سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات163
تعداد شماره‌ها6,762
تعداد مقالات72,839
تعداد مشاهده مقاله131,883,019
تعداد دریافت فایل اصل مقاله103,542,926
پیرکانی, زانیار, مخبر دزفولی, محمدرضا, صادقیان چالشتری, سیروس, شکری, فائزه, جباری فخر, معصومه, ثابت زاده, ندا. (1404). اثرات بالینی درمان با وزیکول‌های خارجِ سلولی نبولایز‌شده در مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند. , 80(2), 87-97. doi: 10.22059/jvr.2024.382705.3459
زانیار پیرکانی; محمدرضا مخبر دزفولی; سیروس صادقیان چالشتری; فائزه شکری; معصومه جباری فخر; ندا ثابت زاده. "اثرات بالینی درمان با وزیکول‌های خارجِ سلولی نبولایز‌شده در مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند". , 80, 2, 1404, 87-97. doi: 10.22059/jvr.2024.382705.3459
پیرکانی, زانیار, مخبر دزفولی, محمدرضا, صادقیان چالشتری, سیروس, شکری, فائزه, جباری فخر, معصومه, ثابت زاده, ندا. (1404). 'اثرات بالینی درمان با وزیکول‌های خارجِ سلولی نبولایز‌شده در مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند', , 80(2), pp. 87-97. doi: 10.22059/jvr.2024.382705.3459
پیرکانی, زانیار, مخبر دزفولی, محمدرضا, صادقیان چالشتری, سیروس, شکری, فائزه, جباری فخر, معصومه, ثابت زاده, ندا. اثرات بالینی درمان با وزیکول‌های خارجِ سلولی نبولایز‌شده در مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند. , 1404; 80(2): 87-97. doi: 10.22059/jvr.2024.382705.3459

اثرات بالینی درمان با وزیکول‌های خارجِ سلولی نبولایز‌شده در مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند

مجله تحقیقات دامپزشکی (Journal of Veterinary Research)
دوره 80، شماره 2، خرداد 1404، صفحه 87-97    اصل مقاله (1.29 M)
نوع مقاله: بهداشت و بیماری های دام های بزرگ
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jvr.2024.382705.3459
نویسندگان
زانیار پیرکانی1؛ محمدرضا مخبر دزفولی2؛ سیروس صادقیان چالشتری* 3؛ فائزه شکری3؛ معصومه جباری فخر4؛ ندا ثابت زاده5
1دانش‌آموخته دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
2گروه بیماری‎های داخلی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
3گروه سلول‎های بنیادی و زیست‎شناسی تکوینی، مرکز تحقیقات علوم سلولی، پژوهشکده سلول‎های بنیادی، پژوهشگاه رویان، تهران، ایران
4گروه مهندسی بافت و علوم سلولی کاربردی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشگی قم، قم، ایران
5پژوهشکده تحقیقات زیست‎پزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
چکیده
زمینه مطالعه: سندرم زجر تنفسی حاد، یک شرایط حاد بالینی است که بیماران طیف وسیعی از پیامدهای بالینی را نشان می‌دهند. مطالعات اخیر در موارد پیش‌بالینی نشان داده است که استفاده از وزیکول­های خارجِ سلولی مشتق از سلول­های بنیادی مزانشیمی می‌تواند به نتایج درمانی سودمند منجر شود.
هدف: مطالعه حاضر با هدف ارزیابی اثربخشی نبولایز وزیکول­های خارجِ سلولی مشتق از سلول­های بنیادی مزانشیمی بافت چربی بر علائم بالینی مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند انجام شد.
روش‎کار: 6 گوسفند نر به‌طور تصادفی به 2 گروه درمان و گروه شاهد تقسیم شدند. مدل سندرم زجر تنفسی حاد با تجویز داخل نایی لیپوپلی ساکارید باکتری ایکلای سویه O55:B5 در هر 6 گوسفند القا شد. پس از 1 روز و با تأیید وقوع سندرم زجر تنفسی حاد، درمان با وزیکول‌های آلوژن در گروه درمان و محیط کشت سلول‌های بنیادی مزانشیمی بافت چربی به‌صورت نبولایز به ریه‌ها تجویز شد. گوسفندها به‌مدت 7 روز تحت نظر دقیق قرار گرفتند و علائم بالینی ثبت و نهایتاً تجزیه‌و‌تحلیل شدند.
نتایج: مطالعه حاضر پتانسیل درمانی وزیکول‌های خارجِ سلولی بر بهبود علائم بالینی مدل تجربی سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند را نشان داد. چنان‌که در گروه درمان در مقایسه با گروه شاهد تعداد ضربان قلب، تعداد تنفس و دمای راست روده‌ای در طول مطالعه کاهش معنی­دار یافتند و به محدوده طبیعی بازگشتند. همچنین سایر علائم بالینی، شامل تغییرات صداهای تنفسی، سرفه، ترشحات بینی، وضعیت غشاهای مخاطی، اشتها و هوشیاری گوسفندها در گروه درمان در مقایسه با گروه شاهد بهبود قابل‌توجهی یافتند.
نتیجه­گیری نهایی: درمان مبتنی بر وزیکول‌های خارجِ سلولی به‌صورت نبولایز، نتایج امیدوارکننده‌ای در بهبود علائم بالینی مدل سندرم زجر تنفسی حاد در گوسفند نشان داده است. این یافته­ها نشان می‌دهند وزیکول‌های خارجِ سلولی را می‌توان به‌عنوان یک درمان بالقوه در نظر گرفت، اما توصیه می‌شود مطالعات بیشتری در این زمینه انجام شود.
کلیدواژه‌ها
سندرم زجر تنفسی حاد؛ علائم بالینی؛ گوسفند؛ نبولایز؛ وزیکول‌های خارجِ سلولی
اصل مقاله

مقدمه

بیماری­های ریوی، از‌جمله سندرم زجر تنفسی حاد (ARDS) به درمان­های فعلی واکنش­های متفاوتی نشان می­دهند و عدم برخورد صحیح می­تواند به مرگ منجر شود (1).ARDS  یک وضعیت حاد بالینی است که با التهاب شدید در دستگاه تنفسی مشخص می‌شود (2, 3). درک ما از عوامل ایجادکننده ARDS از زمان شناسایی اولیه آن در نیم‌قرن پیش به‌طور قابل‌توجهی افزایش یافته است. این بیماری می‌تواند به دنبال آسیب مستقیم به بافت ریه‌، مانند پنومونی، آسپیراسیون محتویات معده، استنشاق مواد سمی، هماتوم ریوی یا به‌عنوان عارضه ثانویه‌ای از آسیب‌های غیر‌مستقیم، مانند سپسیس، ترومای شدید، پانکراتیت، سوختگی شدید، مصرف بیش‌از‌حد دارو و یا عفونت کوویدـ۱۹ بروز کند. شایع‌ترین علت ARDS، سپسیس است که حدود ۴۰ درصد موارد را شامل می‌شود. پس از آن پنومونی با حدود ۲۰ درصد موارد قرار دارد. در این بیماری، التهاب گسترده در ریه‌ها به نشت مایع به آلوئول‌ها (کیسه‌های هوایی) منجر می‌شود که تبادل اکسیژن را مختل می‌کند و به تنگی نفس شدید و نارسایی تنفسی می‌انجامد (4-6). توصیف اولیه این بیماری در سال ۱۹۶۷ بر‌اساس مشاهده کاهش سطح اکسیژن خون، تجمع مایع در ریه‌ها و آسیب به غشای مویرگی‌ـ‌آلوئولی صورت گرفت (7). با وجود پیشرفت‌های چشمگیر در درمان‌های پزشکی و مدیریت درمانی از‌طریق ونتیلاسیون، میزان مرگ‌و‌میر ناشی از ARDS همچنان به حدود ۴۰ درصد می‌رسد (8, 9).

