| تعداد نشریات | 127 |
| تعداد شمارهها | 7,119 |
| تعداد مقالات | 76,512 |
| تعداد مشاهده مقاله | 152,920,636 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 115,048,964 |
تأثیر جایگزینی پودر ماهی با سطوح مختلف پودر لارو مگس سرباز سیاه (Hermetia illucens) در جیرة غذایی بر شاخصهای رشد، ایمنی و آنتیاکسیدانی در بچهماهیان قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) | ||
| شیلات | ||
| دوره 79، شماره 1، اسفند 1404، صفحه 1-15 اصل مقاله (1.47 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jfisheries.2026.405572.1470 | ||
| نویسندگان | ||
| مهرناز هیبتیان1؛ میرمسعود سجادی* 1؛ مهرداد فتح الهی2؛ بهرام فلاحتکار1؛ رقیه صفری3؛ قاسم عشوری4 | ||
| 1گروه شیلات، دانشکدة منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعهسرا، ایران. | ||
| 2گروه شیلات، دانشکدة منابع طبیعی و علوم زمین، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
| 3گروه شیلات، دانشکدة شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران. | ||
| 4مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسة تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران. | ||
| چکیده | ||
| هدف از این پژوهش، بررسی اثرات جایگزینی سطوح مختلف پودر ماهی با پودر لارو مگس سرباز سیاه (BSFL) (Hermetia illucens)، در جیرة غذایی بچهماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) بر شاخصهای رشد، پاسخهای ایمنی و فعالیت آنتیاکسیدانی بود. 180 قطعه بچهماهی با میانگین وزنی اولیه 0/3±5 گرم بهطور تصادفی به چهار تیمار و سه تکرار تقسیم شدند؛ که تیمارها شامل شاهد (C؛ جیره استاندارد مبتنی بر پودر ماهی) و سه گروه آزمایشی با سطوح جایگزینی 10 درصد (BSFL10)، 20 درصد (BSFL20) و 30 درصد (BSFL30) بودند. نتایج ارزیابی رشد در فواصل زمانی دوهفتهای از دورة پرورش نشان داد که میزان جایگزینی لارو مگس سرباز سیاه تأثیر معنیداری بر شاخصهای رشد در طی آزمایش داشت (0/05>P). نتایج رشد در پایان هشت هفته آزمایش، نیز بیانگر آن بود که تیمار جایگزینی 10 درصد، منجر به افزایش معنیدار شاخصهای رشد شامل، افزایش وزن (WG)، نرخ رشد ویژه (SGR)، بهبود ضریب تبدیل غذایی (FCR)، درصد افزایش وزن بدن (BWI) و نسبت بازدة پروتئین (PER) در مقایسه با گروه شاهد گردید (0/05>P)، در حالیکه سطوح جایگزینی ۲۰ و ۳۰ درصد از نظر شاخصهای رشد تفاوت معنیداری با تیمار شاهد نداشتند (0/05<P). علاوهبراین، فعالیت آنزیمهای لایزوزیم (LYZ) و کاتالاز (CAT) نیز در سطح جایگزینی 10 درصد بهطور معنیداری بالاتر از تیمارهای شاهد و سطح جایگزینی 30 درصد بود (0/05>P). فعالیت کمپلمان (ACH50) در سطح جایگزینی 10 درصد بیش از سایر تیمارها بود (0/05>P). نتایج این پژوهش نشان داد که جایگزینی لارو مگس سرباز سیاه در سطح ۱۰ درصد بهترین عملکرد رشد را در قزلآلای رنگینکمان بههمراه دارد، در حالیکه افزایش سطح جایگزینی تا ۳۰ درصد تأثیر منفی بر شاخصهای رشد، ایمنی و فیزیولوژیک نداشت. این یافتهها حاکی از آن است که لارو مگس سرباز سیاه میتواند بهعنوان منبع پروتئینی قابل اعتماد و پایدار با عملکرد مطلوب در جیرههای قزلآلای رنگینکمان مورد استفاده قرار گیرد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| بازدة پروتئین؛ بیوشیمی پلاسما؛ پاسخ ایمنی غیراختصاصی؛ پودر حشرات؛ ترکیبات زیستفعال | ||
| مراجع | ||
|
Abdel-Latif, H.M., Abdel-Tawwab, M., Khalil, R.H., Metwally, A.A., Shakweer, M.S., Ghetas, H.A., Khallaf, M.A., 2021. Black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal in diets of European seabass: Effects on antioxidative capacity, non-specific immunity, transcriptomic responses, and resistance to the challenge with Vibrio alginolyticus. Fish and Shellfish Immunology 111, 111-118. DOI: 10.1016/j.fsi.2021.01.013 Boyd, C., McNevin, A.A., Hasan, M.R., New, M.B., Davis, D.A., 2023. Overview of aquaculture feeds: Global impacts of ingredient use. In: Davis, D.A. (Ed.), Feed and Feeding Practices in Aquaculture. 