تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,572 |
تعداد مقالات | 71,020 |
تعداد مشاهده مقاله | 125,495,856 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 98,757,761 |
مطالعة اثر سمیت ذرات احیاء شدة نقره کلوئیدی با استفاده از عصارة الکلی بره موم پرتوتابی شده و نمک نیترات نقره بر ریز جلبک Chlorella vulgaris | ||
شیلات | ||
دوره 76، شماره 3، مهر 1402، صفحه 423-435 اصل مقاله (638.9 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jfisheries.2023.355590.1371 | ||
نویسندگان | ||
سیدمحمودرضا آقامیری1؛ مرضیه حیدریه* 2؛ سعیده نعیمی3؛ آوا رضایی4 | ||
1استاد، گروه آموزشی پرتوپزشکی، دانشکده مهندسی هستهای، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران | ||
2دانشیار، پژوهشگاه علوم و فنون هسته ای، تهران، ایران | ||
3استادیار، گروه آموزشی علومپایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران | ||
4دکتری دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران | ||
چکیده | ||
انتشار نانوذرات، از جمله نانوذرات نقره استفاده شده در صنایع مختلف به محیط زیست و اثرات سمی احتمالی آنها بر رشد گیاهان و سلامت انسانها نگرانی جامعه را فراهم آورده و نیاز به تحقیق و بررسی در این زمینه را پررنگتر نموده است. هدف از این مطالعه بررسی اثر سمیت مواجهه با غلظتهای مختلف (10، 50، 100 و 200 میکروگرم/لیتر) ذرات احیاء شده نقره با استفاده از عصارة الکلی برهموم پرتودهی شده با پرتو گاما در سطح 10 کیلوگری (AgNPs-γ)، ذرات احیاء شدة نقره با استفاده از عصارة الکلی بره موم پرتودهی نشده (AgNPs) و نمک نیترات نقره (AgNO3) بر ریزجلبکهای کلرلا ولگاریس (Chlorella vulgaris) بود. نتایج نشان داد که درصد مهار رشد در گروههای مواجهه یافته با AgNPs-γ و AgNPs و AgNO3 بهصورت AgNo3 وابسته به غلظت افزایش یافت (0/05>P). همچنین در این گروهها درصد زندهمانی سلولها، غلظت جلبک (میکرو/لیتر) و میزان کلروفیل a کاهش و درصد تغییر شاخص هدایت الکترولیتی/سلول زنده (میزان نشت الکترولیتی) بهصورت معنی داری افزایش یافت (0/05>P). براساس نتایج بهدست آمده، ببهترتیب AgNo3<AgNPs< AgNPs-γ موجب ایجاد سمیت و کاهش رشد و فتوسنتز در ریزجلبک کلرلا ولگاریس میشوند. | ||
کلیدواژهها | ||
بره موم؛ ذرات احیاء شده نقره؛ پرتوتابی؛ کلرلا ولگاریس | ||
مراجع | ||
Arunakumara, K.K.I.U., Zhang, X., 2008. Heavy metal bioaccumulation and toxicity with special reference to microalgae. Journal of Ocean University of China 7(1), 60-64.DOI:10.1007/s11802-008-0060-y. Aruoja, V., Dubourguier, H.C., Kasemets, K., Kahru, A., 2009. Toxicity of nanoparticles of CuO, ZnO and TiO2 to microal-gae Pseudokirchneriella subcapitata. Science of the Total Environment 407(4), 1461-1468. DOI :10.1016/j.scitotenv.2008.10.053 Banerjee, S., Hew Khatoon, W.E.H., Shariffi, M., 2011. Growth and proximate composition of tropical marine Chaetoceros calcitrans and Nannochloropsis oculata cultured outdoors and under laboratory condition. African Journal of Biotechnology 10(8), 1375-1383. DOI: 10.5897/AJB10.1748 Barbosa, V.T., Souza, J.K.C., Alvino, V., Meneghetti, M.R., Florez-Rodriguez, P.P., Moreira, R.E., Paulino, G.V.B., Landell, M.F., Basílio-Júnior, I.D., do Nascimento, T.G., Luciano A. M. Grillo, L.A.M., Camila B. Dornelas, C.B., 2019. Biogenic synthesis of silver nanoparticles using Brazilian propolis. Biotechnology Progress 35(7), e2888. DOI: 10.1002/btpr.2888 Bhuyan, U., Handique, J.G., 2022. Chapter 6 - Plant polyphenols as potent antioxidants: Highlighting the mechanism of antioxidant activity and synthesis/development of some polyphenol conjugates, Editor(s): Atta-ur-Rahman, Studies in Natural Products Chemistry, Elsevier 75, 243-266. Bosio, K., Avanzini, C., Avolio, A.D., Ozino, O., Savoia D., 2000. In vitro activity of propolis against Streptococcus pyogenes. Letters in Applied Microbiology 31(2), 174-177. DOI: 10.1046/j.1365-2672.2000.00785.x Deres, S., Gunes, T., Sivaci, R., 1998. Spectrophotometric determination of chlorophyll a, b and total carotenoid content of some algae species using different solvent. Turkish Journal of Botany 22(1), 13-17. Ebrahimzadeh, Z., Salehzadeh, A., Naeemi, A.S., Jalali A., 2020. Silver nanoparticles biosynthesized by Anabaena flosaquae enhance the apoptosis in breast cancer cell line. Bulletin of Materials Science 43(1), 1-7. DOI: 10.1007/s12034-020-2064-1 Ghanizadeh, F., 1401. Biosynthesis of silver nanoparticles using gamma irradiated of Iranian propolis. MSc Thesis, Faculty of Nuclear Engineering, Shahid Beheshti University, Tehran, Iran. DOI:10.21203/rs.3.rs-2012454/v1 Gong, N., Shao, K., Feng, W., Lin, Z., Liang, C., Sun, Y., 2011. Biotoxicity of nickel oxide nanoparticles and bioremediation by microalgae Chlorella vulgaris. Chemosphere 83(4), 510-516. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2010.12.059 Gruyer, N., Dorais, M., Bastien, C., Dassylva, N., Triffault-Bouchet, G., 2013. Interaction between silver nanoparticles and plant growth. In International Symposium on New Technologies for Environment Control, Energy-Saving and Crop Production in Greenhouse and Plant 1037, 795-800. DOI:10.17660/ActaHortic.2014.1037.105 Hedayati, S.A., Farsani, H.G., Naserabad, S.S., Hoseinifar, S.H., Van Doan, H., 2019. Protective effect of dietary vitamin E on immunological and biochemical induction through silver Heidarieh, M., Chakoli Nabipour, A., Shahbazi, S., Shawrang, P., Zhang, B., 2021. Effect of gamma irradiation processing on total phenol and antioxidant capacities of the Iranian extract of propolis. Radiochimica Acta 109(8), 635-641. DOI: 10.1515/ract-2021-1042 Huang, S.J., Mau, J.L., 2007. Antioxidant properties of methanolic extracts from Antrodia camphorata with various doses of γ-irradiation. Food Chemistry 105(4), 1702-1710. DOI: 10.1016/j.foodchem.2007.04.046 Jiang, H.S., Li, M., Chang, F.Y., Li, W., Yin, L.Y., 2012. Physiological analysis of silver Johari, S.A., Sarkheil, M., Tayemeh, M.B., Veisi, S., 2018. Influence of salinity on the toxicity of silver nanoparticles (AgNPs) and silver nitrate (AgNO3) in halophilic microalgae, Dunaliella salina. Chemosphere 209(C), 156-162. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2018.06.098 Karimi, R., Norastehnia, A., Abbaspour, H. Saeidi Sar, S., Naeemi, A.S., 2018. Evaluation of copper oxide nanoparticle toxicity to cyanobacteria Anabaena sp. in Guilan wetlands. Aquatics Physiology and Biotechnology 6(1), 1-20. DOI:10.22124/japb.2018.7224.1157 Karimi, R., Norastehnia, A., Abbaspour, H., Saeidi Sar, S., Naeemi, A.S., 2017. Effects of copper oxide nanoparticles on the growth of Chlorella vulgaris. Progress in Biological Sciences 7(1), 11-20. DOI: 10.22059/pbs.2018.226951.1253 Kastori, R., Plesnicar, M., Sakac, Z., Pankovic, D., Arsenijevic Maksimovic, I., 1998. Effect of excess lead on sunflower growth and photosynthesis. Journal of Plant Nutrition 21(1), 75-85. DOI: 10.1080/01904169809365384 Khan, I., Raza, M.A., Khalid, M.H.B., Awan, S.A., Raja, N.I., Zhang, X., Min, S., Wu, B.C., Hassan, M.J., Huang, L., 2019. Physiological and biochemical responses of pearl millet (Pennisetum glaucum L.) seedlings exposed to silver nitrate (AgNO3) and silver nanoparticles (AgNPs). International Journal of Environmental Research and Public Health 16(13), 2261. DOI: 10.3390/ijerph16132261 Khristo Forova, N.K., Aizdaicher, N.A., Berezovskaya, O., 1996. The effect of copper ions and a detergent of green microalge Dunaliella tertiolecta and Platymonas sp. Russian Journal of Marine Biology 22, 109-114. Kitada, K., Machmudah, S., Sasaki, M., Goto, M., Nakashima, Y., Kumamoto, S., Hasegawa, T., 2009. Supercritical CO2 extraction of pigment components with pharmaceutical importance from Chlorella vulgaris. Journal of Chemical Technology & Biotechnology: International Research in Process, Environmental & Clean Technology 84(5), 657-661. DOI:10.1002/jctb.2096 Kumar, P., Senthamil Selvi, S., Govindaraju, M., 2012a. Seaweed-mediated biosynthesis of silver nanoparticles using Gracilaria corticata for its antifungal activity against Candida spp. Applied Nanoscience 3(6), 495-500. DOI: 