بیماران مبتلا به ARDS طیف وسیعی از پیامدهای بالینی را تجربه می‌کنند که از بهبودی کامل تا اختلال دائمی عملکرد ریه و حتی مرگ متغیر است (10-12). در حال حاضر، رویکرد اصلی مدیریت این بیماری تهدیدکننده حیات، بر درمان حمایتی متمرکز است (12). با‌این‌حال، پاسخ به درمان در بیماران متفاوت است. برخی به‌طور کامل بهبود می‌یابند، در‌حالی‌که در برخی دیگر، بافت فیبروز جایگزین بخشی از ریه می‌شود و عملکرد ریوی کاهش می‌یابد. نبود درمان‌ مؤثر، به بررسی گزینه‌های درمانی پیشرفته­تر و مؤثرتر منجر شده است. توسعه رویکردهای درمانی نوین که به‌طور خاص بر بیماری‌های زمینه‌ای تمرکز دارند برای پیشگیری از پیشرفت ARDS و درمان آن ضروری است. در این زمینه، سلول‌های بنیادی مزانشیمی (MSCs) و محصولات مشتق‌شده از آن‌ها در مطالعات پیش‌بالینی نتایج اثربخشی داشته­اند.

مطالعات نشان داده­اند MSCs‌ توانایی کاهش التهاب و ترمیم بافت‌های آسیب‌دیده را در مدل‌های حیوانی ARDS دارند (13, 14). بی­خطر بودن استفاده از این سلول­ها در مطالعات مرتبط با کوویدـ۱۹ تأیید شده است، اما بهبود قابل‌توجهی در عملکرد ریه مشاهده نشده است (15, 16). سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق‌شده از بافت‌های مختلف سبب تخفیف علائم بالینی در این سندرم شده‌ و توانایی تنظیم سیستم ایمنی را نشان داده‌اند (17). با‌این‌حال باید به چالش‌هایی، مانند بقای پایین در بدن، رد شدن توسط سیستم ایمنی و خطر تومورزایی در درمان با  MSCsتوجه داشت (18-20).

شواهد فزاینده‌ای حاکی از پتانسیل وزیکول‌های خارجِ سلولی (EVs) در درمان ARDS و سایر بیماری‌ها وجود دارد (21-25). مطالعات متعدد نشان داده‌اند  EVs مشتق از  MSCs می‌توانند به درمان ARDS در مدل‌های حیوانی کمک کنند. این وزیکول‌ها اثرات درمانی خود را با کاهش ادم ریه، کاهش التهاب و بهبود اکسیژن‌رسانی نشان داده‌اند (24, 26).  اندازه کوچک‌تر و دقت بالاتر وزیکول‌های خارجِ سلولی می‌تواند در مقایسه با درمان‌های سلول کامل، مسائل مرتبط با واکنش­های ایمنی را کاهش دهد (27). اثرات درمانی سلول‌های بنیادی در EVs مشتق‌شده از آن‌ها حفظ می‌شود. انتقال مولکول‌های پیام‌رسان و میتوکندری توسط EVs ممکن است یکی از مهم‌ترین روش‌های ترمیم سد مویرگی‌ـ‌آلوئولی و کاهش التهاب در ریه‌های آسیب‌دیده باشد (28). این یافته‌ها پتانسیل بالای EVs، به‌ویژه وزیکول­های مشتق از  MSCsرا به‌عنوان یک روش درمانی بدون سلول برای ARDS نشان می‌دهد.

نحوه رساندن دارو به ریه‌ها بر طراحی فرمولاسیون آن تأثیر می‌گذارد. تجویز مستقیم دارو به ریه‌ از‌طریق نای به‌منظور ایجاد اثر درمانی موضعی، روشی مؤثر و متداول است که دارو را سریع و دقیق به ریه‌ها می‌رساند (29). برای هدف‌گیری نواحی خاصی از ریه، دستگاه‌های دارورسانی باید ذرات یا قطرات با اندازه مناسب تولید کنند. نبولایزرها، استنشاق‌کننده‌های metered-dose و استنشاق‌کننده‌های dry powder، از‌جمله رایج‌ترین دستگاه‌های دارورسانی تنفسی می‌باشند (30, 31). در مطالعه حاضر از روش نبولایز  EVsمشتق از MSCs به ریه‌ها به‌جای تزریق وریدی سیستماتیک یا تزریق داخل نایی استفاده شد. نبولایز می‌تواند با پاک‌سازی اولیه رتیکولوآندوتلیال، تجمع  EVsدر بافت ریه را افزایش دهد و با پخش یکنواخت وزیکول­ها در فضای آلوئولی، توزیع و کارایی درمان در ریه‌های آسیب‌دیده از ARDS را بهبود بخشد.

 در مطالعات مربوط به سندرم زجر تنفسی حاد، گوسفند به‌عنوان یک مدل حیوانی ارزشمند شناخته شده است. شباهت‌های فیزیولوژیکی بین دستگاه تنفسی گوسفند و انسان، امکان بررسی دقیق مکانیسم‌های بیماری و اثربخشی درمان‌های جدید را فراهم می‌کند. همچنین اندازه مناسب گوسفند، دسترسی آسان به آن و قابلیت ایجاد مدل‌ بیماری­های مختلف، از‌جمله مزایای استفاده از این حیوان در مطالعات است. در مطالعه حاضر، از مدل حیوانی گوسفند برای القای ARDS با تزریق مستقیم لیپوپلی ساکارید (LPS) ‌باکتری ایکلای به داخل ریه­ها استفاده شد.LPS  به ظهور ویژگی‌های کلیدی بالینی  ARDSدر گوسفندها، مانند کاهش اکسیژن‎رسانی، افزایش ادم ریوی و اختلال در عملکرد ریوی منجر شد. هدف اصلی مطالعه حاضر ارزیابی اثرات درمانی نبولایز وزیکول‌های خارجِ سلولی بر علائم بالینی گوسفندهای مبتلا به ARDS بود و یک پلتفرم بالینی مهم برای ارزیابی درمان‌های مبتنی بر EVs در اختلالات شدید تنفسی فراهم کرده است.

