregation and Soil Moisture Content of Sandy and Calcareous Soils under Tomato Cultivation Condition. Journal of agricultural sciences in Mansoura University. 29, 2801–2809. Emami, A. (1996). Plant Analysis Methods, Soil and Water Research Organization. Publication 982. Vol. 1: pp. 128. (In Persian). Glickmann, E., & Dessaux, Y. A (1995). Critical Examination of the Specificity of the Salkowski Reagent for Indolic Compounds Produced by Phytopathogenic Bacteria. Applied and Environmental Microbiology, 61, 793–796. Goos, R. J. (1995). A laboratory exercise to demonstrate nitrogen mineralization and immobilization. Journal of Natural Resources and Life Sciences Education, 24 (1): 68-70. Hakkoum, Z., Minaoui, F., Tazart, Z., Chabili, A., Douma, M., Mouhri, K., & Loudiki, M. (2025). Impact of a Soil Cyanobacteria Consortium-Based Bioinoculant on Tomato Growth, Yield, and Fruit Quality. Plants, 14(13), 2034. https://doi.org/10.3390/plants14132034 Hassani, F., Darvishi, B. & Alipour, D. (2007). Technical guidelines for the control and certification of potato seed farms. Seed and Seedling Registration and Certification Institute, Karaj, 21 pages. (In Persian). Hidangmayum, A., & Sharma. R. (2017). Effect of different concentrations of commercial seaweed liquid extract of Ascophyllum nodosum as a plant bio stimulant on growth, yield and biochemical constituents of onion (Allium cepa L.). Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 6 (4): 658-663. Janmohammadi, M., Pornour, N., Javanmard, A., & Sabaghnia, N. (2016). Effects of bio-organic, conventional and nanofertilizers on growth, yield and quality of potato in cold steppe. Botanica Lithuanica, 22(2), 133-144. Johansson, C., & Bergman, B. (1994). Reconstitution of the symbiosis of Gunnera manicata Linden: cyanobacterial specificity. New Phytology. 126:643–652. John, D. M., Whitton, B. A., & Brook, A.J. (2003). The freshwater algal flora of the British Isles, an identification guide to freshwater and terrestrial algae. Cambridge University Press. p. 702. Jose, S., Renuka, N., Ratha, S.K., Kumari, S., & Bux, F. (2024). Bioprospecting of Microalgae from Agricultural Fields and Developing Consortia for Sustainable Agriculture. Algal Research, 78, 103428. https://doi.org/10.1016/j.algal.2024.103428 Just, B.S., Marks, E.A.N., Roquer-Beni, L., Llenas, L., Ponsà, S., & Vilaplana, R. (2024). Biofertilization Increases Soil Organic Carbon Concentrations: Results of a Meta-Analysis. International Journal of Agricultural Sustainability, 22, 2361578. Kalra, Y. (1997). Handbook of reference methods for plant analysis. CRC press. p. 320. https://doi.org/10.1201/9780367802233. Kholssi, R., Marks, E.A.N., Miñón, J., Montero, O., Lorentz, J.F., Debdoubi, A., & Rad, C. (2022). Biofertilizing Effects of Anabaena cylindrical Biomass on the Growth and Nitrogen Uptake of Wheat. Communications in Soil Science and Plant Analysis, 53, 1216–1225. https://doi.org/10.1080/00103624.2022.2043350. Kolbe, H., & Stephan-Beckmann, S. (1997). Development, growth and chemical composition of the leaves and stem for potatoes. Potato Research, 40, 111-129. https://doi.org/10.1007/BF02407567 Komárek, J. (2013). Cyanoprokaryota. 3. Heterocytous Genera; Büdel, B., Gärtner, G., Krienitz, L., Schagerl, M., Eds.; Springer Spektrum: Berlin/Heidelberg, Germany. Komarek, J., Kastovsky, J., Mares, J., & Johansen, L.R. (2014). Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera) 2014, using a polyphasic approach. Preslia, 86: 295–335. Lal, M., Kumar, A., Chaudhary, S., Singh, R.K., Sharma, S., & Kumar, M. (2022). Antagonistic and growth enhancement activities of native Pseudomonas spp. against soil and tuber-borne diseases of potato (Solanum tuberosum L.). Egyptian Journal of Biological Pest Control, 32, 22. https://doi.org/10.1186/s41938-022-00522-w Lee, S. M., & Ryu, C. M. (2021). Algae as New Kids in the Beneficial Plant Microbiome. Frontiers in Plant Science, 12, 599742. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.599742 Majidi, A. (2014). Use of Minolta SPAD-502 Chlorophyll Meter for Estimating Leaf N Concentration and Grain Protein Content in Three Varieties of Wheat. Iranian Journal of Soil Research, 28(2), 245-254. (In Persian) https://doi.org/10.22092/ijsr.2014.120333. Massey, M.S., & Davis, J.G. (2023). Beyond Soil Inoculation: Cyanobacteria as a Fertilizer Replacement. Nitrogen, 4: 253–262. Mazhar, S., & Hasnain, S. (2011). Screening of Native Plant Growth Promoting Cyanobacteria and Their Impact on Triticum aestivum Var. Uqab 2000 Growth. African Journal of Agricultural Research, 6, 3988–3993. Mushtaq, Z., Asghar, H., Zahir, Z.A., & Maqsood, M. (2022). The interactive approach of rhizobacteria and l-tryptophan on growth, physiology, tuber characteristics, and iron concentration of potato (Solanum tuberosum L.). Journal of Plant Growth Regulation, 41:1359–1366. https://doi.org/ 10. 1007/s00344- 021- 10395-2. Rippka, R. Deruelles, J. & Waterbury, J.B. (1979). Generic assignments, strain histories and properties of pure cultures of cyanobacteria, Journal of General Microbiology. 111 (1979) 1–61, https://doi.org/10.1099/00221287-111-1-1. Santini, G., Biondi, N., Rodolfi, L., & Tredici, M. R. (2021). Plant Biostimulants from Cyanobacteria: An Emerging Strategy to Improve Yields and Sustainability in Agriculture. Plants, 10(4), 643. https://doi.org/10.3390/plants10040643 Sergeeva, E., Liaimer, A., & Bergman, B. (2002). Evidence for production of the phytohormone indole-3-acetic acid by cyanobacteria. Planta. 215: 229–238. Singh, P., Arif, Y., Siddiqui, H. Upadhyaya, C.P., Pichtel, J., & Hayat, S. (2023). Critical Factors Responsible for Potato Tuberization. Botanical Review, 89, 421–437 (2023). https://doi.org/10.1007/s12229-023-09289-7 Thomas, G. W. (1996). Soil pH and soil acidity. In: Sparks, D.L. (Ed), Methods of Soil Analysis. Soil Science Society of America, Madison. pp. 475-490. Torabian, S., Farhangi-Abriz, S., Qin, R., Noulas, C., Sathuvalli, V., Charlton, B., & Loka, D. A. (2021). Potassium: A Vital Macronutrient in Potato Production — A Review. Agronomy, 11(3). https://doi.org/10.3390/agronomy11030543 Toribio, A.J., Jurado, M.M., Suárez-Estrella, F., Lopez-Gonzalez, J.A., Martinez-Gallardo, M.R., & Lopez, M.J. (2021). Application of sonicated extracts of cyanobacteria and microalgae for the mitigation of bacterial canker in tomato seedlings. Journal of Applied Phycology, 33, 3817–3829 (2021). https://doi.org/10.1007/s10811-021-02599-6 Vaishampayan, A., Sinha, R.P., & Häder, D.P. (1998). Use of genetically improved nitrogen-fixing Cyanobacteria in rice paddy fields: Prospects as a source material for engineering herbicide sensitivity and resistance in plants. Botanica Acta, 111: 176–190. Vos, J. & van der Putten, P.E.L. (1998). Effect of nitrogen supply on leaf growth, leaf nitrogen economy and photosynthetic capacity in potato. Field Crops Research, 59, 63–72. Wasilewska-Nascimento, B., Boguszewska-Mańkowska, D., Zarzyńska, K. (2020). Challenges in the production of high-quality seed potatoes (Solanum tuberosum L.) in the tropics and subtropics. Agronomy, 10:260–272. https://doi.org/ 10. 3390/agron omy10 020260 Yandigeri, M.S. Yadav, A.K. Srinivasan, R. Kashyap, S. & Pabbi, S. (2011) Studies on mineral phosphate solubilization by cyanobacteria Westiellopsis and Anabaena. Microbiology, 80(4), 558-565 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 39 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 37 |
||