2nd ed. Woodhead Publishing, Cambridge, UK. 3–25. DOI: 10.1016/B978-0-12-823627-7.00001-1 Chemello, G., Zarantoniello, M., Randazzo, B., Gioacchini, G., Truzzi, C., Cardinaletti, G., Riolo, P., Olivotto, I., 2022. Effects of black soldier fly (Hermetia illucens) enriched with Schizochytrium sp. on zebrafish (Danio rerio) reproductive performances. Aquaculture 550, 737853. DOI: 10.106/j.aquaculture.2021.737853 Cho, C.Y., Kaushik, S.J., 1990. Nutritional energetics in fish: energy and protein utilization in rainbow trout (Salmo gairdneri). World Review of Nutrition and Dietetics 61, 132-172. DOI: 10.1159/000417529 Cummins, V.C., Rawles, S.D., Thompson, K.R., Velasquez, A., Kobayashi, Y., Hager, J., Webster, C.D., Hyde, N.M., Gannam, A.L., Twibell, R.G., 2017. Evaluation of black soldier fly (Hermetia illucens) larval meal as partial or total replacement of marine fish meal in diets for juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture 473, 337-344. DOI: 10.1111/eff.70000 Devic, E., Leschen, W., Murray, F., Little, D.C., 2018. Growth performance, feed utilization and body composition of advanced nursing Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fed diets containing black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal. Aquaculture Nutrition 24(1), 416-423. DOI: 10.1111/anu.12573 Elia, A.C., Capucchio, M.T., Caldaroni, B., Magara, G., Dörr, A.J.M., Biasato, I., Biasibetti, E., Righetti, M., Pastorino, P., Prearo, M., 2018. Influence of Hermetia illucens meal dietary inclusion on the histological traits, gut mucin composition and the oxidative stress biomarkers in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture 496, 50-57. DOI: 10,1016/j.aquaculture.2018.07.009 Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. Techniques in Fish Immunology 1, 101-103. DOI: 10.1001/anu.19873 English, G., Ray, A.J., Zhu, L., Tomberlin, J.K., Hahn, D.A., Tarone, A.M., 2021. The nutritional composition of black soldier fly (Hermetia illucens) larvae reared on different waste streams for use as aquaculture feed. Aquaculture 530, 735732. DOI: 10,1016/j.aquaculture.2018.07.009 Ewald, N., Vidakovic, A., Langeland, M., Kiessling, A., Sampels, S., Lalander, C., 2020. Fatty acid composition of black soldier fly larvae (Hermetia illucens) possibilities and limitations for modification through diet. Waste Management 102, 40-47. DOI: 10.1111/anu.12573 FAO., 2022. The State of World Fisheries and Aquaculture 2022. Food Security Information for Action Pactical Guide, Food and Agriculture Organization, Rome, Italy, 266. FAO., 2024. The State of World Fisheries and Aquaculture 2024. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, Italy, 252. Fawole, F.J., Adeoye, A.A., Tiamiyu, L.O., Ajala, K.I., Obadara, S.O., Ganiyu, I.O., 2020. Substituting fish meal with Hermetia illucens in the diets of African catfish (Clarias gariepinus): Effects on growth, nutrient utilization, haemato-physiological response, and oxidative stress biomarker. Aquaculture 518, 734849. DOI: 10,1016/j.aquaculture.2019.734849 Fayed, W., Mansour, A.T., Zaki, M.A.A., Omar, E.A., Mohammadi, G., Sallam, G., El-Haroun, E.R., Moustafa, M.M., 2023. Water quality change, growth performance, health status in response to dietary inclusion of black soldier fly larvae meal in the diet of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Annals of Animal Science 24(2), 2478. DOI: 10.1111/raq.12666 Gasco, L., Acuti, G., Bani, P., Dalle Zotte, A., Danieli, P.P., De Angelis, A., Fortina, R., Marino, R., Parisi, G., Piccolo, G., 2020. Insect and fish by-products as sustainable alternatives to conventional animal proteins in animal nutrition. Italian Journal of Animal Science 19(1), 360-372. DOI: 1743209 1828051/10,1080/X.2020 Glencross, B., Papadimitriou, V., Huyben, D., 2025. Removing trophic levels from the fish feed-chain: evaluating the nutritional and microbiome effects of feeding brewery protein isolate as an alternative to insect meal to Atlantic salmon. Aquaculture 606, 742797. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2025.742797 Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. Clinica Chimica Acta 196, 143-151. DOI: 8981-0009/10,1016(91)90067-M Graham, S., Secombes, C.J., 1990. Cellular requirements for lymphokine secretion by rainbow trout Salmo gairdneri leucocytes. Developmental and Comparative Immunology 14(1), 59-68. DOI: 10.1016/0145-305X(90)9008-3 Guerreiro, I., Castro, C., Serra, C.R., Coutinho, F., Couto, A., Peres, H., Pousão-Ferreira, P., Gasco, L., Gai, F., Oliva-Teles, A., Enes, P., 2022. Oxidative stress response of meagre to dietary black soldier fly meal. Animals 12(23), 32-39. DOI: 10.3390/ani12233232 Hardy, R.W., Barrows, F.T., 2003. Diet formulation and manufacture. In: Halver, J.E., Hardy, R.W., (Eds.), Fish Nutrition, Academic Press, San Diego, USA, 505-600. Hoseini, S.M., Yousefi, M., Mirghaed, A.T., Paray, B.A., Hoseinifar, S.H., Van Doan, H., 2020. Effects of rearing density and dietary tryptophan supplementation on intestinal immune and antioxidant responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture 528, 735-837. DOI: 10,3390/biology10060505 Hu, J., Wang, G., Huang, Y., Sun, Y., He, F., Zhao, H., Li, N., 2017. Effects of substitution of fish meal with black soldier fly larvae (Hermetia illucens) meal, in yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco) diets. Journal of Aquaculture Bamidgeh 69, 1-9 Kariuki, M.W., Barwani, D.K., Mwashi, V., Kioko, J.K., Munguti, J.M., Tanga, C.M., Kiiru, P., Gicheha, M.G., Osuga, I.M., 2024. Partial replacement of fish meal with black soldier fly larvae meal in Nile tilapia diets improves performance and profitability in earthen pond. Scientific African 24, 223-253. DOI: 10.1016/j.sciaf.2024.e02222 Katya, K., Borsra, M., Ganesan, D., Kuppusamy, G., Herriman, M., Salter, A., Ali, S.A., 2017. Efficacy of insect larval meal to replace fish meal in juvenile barramundi, Lates calcarifer reared in freshwater. International Aquatic Research 9(4), 303-312. DOI: 10,1007/s40071-017-0178-x Li, S., Ji, H., Zhang, B., Zhou, J., Yu, H., 2017. Defatted black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal in diets for juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian): Growth performance, antioxidant enzyme activities, digestive enzyme activities, intestine and hepatopancreas histological structure. Aquaculture 477, 62-70. DOI: 10,1111/raq.12888 Li, Q., Zheng, L., Qiu, N., Cai, H., Tomberlin, J.K., Yu, Z., 2019. Bioconversion of dairy manure by black soldier fly (Hermetia illucens L.) for biodiesel and protein production. Waste Management 102, 880-888. DOI: 10.1093/sysbio/syac069 Lu, R., Chen, Y., Yu, W., Lin, M., Yang, G., Qin, C., Meng, X., Zhang, Y., Ji, H., Nie, G., 2020. Defatted black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal can replace soybean meal in juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idellus) diets. Aquaculture Reports 18, 100520. DOI: 10,106/j.aqrep.2020.100520 Makkar, H.P., Tran, G., Heuzé, V., Ankers, P., 2014. State-of-the-art on use of insects as animal feed. Animal Feed Science and Technology 197, 1-33. DOI: 10.1016/j.anifeedsci.2014.07.008 Marono, S., Piccolo, G., Loponte, R., Di Meo, C., Attia, Y.A., Nizza, A., Bovera, F., 2015. In vitro crude protein digestibility of Tenebrio molitor and Hermetia illucens insect meals and its correlation with chemical composition traits. Italian Journal of Animal Science 14, 3889. DOI: 10,4081/ijas.2015.3889 Martínez-Álvarez, R.M., Morales, A.E., Sanz, A., 2005. Antioxidant defenses in fish: biotic and abiotic factors. Reviews in Fish Biology and Fisheries 15(1), 75-88. DIO: 10.1007/s11160-005-7846-4 Nairuti, R.N., Munguti, J.M., Waidbacher, H., Zollitsch, W., 2021. Growth performance and survival rates of Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) reared on diets containing black soldier fly (Hermetia illucens L.) larvae meal. Journal of Land Management, Food and Environment 19, 75-90. DOI: 10.1060/105287.2021.164055 Nogales‐Mérida, S., Gobbi, P., Józefiak, D., Mazurkiewicz, J., Dudek, K., Rawski, M., Kierończyk, B., Józefiak, A., 2019. Insect meals in fish nutrition. Reviews in Aquaculture 11, 1080-1103. DOI: org/10.1111/raq.12281 Nunes, A.J., Dalen, L.L., Leonardi, G., Burri, L., 2022. Developing sustainable, cost-effective and high-performance shrimp feed formulations containing low fish meal levels. Aquaculture Reports 27, 101422. DOI: 10.1016/j.aqrep.2022.101422 