مواد و روش‌ کار

حیوانات و طراحی مطالعه: مطالعه حاضر بر روی 6 رأس گوسفند نر از نژاد شال با میانگین وزن 4±35 کیلوگرم انجام شد. گوسفندها در شرایط محیطی مناسب و یکسان از‌نظر نور و دما نگهداری شدند و در طی دوره آزمایش، حیوانات با رژیم غذایی شامل یونجه و کنسانتره تغذیه شدند.

پیش از شروع کار، سلامت گوسفندها با انجام معاینات بالینی و پاراکلینیکی تأیید شد. گوسفندها به‌طور تصادفی به 2 گروه تقسیم شدند: گروه درمان (تعداد=3) و گروه شاهد (تعداد=3). در گروه درمان وزیکول‌های خارجِ سلولی مشتق از سلول‌های بنیادی مزانشیمی بافت چربی (ADMSCs-EVs) به‌صورت آلوژن و در گروه شاهد از محیط کشت ADMSCs  به‌عنوان دارونما استفاده شد.

اخذ نمونه بافت چربی: برای اخذ نمونه بافت چربی ابتدا پشم ناحیه قفسه سینه تراشیده شد. سپس از 35 میلی­گرم/کیلوگرم کتامین 10 درصد (Alfasan -Holland) و 2 میلی­گرم/کیلوگرم دیازپام 2 درصد (Holland Interchemie-) برای القای بیهوشی استفاده شد. قفسه سینه ضدعفونی و پس از ایجاد برش 10 سانتی‌متری در فضای بین دنده‌، مقداری چربی خارج و در PBS (Phosphate Buffered Sulfate) حاوی 1 درصد آنتی‌بیوتیک (پنی‌سیلین/استرپتومایسین) قرار داده شد و بلافاصله به آزمایشگاه کشت سلول و مهندسی بافت پژوهشکده تحقیقات زیست پزشکی دانشگاه تهران انتقال یافت. در انتها پوست با نخ نایلون 0-2 (طب کیهان ـ ایران) بخیه زده شد.

جداسازی سلول‌های بنیادی مزانشیمی بافت چربی (ADMSCs): برای انجام این کار ابتدا بافت چربی با PBS شسته و به قطعات کوچک برش داده شد. سپس با کلاژناز نوع II (با غلظت 1/‌0 درصد) (Sigma-Aldrich) در دمای 37 درجه سانتی‌گراد به‌مدت 60 دقیقه در انکوباتور شیکردار تیمار شد تا سلول‌ها از ماتریکس خارجِ سلولی جدا شوند. نمونه با مش استریل 70 میکرونی برای حذف ذرات باقیمانده فیلتر شد و حجم برابری از محیطDMEM  (Gibco-USA) برای خنثی‌سازی کلاژناز اضافه شد. پس از 2 بار سانتریفیوژ هر بار به‌مدت 10 دقیقه با دور g400، پلت تشکیل‌شده استخراج و به فلاسک‌های 25 میلی‌لیتری حاوی محیط کشت DMEM با گلوکز بالا و 20 درصد FBS (Gibco-USA) و 1 درصد آنتی‌بیوتیک منتقل شدند. فلاسک‌ها در انکوباتور (Memert. USA) با شرایط CO2 5 درصد، دمای 37 درجه سانتی‌گراد و رطوبت 95 درصد قرار داده شدند. سپس هر 3 روز 1 بار محیط کشت تعویض شد تا  کف فلاسک به تراکم حداکثری سلولی برسد. پس از رسیدن به تراکم حداکثری، سلول‌ها با استفاده از محلول تریپسین 05/0 درصد / EDTA 1 میلی‌مولار (Gibco-USA) جدا شدند و سپس با نسبت 1:2 به فلاسک‌های جدید منتقل شدند. فرایند کشت و پاساژ دادن سلول­ها برای به دست آوردن مقدار مورد‌نیاز سلول برای استخراج EVs تکرار شد. در هر بار کشت و پاساژ سلول­ها، محیط رویی جهت جداسازی EVs جمع­آوری در فریزر 80- درجه سانتی‌گراد ذخیره شد (9).

جداسازی و مشخصه‌یابی وزیکول‌های خارجِ سلولی: ابتدا  محیط­ جمع­آوری‌شده از کشت  ADMSCs به‌مدت 5 دقیقه با سرعت g200 سانتریفیوژ شد. مایع رویی جمع­آوری و مجدداً، به‌مدت 20 دقیقه با سرعت g2000 سانتریفیوژ شد. مایع رویی جمع­آوری و بار دیگر به‌مدت 60 دقیقه با سرعت g12000 سانتریفیوژ انجام شد. پس از جمع­آوری، مایع رویی برای بار آخر به‌مدت 3 ساعت با سرعت g2000  سانتریفیوژ شد. در‌نهایت ذرات باقیمانده در ته ظرف به‌عنوان وزیکول­های خارجِ سلولی جمع‌آوری و از‌طریق آزمایش­های پراکنش نوری پویا (DLS) و میکروسکوپ الکترونی نگاره (SEM) مشخصه­یابی شدند.

مدل‌سازی ARDS در گوسفند: القای ARDS در گوسفند مطابق مطالعه قبلی انجام شد (32). به‌طور خلاصه، ابتدا علائم حیاتی گوسفندها در هر دو گروه درمان و شاهد ثبت شد. گوسفندها با کتامین و دیازپام بیهوش شدند و لوله‌گذاری نایی انجام شد. سپس 400 میکروگرم بر کیلوگرم از محلول LPS باکتری ایکلای سویه O55:B5 (Sigma-Aldrich) رقیق‌شده در PBS برای القای التهاب در محل دو شاخه شدن نای به داخل ریه­ها تزریق شد. 24 ساعت بعد مجدداً علائم بالینی بررسی و ثبت شدند.

پیوند ADMSCs-EVs به روش نبولایز: بعد از تأیید ایجاد ARDS، در گوسفندهای گروه درمان ADMSCs-EVs به میزان 600 میکروگرم/کیلوگرم از‌طریق دستگاه نبولایزر (Omron A3 complete) و با استفاده از ماسک به داخل ریه­ها پیوند شدند. در گوسفندهای گروه شاهد نیز از محیط کشت ADMSCs به‌عنوان دارونما برای نبولایز استفاده شد.

معاینات بالینی: ارزیابی بالینی قبل (ساعت 24-) و بعد (روز صفر) از ایجاد مدل ARDS و سپس در زمان­های 3، 6، 12، 24، 48، 72 و 168 ساعت بعد از نبولایز ADMSCs-EVs در گروه درمان و نبولایز محیط ADMSCs در گروه شاهد انجام شد. علائمی شامل دما، تعداد تنفس، تعداد ضربان قلب، صداهای تنفسی، سرفه، اشتها، وضعیت غشاهای مخاطی، ترشحات بینی و وضعیت جسمانی و هوشیاری در همه گوسفندهای هر دو گروه ارزیابی و ثبت شدند. امتیاز علائم غیر‌پارامتریک برای هر گوسفند با استفاده از استانداردها و معیارهای علمی شناخته‌شده که از مطالعات مرتبط و مقالات قبلی گرفته شده بود، تعیین شد (32-35).