10.1007/s13204-012-0151-3 Kumar, P., Senthamil Selvi, S., Lakshmi Prabha, A., Prem Kumar, K., Ganeshkumar, R.S., Govindaraju, M., 2012b. Synthesis of silver nanoparticles from Sargassum tenerrimum and screening phytochemicals for its antibacterial activity. Nano Biomedicine and Engineering 4(1), 2-16. DOI: 10.5101/nbe. V4i1.p12-16 Kumar, P., Senthamil Selvi, S., Lakshmi Prabha, A., Selvaraj, M., Macklin Rani, L., Suganthi, P., Sarojini D., Govindaraju, M., 2012c. Antibacterial activity and in-vitro cytotoxicity assay against brine shrimp using silver nanoparticles synthesized from Sargassum ilicifolium. Digest Journal of Nanomaterials and Biostructures 7(4), 1447-1455. Li, X., Schirmer, K., Bernard, L., Sigg, L., Pillai, S., Behra, R., 2015. Silver nanoparticle toxicity and Liu, C., Liu, Y., Guo, K., Fan, D., Li, G., Zheng, Y., 2011. Effect of drought on pigments, osmotic adjustment and antioxidant enzymes in six woody plant species in karst habitats of southwestern China. Environmental and Experimental Botany 71(2), 174-183. DOI: 10.1016/j.envexpbot.2010.11.012 Liu, J., Wang, W., Wang, L., Sun, Y., 2015. Exogenous melatonin improves seedling health index and drought tolerance in tomato. Journal of Plant Growth Regulation 77(3), 317-326. DOI: 10.1007/s10725-015-0066-6 Martınez, M., Sánchez, S., Jimenez, J., El Yousfi, F., Munoz, L., 2000. Nitrogen and phosphorus removal from urban wastewater by the microalga Scenedesmus obliquus. Bioresource Technology 73(3), 263-272. DOI: 10.1016/S0960-8524(99)00121-2. Naeemi, A.S., Sarmad, J., Mohseni, N., Kehtari, F., 2018. The effects of different concentrations of lead on the growth, photosynthetic pigments and malondialdehyde content of the unicellular green algae Chlorella Vulgaris. Journal of Plant Research (Iranian Journal of Biology) 30(4), 940-947. DOI: 20.1001.1.23832592.1396.30.4.19.4 Parker, M.S., Mock, T., Armbrust, E.V., 2008. Genomic insights into marine microalgae. Annual Review of Genetics 42(1), 619-645. DOI: 10.1146/annurev.genet.42.110807.091417. Pham, T.L., 2019. Effect of silver nanoparticles on tropical freshwater and marine microalgae. Rossa, M.M., oliveira, M.C., Okamoto, O.K., lopes, P.F., Colepicolo, P., 2002. Effect of visible light on super oxidase dismutase SOD activity in the red Alga Gracilariopsis tenuifrons (Gracilarials, Rhodophyta). Journal of applied phycology 14(3), 151-157. DOI: 10.1023/A: 1019985722808 Shanab, S.M.M., Partila, A.M., Ali, H.E.A., Abdullah, M.A., 2021. Impact of gamma-irradiated Sumi, Y., 2009. Microalgae pioneering the future-application and utilization. Science and Technology Trends 34, 9-21 Vishwakarma, K., Upadhyay, N., Singh, J., Liu, S., Singh, V.P., Prasad, S.M., Chauhan, D.K., Tripathi, D.K., Sharma, S., 2017. Differential phytotoxic impact of plant mediated silver nanoparticles (AgNPs) and silver nitrate (AgNO3) on Brassica Sp. Frontiers in Plant Science 8, 1501. DOI:10.3389/fpls.2017.01501. Wang, L., Cui, Y.R., Lee, H.G., Fu, X., Wang, K., Xu, J., Gao, X., Jeon, Y.J., 2022. Fucoidan isolated from fermented Sargassum fusiforme suppresses oxidative stress through stimulating the expression of superoxidase dismutase and catalase by regulating Nrf2 signaling pathway. International Journal of Biological Macromolecules 209 (part A), 935-941. DOI: 10.1016/j.ijbiomac.2022.04.083 Wang, L., Wang, M., Peng, C., Pan, J., 2013. Toxic Effects of Nano-CuO, Micro-CuO and Cu2+ on Chlorella Sp. Journal of Environmental Protection 4(1B), 86-91. DOI: 10.4236/jep.2013.41B016 Zuliani, L., Frison, N., Jelic, A., Fatone, F., Bolzonella, D., Ballottari, M., 2016. Microalgae cultivation on anaerobic digestate of municipal wastewater, sewage sludge and agro-waste. International Journal of Molecular Sciences 17(10), E1692. DOI: 10.3390/ijms17101692 | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 171 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 142 |