Oliveira, C.G.D., Freitas, D.D.A., Ribeiro, P.A.P., Teixeira, R.R.C., Silva, R.F.D., Gamarano, P.G., Araújo, R.D.D., Prado, V.G.L., Guilherme, H.D.O., Paulino, R.R., Costa, L.S., 2024. Impact of replacing fish meal with black soldier fly (Hermetia illucens) meal on diet acceptability in juvenile Nile tilapia: Palatability and nutritional and health considerations for dietary preference. Aquaculture Research 6, 340995. DOI: 10.1155/2024/3409955 Pascon, G., Opere Akinyi, R., Cardinaletti, G., Daniso, E., Messina, M., 2025. Chitin and its effects when included in aquafeed. Aquaculture International 33(22), 202-224. DOI: 10.1007/s10499-025-01879-z Peguero, D.A., Gold, M., Velasquez, L., Niu, M., Zurbrügg, C., Mathys, A., 2024. Physical pretreatment of three biowastes to improve black soldier fly larvae bioconversion efficiency. Waste Management 178, 280-291. DIO: 10.1016/j.wasman.2024.02.024 Shah, M.R., Lutzu, G.A., Alam, A., Sarker, P., Kabir Chowdhury, M.A., Parsaeimehr, A., Liang, Y., Daroch, M., 2018. Microalgae in aquafeeds for a sustainable aquaculture industry. Journal of Applied Phycology 30(1), 197-213. DOI: 10.1007/s10811-017-1234-z Shati, S., Opiyo, M., Nairuti, R., Shoko, A., Munyi, F., Ogello, E., 2022. Black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal improves growth performance, feed utilization, amino acids profile, and economic benefits of Nile tilapia (Oreochromis niloticus, L.). Aquatic Research 5, 238-249. DOI: 11,1897/215876.5401.1236 Shiau, S.Y., Yu, Y.P., Hwa, S., Hsieh, J.F., Lin, S.J., 1999. The influence of chitin and chitosan on the growth of tilapia, Oreochromis niloticus × O. aureus. Aquaculture 179, 439‑446. DOI: 10.1016/S0044-8486(99)00177-5 Sicuro, B., Piccinno, M., Daprà, F., Gai, F., Vilella, S., 2021. Utilization of rice protein concentrate in Siberian sturgeon (Acipenser baerii) nutrition. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences 15(2), 311-317. DOI: 10,105/j.anifeedsci.2023.115597 Siddaiah, G., Kumar, R., Kumari, R., Chandan, N., Debbarma, J., Damle, D., Das, A., Giri, S., 2023. Dietary fishmeal replacement with Hermetia illucens (black soldier fly) larvae meal affected production performance, whole body composition, antioxidant status, and health of snakehead (Channa striata) juveniles. Animal Feed Science and Technology 297, 115597. DOI: 10,105/j.anifeedsci.2023.115597 Small, B.C., Sneddon, L.U., 2003. Physiological responses of fish to anesthesia with clove oil and tricaine methanesulfonate (MS‑222). Aquaculture Research 34, 1041‑1048. DIO: 10.1046/j.1365-2109.2003.00922.x Sunyer, J.O., Tort, L., 1995. Natural hemolytic and bactericidal activities of sea bream Sparus aurata serum are effected by the alternative complement pathway. Veterinary Immunology and Immunopathology 45(3-4), 333-345. DIO: 10.1016/0165-2427(94)05430-Z Thorarensen, H., Kubiriza, G.K., Imsland, A.K., 2015. Experimental design and statistical analyses of fish growth studies. Aquaculture 448, 483-490. DIO: 10.1016/j.aquaculture.2015.05.018 Vogel, H., Müller, A., Heckel, D.G., Gutzeit, H., Vilcinskas, A., 2018. Nutritional immunology: diversification and diet-dependent expression of antimicrobial peptides in the black soldier fly Hermetia illucens. Developmental and Comparative Immunology 78, 141-148. DOI: 10.1016/j.dci.2018.09.008 Xiao, W., Zhang, Y., Li, H., Chen, M., Zhou, J., 2024. Effects of black soldier fly larvae (Hermetia illucens) meal on growth performance, immune response, and oxidative status in aquaculture: A meta‑analysis. Comparative Immunology Reports 8, 101-162. DOI: 20.1026/j.aqrep.2024.182373 Yildirim-Aksoy, M., Eljack, R., Schrimsher, C., Beck, B.H., 2020. Use of dietary frass from black soldier fly larvae, Hermetia illucens, in hybrid tilapia (Nile × Mozambique, Oreocromis niloticus × O. mozambique) diets improves growth and resistance to bacterial diseases. Aquaculture Reports 17, 100373. DOI: 10.1016/j.aqrep.2020.100373 | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 113 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 59 |
||