تحلیل آماری: برای بررسی آماری نتایج مطالعه حاضر از نرم‌افزار Graphpad PRISM نسخه 9 استفاده شد. داده‌های جمع‌آوری‌شده با استفاده از آزمون‌های آماری پارامتریک repeated measures one-way ANOVA وindependent samples t-test و آزمون­های آماری غیر‌پارامتریک Mann-Whitney U و Friedman مورد تجزیه‌و‌تحلیل قرار گرفتند. سطح معنی‌داری برای همه آزمون‌ها کمتر از 05/0 در نظر گرفته شد.

نتایج

ریخت‌شناسی سلول­های بنیادی مزانشیمی بافت چربی و تأیید وزیکول‌های خارجِ سلولی: سلول­های بنیادی جدا‌شده از بافت چربی در ابتدا کروی‌شکل و همراه با سایر سلول‌ها شامل فیبروبلاست­ها و گلبول­های قرمز بودند. MSCs، به‌دلیل خاصیت چسبندگی به کف ظرف کشت چسبیدند و به‌تدریج با افزایش دفعات پاساژ و تعویض محیط، سایر سلول­ها حذف شدند. بعد از چند روز MSCs ظاهری دوکی‌شکل پیدا کردند و بعد از 2 هفته 80 تا 90 درصد کف ظرف کشت را پوشانده بودند که در این شرایط MSCs پاساژ داده شدند. MSCs بعد از 2 پاساژ متوالی، ریخت‌شناسی کشیده، پهن و الگوی گردابی را نشان دادند. EVs مشتق از ADMSCs نیز از‌طریق آزمایش­های پراکنش نوری پویا (DLS) و میکروسکوپ الکترونی نگاره (SEM) مشخصه­یابی و تأیید شدند.

تأیید مدل سندرم زجر تنفسی حاد: 24 ساعت بعد از تزریق LPS، همه گوسفندها علائم التهاب حاد را بروز دادند، به‌طوری‌که تعداد ضربان قلب، تعداد تنفس و دمای بدن نسبت به قبل از آن افزایش معنی­داری را نشان دادند. همچنین در معاینات بالینی سختی در تنفس، تغییر در صداهای تنفسی و شنیدن کراکل برجسته به‌صورت یک‌طرفه یا دوطرفه، خروج ترشحات از بینی، سرفه­های مرطوب، پرخونی مخاطات، وضعیت جسمانی غیرطبیعی و کاهش اشتها مشهود بود. با مشاهده علائم بالینی و مشابهت با مطالعه قبلی، القای ARDS در گوسفند تأیید شد. 

بهبود علائم بالینی بعد از پیوند ADMSCs-EVs (تعداد تنفس): همان‌طور که در جدول 1 قابل‌مشاهده است، نتایج نشان دادند 1 روز بعد از تزریق LPS (زمان صفر) تعداد تنفس در هر دو گروه افزایش معنی­داری یافت که نشان‌دهنده وقوع ARDS است. در گروه درمان پس از نبولایز ADMSCs-EVs، تعداد تنفس کاهش یافت. چنان‌که کاهش قابل‌توجه و طولانی‌مدت در تعداد تنفس از 12 ساعت پس از نبولایز کردن رخ داد. تجزیه‌و‌تحلیل آماری در گروه درمان در زمان­های 12، 24، 48، 72 و 168 ساعت در مقایسه با زمان صفر (روز وقوع ARDS) کاهش معنی­دار در تعداد تنفس را نشان داد (در همه زمان­ها به‌جز 48 ساعت 001/0‌P= و در زمان 48 ساعت 048/0‌P=)، اما در گروه شاهد تعداد تنفس تا انتهای مطالعه (ساعت 168) افزایش یافت، به‌طوری‌که در مقایسه آماری روزهای مختلف با زمان قبل از القای ARDS (ساعت 24-) افزایش معنی­دار در تعداد تنفس مشاهده شد. همچنین مقایسه آماری گروه درمان با گروه شاهد کاهش معنی­دار در تعداد تنفس را پس از نبولایز ADMSCs-EVs نشان داد، به‌طوری‌که این کاهش در زمان­های 3 ساعت (007/0‌P=)، 6 ساعت (023/0‌P=)، 12 ساعت (005/0‌P=)، 24 ساعت (002/0‌P=)، 48 ساعت (006/0‌P=)، 72 ساعت (001/0‌P=) و 168 ساعت (001/0‌P=) از‌لحاظ آماری معنی­دار بود.

کاهش معنی‌دار در تعداد تنفس پس از نبولایز ADMSCs-EVs نسبت به سطح قبل از نبولایز، نشان‌دهنده اثرگذاری بهینه وزیکول­های خارجِ سلولی در ریه آسیب‌دیده است که شرایط تنفسی را بهبود بخشیده است.

تعداد ضربان قلب: 24 ساعت بعد از القای ARDS، تعداد ضربان قلب در هر دو گروه افزایش معنی­داری یافت (جدول 1)، اما پس از نبولایز ADMSCs-EVs در گروه درمان، تعداد ضربان قلب از ساعت 3 شروع به کاهش کرد. بررسی آماری نیز نشان‌دهنده کاهش معنی­دار در تعداد ضربان قلب در زمان­های 3، 6، 12، 24، 48، 72 و 168 ساعت در مقایسه با زمان صفر بود، در‌حالی‌که در گروه شاهد تعداد ضربان قلب در روزهای مختلف پس از ایجاد ARDS نسبت به قبل از ایجاد آن افزایشی بود و این افزایش در بررسی آماری نیز تا انتهای مطالعه معنی­دار بود. همچنین مقایسه آماری میان گروه درمان و شاهد نشان داد تعداد ضربان قلب در زمان­های 6 ساعت (003/0‌P=)، 24 ساعت (002/0‌P=)، 48 ساعت (011/0‌P=)، 72 ساعت (001/0‌P=) و 168 ساعت (011/0‌P=) پس از نبولایز ADMSCs-EVs، به‌طور قابل‌توجهی کمتر از گروه شاهد در همان دوره‌های زمانی بود.

دمای راست روده: همانند تعداد تنفس و ضربان قلب، دمای راست روده نیز 1 روز پس از تزریق LPS، افزایش معنی­داری را نشان داد (جدول 1). افزایش دمای راست روده در گروه شاهد تا پایان روز مطالعه ادامه داشت و این افزایش در روزهای مختلف نسبت به ساعت 24- از‌لحاظ آماری معنی­دار بود، اما در گروه درمان پس از 12 ساعت دریافت ADMSCs-EVs از‌طریق نبولایز، کاهش قابل‌توجه در میزان دمای راست روده رخ داد، به‌طوری‌که کاهش دمای راست روده تا پایان روز مطالعه در مقایسه با روز صفر (روز وقوع ARDS) پایدار بود و بررسی آماری نیز نشان‌دهنده اختلاف معنی­دار در زمان­های 12 ساعت (028/0‌P=)، 24 ساعت (020/0‌P=)، 48 ساعت (003/0‌P=)، 72 ساعت (003/0‌P=) و 168 ساعت (0.003‌P=) در مقایسه با روز صفر بود. همچنین مقایسه آماری گروه درمان با گروه شاهد کاهش معنی­دار در دمای راست روده را پس از نبولایز ADMSCs-EVs در زمان­های 12 ساعت (006/0‌P=)، 24 ساعت (004/0‌P=)، 48 ساعت (004/0‌P=)، 72 ساعت (002/0‌P=) و 168 ساعت (001/0‌P=) نشان داد.

صداهای تنفسی و سرفه: قبل از شروع مطالعه و القای ARDS (ساعت 24-) صداهای تنفسی در همه گوسفندهای هر دو گروه طبیعی و سرفه­­ای نیز مشاهده نشد و میانه اسکور هر دو علامت در هر دو گروه صفر بود، اما پس از تزریق LPS و القای ARDS (روز صفر) صداهای تنفسی غیر‌طبیعی (کراکل و ویز) با میانه اسکور 3 و حضور سرفه با میانه اسکور 1 در هر دو گروه مشهود بود.

در گروه درمان تغییرات غیر‌طبیعی در صداهای تنفسی تا 12 ساعت پس از نبولایز ADMSCs-EVs ادامه داشت، اما پس از 24 ساعت از شدت صداهای غیرطبیعی تنفس کاسته شد و روند بهبودی رخ داده بود، به‌طوری‌که 2 روز بعد از نبولایز تا انتهای مطالعه صداهای تنفس طبیعی و با میانه اسکور صفر بودند، اما در گروه شاهد تا روز پایان مطالعه (ساعت 168) صداهای غیر‌طبیعی تنفس با میانه اسکور 3 همچنان حضور داشتند. مقایسه آماری گروه درمان با گروه شاهد نیز نشان داد در زمان‌های 48 ساعت (034/0‌P=)، 72 ساعت (025/0‌P=)  و 168 ساعت (025/0= P) تفاوت معنی­داری در اسکور صداهای تنفسی وجود دارد.

ارزیابی نتایج سرفه در گروه درمان نیز نشان‌دهنده کاهش در تعداد سرفه از 48 ساعت پس از نبولایز ADMSCs-EVs تا روز آخر مطالعه با میانه اسکور صفر بود، اما در گروه شاهد تعداد سرفه­ها تا روز پایان مطالعه با میانه اسکور 2 حضور داشتند. بررسی آماری اسکور سرفه­ در گروه درمان با گروه شاهد نیز بیان‌کننده تفاوت معنی­دار در زمان‌ 48 ساعت بود (037/0‌P=).

ترشحات بینی و وضعیت غشاهای مخاطی: قبل از ایجاد ARDS، در همه گوسفندهای هر دو گروه درمان و شاهد خروج ترشحات از بینی وجود نداشت و غشاهای مخاطی رنگ صورتی روشن داشتند و فاقد ترشحات بودند و میانه اسکور برای هر دو علامت در هر دو گروه صفر بود. 24 ساعت پس از القای ARDS و با شروع التهاب، خروج ترشحات از بینی و پرخونی غشاهای مخاطی (هر دو علامت با میانه اسکور 1) در هر دو گروه مشاهده شد.

 1 روز پس از نبولایز ADMSCs-EVs، ترشحات بینی در گروه درمان کاهش یافت و در روز پایانی مطالعه (ساعت 168) ترشحاتی از بینی مشاهده نشد و میانه اسکور صفر بود، اما در گروه شاهد تا پایان روز هفتم (168 ساعت) ترشحات از بینی با میانه اسکور 2 وجود داشت. مقایسه آماری اسکور ترشحات بینی در گروه درمان با گروه شاهد در زمان‌های 24 ساعت (034/0P=)، 48 ساعت (034/0‌P=)، 72 ساعت (025/0‌P=) و 168 ساعت (025/0‌P=) تفاوت معنی­داری را نشان داد. همچنین از شدت پرخونی مخاط‌ها در گروه درمان 48 ساعت پس از نبولایز ADMSCs-EVs کاهش یافت و پس از 72 ساعت به حالت طبیعی با میانه اسکور صفر بازگشت، در‌حالی‌که در گروه شاهد پرخونی مخاط‌ها تا زمان 168 ساعت با میانه اسکور 2 همچنان آشکار بود. بررسی آماری میان گروه درمان و گروه شاهد در زمان‌های 48 ساعت (034/0‌P=)، 72 ساعت (034/0‌P=) و 168 ساعت (034/0‌P=) تفاوت معنی­دار در اسکور وضعیت غشاهای مخاطی نشان داد.

وضعیت اشتها و شرایط جسمانی و هوشیاری: قبل از القای ARDS (ساعت 24-)، وضعیت اشتها و شرایط جسمانی و هوشیاری در همه گوسفندهای هر دو گروه طبیعی بود و میانه اسکور هر دو علامت در هر دو گروه صفر بود، اما 24 ساعت پس از تزریق LPS (روز صفر) کاهش اشتها و شرایط جسمانی غیرطبیعی هر دو علامت با میانه اسکور 2 در گروه شاهد و میانه اسکور 1 در گروه درمان مشهود بود.

در گروه درمان پس از گذشت 12 ساعت از نبولایز ADMSCs-EVs، افزایش اشتها مشاهده شد و ظرف 48 ساعت به حالت طبیعی با میانه اسکور صفر بازگشت، اما در گروه شاهد کاهش اشتها تا روز پایانی مطالعه با میانه اسکور 1 وجود داشت. مقایسه آماری گروه درمان با گروه شاهد نشان داد در زمان‌های 6 ساعت (025/0‌P=)، 24 ساعت (034/0‌P=)، 48 ساعت (034/0‌P=)، 72 ساعت (025/0‌P=) و 168 ساعت (025/0‌P=) تفاوت معنی­داری در اسکور اشتها مشاهده شد.

شرایط جسمانی و هوشیاری گوسفندها در گروه درمان از ساعت 12 پس از نبولایز ADMSCs-EVs شروع به بهبودی کرد (با میانه اسکور 1) و در ساعت 48 به حالت طبیعی (مشابه ساعت 24-) با میانه اسکور صفر بازگشت، در‌حالی‌که در گروه شاهد شرایط جسمانی غیرطبیعی تا پایان مطالعه با میانه اسکور 1 آشکار بود. بررسی آماری گروه درمان با گروه کنترل نشان داد در زمان‌های 12، 24، 48، 72 و 168 ساعت تفاوت معنی­دار در اسکور شرایط جسمانی و هوشیاری گوسفندها وجود دارد (در همه زمان­ها به‌جز 24 ساعت 025/0 P= و در زمان 24 ساعت 034/0‌P=). این یافته­ها آشکار کرد پیوند ADMSCs-EVs در گروه درمان در مقایسه با گروه شاهد، اثر قابل‌توجهی در بهبود علائم بالینی ایجاد‌شده در مدل تجربی ARDS و خصوصاً در ریه آسیب‌دیده داشته و شرایط تنفسی را ارتقا داده است. 

بحث

در مطالعه حاضر از ADMSCs-EVs که به‌صورت استنشاقی به گوسفندهای مبتلا به سندرم زجر تنفسی حاد داده شد، به‌منظور بررسی تأثیر درمانی آن بر علائم بالینی استفاده شد. نتایج نشان دادند نبولایز EVs بر عملکرد ریه تأثیر گذاشتند و به پاسخ سریع­تر و قابل­توجه­تر نسبت به گروه شاهد منجر شده است، به‌طوری‌که بهبود معنی­دار در علائم بالینی طی 24 ساعت اول و سپس در طول مطالعه تا روز هفتم رخ داد، بدون آنکه اثر سوئی از مصرف EVs در گروه درمان طی روزهای مختلف مطالعه مشاهده شود.

برای بررسی ARDS، گوسفند به‌عنوان یک مدل حیوانی بزرگ انتخاب شد. این انتخاب اجازه داد تا به مشکلات رایج استفاده از حیوانات آزمایشگاهی کوچک در مطالعات پیش‌بالینی ARDS پاسخ داده شود (34). استفاده از این مدل حیوانی، اعتبار یافته‌ها را بهبود بخشید و در مطالعه اخیر، القای مدل تجربی ARDS توسط LPS به هیپوکسمی شدید با علائم بالینی واضح در گوسفندها منجر شد. همچنین استفاده از نبولایز به‌عنوان یک استراتژی درمانی غیرتهاجمی سبب شد استرس گوسفندها کاهش یابد. مطالعات نشان داده‌اند تزریق داخل وریدی MSCs-EVs می‌تواند به‌طور مؤثر مشکلات تنفسی را در مدل‌های حیوانی درمان کند (36). با‌این‌حال، با وجود تأثیر بیشتر و تهاجم کمتر روش نبولایز برای توزیع دارو نسبت به سایر روش‌های متداول درمانی، مطالعات محدودی در‌مورد استفاده از آن انجام شده است. Dinh و همکاران در سال 2020 (37)، مطالعه­ای ارائه کردند که در آن‌ از اگزوزوم­ها و ترشحات سلول اسفروئیدی ریه برای درمان 2 نوع مدل‌ تجربی فیبروز ریوی در رت توسط بلئومایسین و سیلیس استفاده کردند. یافته­ها نشان داد درمان با اگزوزوم­ها و ترشحات سلول اسفروئیدی ریه می‌تواند فیبروز القا‌شده توسط بلئومایسین و سیلیس را با بازسازی ساختار طبیعی آلوئولی و کاهش تجمع کلاژن و تکثیر میوفیبروبلاست‌ها کاهش داده و برطرف کند. همچنین نشان دادند درمان استنشاقی با ترشحات سلولی و اگزوزوم‌ها پتانسیل درمانی برای بازسازی ریه در 2 مدل تجربی فیبروز ریوی را دارا است (37).

در مطالعه دیگری تأثیر نبولایز وزیکول­های خارجِ سلولی مشتق از بافت چربی انسان (hADMSCs-EVs) بر آسیب ریوی ناشی از سودوموناس آئروژینوزا در موش‌ بررسی شد. استفاده نبولایز hADMSCs-EVs به افزایش قابل‌توجه نرخ بقا به 80 درصد پس از 96 ساعت در این مدل حیوانی منجر شد. این بهبود با کاهش التهاب و آسیب بافتی ریه همراه بود (38). Zhao و همکاران در سال 2022 وزیکول‌های خارجِ سلولی مشتق از بند ناف انسان (hUCMSC-EVs) را در مدل آسیب حاد ریه (ALI) در موش به‌صورت نبولایز استفاده کردند. وزیکول‌های استنشاق‌شده در درمان ALI نسبت به تزریق وریدی دم مؤثرتر بود و اثرات ضد‌التهابی و آنتی‌اکسیدانی قوی­تری را از خود نشان دادند (39).

ایده معادل‌سازی دُز بر‌اساس وزن ممکن است زمانی که مدل حیوانی موش باشد، قابل‌اتکا در کارآزمایی­های بالینی نباشد. به این دلیل که پیچیدگی سیستم ایمنی انسان و حساسیت آن به محرک‌های محیطی نسبت به موش بسیار متفاوت است. بر‌اساس یافته‌های مطالعه حاضر، مشخص شد تجویز یک دُز استنشاقی ADMSCs-EVs که حاوی 600 میکروگرم/کیلوگرم وزیکول بود، نه‌تنها ایمن بود، بلکه توسط گوسفندها نیز تحمل شد و هیچ نشانه‌ای از عوارض جانبی از پیش تعیین‌شده، بی‌ثباتی و تغییر ناگهانی در علائم بالینی یا نشانه­ای از مسمومیت مرتبط با دُز وجود نداشت. در یک مطالعه در انسان نشان داده شد استنشاق اگزوزوم‌های مشتق از سلول‌های بنیادی مزانشیمی چربی آلوژن در بیماران مبتلا به کوویدـ19 شدید نه‌تنها ایمن بود، بلکه در بهبود علائم بالینی نیز مؤثر بوده‎است (40).

وزیکول‌های خارجِ سلولی مشتق از سلول­های بنیادی مزانشیمی اثرات ترمیمی قابل‌توجهی در آسیب ریوی ناشی از پنومونی شدید باکتریایی نشان می‌دهند. مکانیسم اصلی دستیابی به این هدف، کاهش نفوذ سلول‌های التهابی و فعالیت سیتوکین است (26). اثرات درمانی EVs در اختلالات تنفسی مختلف ثابت شده است. برای ارزیابی اثرات درمانی میکرووزیکول­های مشتق از سلول­های بنیادی مزانشیمی (MSCs-MVs)، Park و همکاران در سال 2019 (42) از یک مدل انسانی ex vivo پنومونی باکتریایی استفاده کردند. بر‌اساس یافته‌های آن‌ها، MSCs-MVs در مدل پنومونی شدید ایکلایی، دارای اثر درمانی بود. یک یافته مهم در مطالعه حاضر، ظرفیت درمانی وزیکول‌های خارجِ سلولی در بهبود علائم بالینی بود (42). در طول مطالعه حاضر نیز گروه درمانی بهبود قابل‌توجهی در شاخص‌های بالینی نشان داد که به‌وضوح در مقایسه با گروه شاهد قابل‌تشخیص بود. ویژگی مهم این بهبود کاهش تدریجی در تعداد تنفس و تعداد ضربان قلب همراه با تعدیل صداهای تنفسی بود. علاوه‌بر‌این، شاخص‌های بالینی دیگری نیز وجود داشتند که بهبود سریع را نشان دادند. بنابراین می‌توان بر اثربخشی وزیکول‌های خارجِ سلولی در درمان این علائم تأکید کرد.

مطالعه حاضر علی‌رغم نتایج امیدوارکننده دارای محدودیت‌هایی بود. اولین محدودیت این است که مدل حیوانی فقط 1 دُز ADMSCs-EVs دریافت کرد، بنابراین نتایج ممکن است برای دُزهای دیگر تعمیم‌پذیر نباشد. دوم اینکه اطلاعاتی در‌مورد مسیرهای مولکولی و سلول‌های هدف خاص EVs استنشاقی وجود ندارد که مانع از درک کامل اثرات آن‌ها می‌شود. علاوه‌بر‌این مطالعه حاضر به‌دلیل محدودیت‌های مالی، روش‌های جایگزین تجویز استنشاقی EVs را بررسی نکرد که می‌تواند به نتایج متفاوت منجر شود. این محدودیت‌ها زمینه‌هایی را برای مطالعات آینده بر‌اساس نتایج مطالعه حاضر امکان‌پذیر می‌کند.

نتیجه‌گیری نهایی: نتایج مطالعه حاضر نشان داد وزیکول‌های خارجِ سلولی مشتق از سلول‌های بنیادی مزانشیمی بافت چربی (ADMSCs-EVs) پتانسیل درمانی امیدوارکننده‌ای در مدیریت سندرم زجر تنفسی حاد (ARDS) دارند، به‌طوری‌که پیوند ADMSCs-EVs در گروه درمان در مقایسه با گروه شاهد اثر قابل‌توجهی در بهبود شاخص­های بالینی ایجاد‌شده در مدل تجربی ARDS داشت و وضعیت تنفسی را ارتقا بخشید. انجام مطالعات بیشتر برای روشن شدن کامل فرایندهای مسئول اثرات درمانی MSCs-EVs و ارزیابی اثربخشی آن‌ها در کارآزمایی‌های بالینی بزرگ‌تر مفید خواهد بود. به‌طور‌کلی، یافته‌های مطالعه حاضر  چشم‌اندازهای جدید مهمی در‌مورد امکان درمان‌های مبتنی بر EVs برای مدیریت ARDS و سایر بیماری‌های تنفسی ارائه می‌دهد.

ملاحظات اخلاقی

 تمام مراحل و آزمایش‌های حیوانی مطالعه (با کد اخلاق: IR.UT.VETMED.REC.1402.029) در کمیته اخلاق پژوهش‌های حیوانی تأیید و مطابق با پروتکل‌های اخلاقی تحقیقات بر روی حیوانات انجام شده است.

تعارض منافع

هیچ گونه تعارض منافعی در ارتباط با این مطالعه وجود ندارد.

مراجع
  1. Mokhber Dezfouli MR, Sadeghian Chaleshtori S, Dehghan MM, Tavanaeimanesh H, Baharvand H, Tahamtani Y. The therapeutic potential of differentiated lung cells from embryonic stem cells in lung diseases. Curr Stem Cell Res Ther. 2017;12(1):80-4. doi: 10.2174/1574888x11666160914184255 PMID: 27633037
  2. Baron RM, Levy BD. Recent advances in understanding and treating ARDS. F1000Res. 2016;5:725. doi: 10.12688/f1000research.7646.1 PMID: 27158460
  3. Donahoe M. Acute respiratory distress syndrome: A clinical review. Pulm Circ. 2011;1(2):192-211. doi: 10.4103/2045-8932.83454 PMID: 22034606
  4. Fan E, Brodie D, Slutsky AS. Acute respiratory distress syndrome: Advances in diagnosis and treatment. JAMA. 2018;319(7):698-710. doi: 10.1001/jama.2017.21907 PMID: 29466596
  5. Sharma S. Acute respiratory distress syndrome. BMJ Clin Evid. 2010;2010:1511. PMID: 21406126
  6. Shaver CM, Bastarache JA. Clinical and biological heterogeneity in acute respiratory distress syndrome: direct versus indirect lung injury. Clin Chest Med. 2014;35(4):639-53. doi: 10.1016/j.ccm.2014.08.004 PMID: 25453415
  7. Force ADT, Ranieri VM, Rubenfeld GD, Thompson BT, Ferguson ND, Caldwell E, et al. Acute respiratory distress syndrome: The Berlin Definition. JAMA. 2012;307(23):2526-33. doi: 10.1001/jama.2012.5669 PMID: 22797452
  8. Matthay, MA, Zemans, RL, Zimmerman, GA, Arabi YM,  Beitler JR, Mercat A, et al. Acute respiratory distress syndrome. Nat Rev Dis Primers. 2019;5(1):18. doi: 10.1038/s41572-019-0069-0 PMID: 30872586
  9. Sadeghian Chaleshtori S, Mokhber Dezfouli MR, Abbasi J, Dehghan MM, Jabbari Fakhr M, Yadollahi S, et al. Prevention of LPS-induced acute respiratory distress syndrome in sheep by bone marrow-derived mesenchymal stem/stromal cells. Life Sci. 2020;263:118600. doi: 10.1016/j.lfs.2020.118600 PMID: 33068598
  10. Herridge MS. Recovery and long-term outcome in acute respiratory distress syndrome. Crit Care Clin. 2011;27(3):685-704. doi: 10.1016/j.ccc.2011.04.003 PMID: 21742223
  11. Herridge MS, Tansey CM, Matte A, Tomlinson G, Diaz-Granados N, Cooper A, et al. Functional disability 5 years after acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2011;364(14):1293-304. doi: 10.1056/NEJMoa1011802 PMID: 21470008
  12. Hughes KT, Beasley MB. Pulmonary manifestations of acute lung injury: More than just diffuse alveolar damage. Arch Pathol Lab Med. 2017;141(7):916-922. doi: 10.5858/arpa.2016-0342-RA PMID: 27652982
  13. Edström D, Niroomand A, Stenlo M, Uvebrant K, Bölükbas DA, Hirdman G, et al. Integrin α10β1-selected mesenchymal stem cells reduced hypercoagulopathy in a porcine model of acute respiratory distress syndrome. Respir Res. 2023;24(1):145. doi: 10.1186/s12931-023-02459-6 PMID: 37259141
  14. Liang TY, Lu LH, Tang SY, Zheng ZH, Shi K, Liu JQ. Current status and prospects of basic research and clinical application of mesenchymal stem cells in acute respiratory distress syndrome. World J Stem Cells. 2023;26:15(4):150-164. doi: 10.4252/wjsc.v15.i4.150 PMID: 37180997
  15. Gorman EA, Rynne J, Gardiner HJ, Rostron AJ, Bannard-Smith J, Bentley AM, et al. Repair of acute respiratory distress syndrome in COVID-19 by stromal cells (REALIST-COVID Trial): A multicenter, randomized, controlled clinical trial. Am J Respir Crit Care Med. 2023;208(3):256-69. doi: 10.1164/rccm.202302-0297OC PMID: 37154608
  16. Wang F, Li Y, Wang B, Li J, Peng Z. The safety and efficacy of mesenchymal stromal cells in ARDS: a meta-analysis of randomized controlled trials. Crit Care. 2023;27(1):31. PMID: 10.1186/s13054-022-04287-4
  17. Zhang H, Slutsky AS. Enhancing the efficacy of mesenchymal stromal cells in COVID-19–related acute respiratory distress syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2023;208(3):222-224. doi: 10.1164/rccm.202306-0969ED
  18. Jeong JO, Han JW, Kim JM, Cho HJ, Park C, Lee N, et al. Malignant tumor formation after transplantation of short-term cultured bone marrow mesenchymal stem cells in experimental myocardial infarction and diabetic neuropathy. Circ Res. 2011;108(11):1340-1347. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.110.239848 PMID: 21493893
  19. Cheng Y, Cao X, Qin L. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles: A novel cell-free therapy for sepsis. Front Immunol. 2020;11:647. doi: 10.3389/fimmu.2020.00647 PMID: 32373121
  20. Ghasemi S, Dehghan MM, Brujeni GN, Mardjanmehr SH, Vajhi A, Dezfouli MRM, et al. Fabrication of superparamagnetic iron oxide nanoparticles for magnetic cell targeting purposes. J Vet Res. 2021;76(2):224-232. doi: 10.22059/jvr.2019.286113.2952
  21. Zhou Y, Xu H, Xu W, Wang B, Wu H, Tao Y, et al. Exosomes released by human umbilical cord mesenchymal stem cells protect against cisplatin-induced renal oxidative stress and apoptosis in vivo and in vitro. Stem Cell Res Ther. 2013;4(2):34. doi: 10.1186/scrt194 PMID: 23618405
  22. Wang B, Jia H, Zhang B, Wang J, Ji C, Zhu X, et al. Pre-incubation with hucMSC-exosomes prevents cisplatin-induced nephrotoxicity by activating autophagy. Stem Cell Res Ther. 2017;8(1):75. doi: 10.1186/s13287-016-0463-4 PMID: 28388958
  23. Lee C, Mitsialis SA, Aslam M, Vitali SH, Vergadi E, Konstantinou G, et al. Exosomes mediate the cytoprotective action of mesenchymal stromal cells on hypoxia-induced pulmonary hypertension. Circulation. 2012;126(22):2601-2611. doi: 10.1161/CIRCULATIONAHA.112.114173 PMID: 23114789
  24. Potter DR, Miyazawa BY, Gibb SL, Deng X, Togaratti PP, Croze RH, et al. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles attenuate pulmonary vascular permeability and lung injury induced by hemorrhagic shock and trauma. J Trauma Acute Care Surg. 2018;84(2):245-56. doi: 10.1097/TA.0000000000001744 PMID: 29251710
  25. Trouski FF, Parham A. Exosomes Derived from Mesenchymal Stem Cells in the Treatment of Animal Tendon Injuries: A Review on Their Isolation and Application. Iran J Vet Med. 2021;15(3):259-274. doi: 10.22059/ijvm.2021.322050.1005168
  26. Monsel A, Zhu Y-g, Gennai S, Hao Q, Hu S, Rouby J-J, et al. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cell–derived microvesicles in severe pneumonia in mice. Am J Respir Crit Care Med. 2015;192(3):324-336. doi: 10.1164/rccm.201410-1765OC
  27. Madrigal M, Rao KS, Riordan NH. A review of therapeutic effects of mesenchymal stem cell secretions and induction of secretory modification by different culture methods. J Transl Med. 2014;12:260. doi: 10.1186/s12967-014-0260-8 PMID: 25304688
  28. Sun H, Zhang T, Gao J. Extracellular Vesicles Derived from Mesenchymal Stem Cells: A Potential Biodrug for Acute Respiratory Distress Syndrome Treatment. BioDrugs. 2022;36(6):701-715. doi: 10.1007/s40259-022-00555-5 PMID: 36087245
  29. Byron PR, Patton JS. Drug delivery via the respiratory tract. J Aerosol Med. 1994;7(1):49-75. doi: 10.1089/jam.1994.7.49 PMID: 10147058
  30. Wilson JG, Liu KD, Zhuo H, Caballero L, McMillan M, Fang X, et al. Mesenchymal stem (stromal) cells for treatment of ARDS: a phase 1 clinical trial. Lancet Respir Med. 2015;3(1):24-32. doi: 10.1016/S2213-2600(14)70291-7 PMID: 25529339
  31. Azari O, Nikzad R, Farsinezhad A, Azizi S. Comparative Regenerative Effects of Allogeneic Bone Marrow and Patellar Ligament Fat Pad Mesenchymal Stem Cells on Experimental Superficial Digital Flexor Tendonitis in New Zealand Rabbits. Iran J Vet Med. 2023;17(4):353-362. doi: 10.32598/ijvm.17.4.1005314
  32. Mokhber Dezfouli MR, Lotfollahzadeh S, Heidari Sureshjani M, Dehghan M, Nikbakht GR, Eftekhari Z, et al. Changes in clinical signs after treatment in calves with experimental colisepticemia with Escherichia coli. J Vet Res. 2017;72(1):63-71. doi: 10.22059/jvr.2017.61293
  33. Patterson C. Veterinary Medicine: A Textbook of the Diseases of Cattle, Horses, Sheep, Pigs, and Goats, 11th edition, Volumes 1 and 2. Can Vet J. 2017;58(10):1116.
  34. Abbasi J, Mokhber Dezfouli M, Sadeghian Chaleshtori S, Dehghan M, Vajhi A, Baharvand H, et al. Improvement of clinical signs in experimental model of acute respiratory distress syndrome (ARDS) in sheep following autograft of bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BM-MSCs). J Vet Res. 2018;73(1):17-26. doi: 10.22059/jvr.2018.234436.2637
  35. Tieu A, Hu K, Gnyra C, Montroy J, Fergusson DA, Allan DS, et al. Mesenchymal stromal cell extracellular vesicles as therapy for acute and chronic respiratory diseases: A meta‐analysis. J Extracell Vesicles. 2021;10(12):e12141. doi: 10.1002/jev2.12141 PMID: 34596349
  36. Dinh PC, Paudel D, Brochu H, Popowski KD, Gracieux MC, Cores J, et al. Inhalation of lung spheroid cell secretome and exosomes promotes lung repair in pulmonary fibrosis. Nat Commun. 2020;11(1):1064. doi: 10.1038/s41467-020-14344-7 PMID: 32111836
  37. Shi MM, Yang QY, Monsel A, Yan JY, Dai CX, Zhao JY, et al. Preclinical efficacy and clinical safety of clinical-grade nebulized allogenic adipose mesenchymal stromal cells-derived extracellular vesicles. J Extracell Vesicles. 2021;10(10):e12134. doi: 10.1002/jev2.12134 PMID: 34429860
  38. Zhao R, Wang L, Wang T, Xian P, Wang H, Long Q. Inhalation of MSC-EVs is a noninvasive strategy for ameliorating acute lung injury. J Control Release. 2022;345:214-230. doi: 10.1016/j.jconrel.2022.03.025 PMID: 35307508
  39. Zhu YG, Shi MM, Monsel A, Dai CX, Dong X, Shen H, et al. Nebulized exosomes derived from allogenic adipose tissue mesenchymal stromal cells in patients with severe COVID-19: a pilot study. Stem Cell Res Ther. 2022;13(1):220. doi: 10.1186/s13287-022-02900-5 PMID: 35619189
  40. Park J, Kim S, Lim H, Liu A, Hu S, Lee J, et al. Therapeutic effects of human mesenchymal stem cell microvesicles in an ex vivo perfused human lung injured with severe E. coli pneumonia. Thorax. 2019;74(1):43-50. doi: 10.1136/thoraxjnl-2018-211576 PMID: 30076187
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 45
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 62





سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب