سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات158
تعداد شماره‌ها6,225
تعداد مقالات67,685
تعداد مشاهده مقاله114,933,905
تعداد دریافت فایل اصل مقاله89,605,599
رضوی, مهساسادات, گلمحمدی, عبدالله, نعمت اله زاده, علی, قنبری, علیرضا, داوری, مهدی. (1399). بهینه‌سازی اثرات ضد قارچی اسانس‌های دارچین، آویشن شیرازی، و مرزه خوزستانی علیه قارچ کپک آبی (Penicillium expansum) با استفاده از روش سطح پاسخ. , 51(1), 67-78. doi: 10.22059/ijpps.2020.291689.1006917
مهساسادات رضوی; عبدالله گلمحمدی; علی نعمت اله زاده; علیرضا قنبری; مهدی داوری. "بهینه‌سازی اثرات ضد قارچی اسانس‌های دارچین، آویشن شیرازی، و مرزه خوزستانی علیه قارچ کپک آبی (Penicillium expansum) با استفاده از روش سطح پاسخ". , 51, 1, 1399, 67-78. doi: 10.22059/ijpps.2020.291689.1006917
رضوی, مهساسادات, گلمحمدی, عبدالله, نعمت اله زاده, علی, قنبری, علیرضا, داوری, مهدی. (1399). 'بهینه‌سازی اثرات ضد قارچی اسانس‌های دارچین، آویشن شیرازی، و مرزه خوزستانی علیه قارچ کپک آبی (Penicillium expansum) با استفاده از روش سطح پاسخ', , 51(1), pp. 67-78. doi: 10.22059/ijpps.2020.291689.1006917
رضوی, مهساسادات, گلمحمدی, عبدالله, نعمت اله زاده, علی, قنبری, علیرضا, داوری, مهدی. بهینه‌سازی اثرات ضد قارچی اسانس‌های دارچین، آویشن شیرازی، و مرزه خوزستانی علیه قارچ کپک آبی (Penicillium expansum) با استفاده از روش سطح پاسخ. , 1399; 51(1): 67-78. doi: 10.22059/ijpps.2020.291689.1006917

بهینه‌سازی اثرات ضد قارچی اسانس‌های دارچین، آویشن شیرازی، و مرزه خوزستانی علیه قارچ کپک آبی (Penicillium expansum) با استفاده از روش سطح پاسخ

دانش گیاهپزشکی ایران
دوره 51، شماره 1، شهریور 1399، صفحه 67-78    اصل مقاله (888.2 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2020.291689.1006917
نویسندگان
مهساسادات رضوی1؛ عبدالله گلمحمدی* 2؛ علی نعمت اله زاده3؛ علیرضا قنبری4؛ مهدی داوری5
1دانشجوی دکتری مکانیک بیوسیستم، گروه مهندسی مکانیک بیوسیستم، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، ایران
2گروه مهندسی بیوسیستم، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
3دانشیار گروه مهندسی شیمی، دانشکده فنی و مهندسی، دانشگاه محقق اردبیلی، ایران
4دانشیار گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، ایران
5دانشیار گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، ایران
چکیده
استفاده از اسانس‌ها به‌عنوان عوامل ضد قارچی طبیعی و جایگزین‌هایی برای قارچ‌کش‌های شیمیایی توجه زیادی را به خود جلب کرده است. در این تحقیق، ترکیبات شیمیایی و خواص ضد قارچی سه اسانس دارچین، آویشن شیرازی و مرزه خوزستانی با هدف بررسی اثر غلظت اسانس و زمان تماس در کنترل قارچ عامل کپک آبی (Penicillium expansum) و مدل‌سازی و بهینه‌یابی خواص ضد قارچی اسانس‌های موردنظر با استفاده از روش سطح پاسخ بررسی شده است. بر اساس نتایج حاصل از GC-MS، ترکیبات اصلی برای اسانس دارچین، سینامالدهاید (۸۲/۸۰ درصد)، برای آویشن شیرازی ترکیبات تیمول (۶۸/۳۲ درصد)، کارواکرول (۵۷/۳۰ درصد) و پاراسیمن (۹۴/۸ درصد) و برای مرزه خوزستانی، کارواکرول (۴۳/۳۸ درصد)، گاماترپینن (۸۹/۲۱ درصد)، پاراسیمن (۵۵/۱۶ درصد) و آلفاترپینن (۷۶/۵ درصد) تعیین شد. نتایج به دست آمده از کشت برون تنی قارچ در محیط‌های حاوی اسانس نشان داد که در هر سه اسانس با افزایش غلظت، شاخص خاصیت ضد قارچی نیز افزایش می‌یابد و اثر زمان در هر سه اسانس مشابه بوده و با گذشت زمان، این شاخص کاهش می-یابد. به‌علاوه، از نتایج بهینه‌یابی مشخص شد که اسانس دارچین و مرزه خوزستانی به ترتیب در غلظت ۶۳۳/۲۸۸ و μL.L-1 ۸۴۱/۵۹۰ و زمان ۶۰۷/۱۰۸ و h ۵۴۹/۲۳۸، بیش‌ترین و کم‌ترین خاصیت مهارکنندگی رشد قارچ P. expansum را دارند. علاوه بر این، نتایج این تحقیق نشان داد که روش سطح پاسخ می‌تواند به‌عنوان روشی مناسب و دقیق برای مدل‌سازی و بهینه‌یابی فعالیت ضد قارچی این اسانس‌ها به کار رود.
کلیدواژه‌ها
اسانس؛ بازدارندگی؛ بهینه‌یابی؛ روش سطح پاسخ؛ Penicillium expansum
عنوان مقاله [English]
Optimizing the antifungal effects of Cinnamomum zeylanicum, Zataria multiflora, and Satureja khuzestanica essential oils against the blue mold fungus (Penicillium expansum) using Response Surface Methodology
نویسندگان [English]
Mahsa Sadat Razavi1؛ Abdollah Golmohammadi2؛ Ali Nematollahzadeh3؛ Alireza Ghanbari4؛ Mahdi Davari5
1PhD student, Department of Biosystems Engineering, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
2Department of Biosystems Engineering, Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
33Associated Professor, Department of Chemical Engineering, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
4Associated Professor, Department of Horticultural Sciences, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
55Associated Professor, Department of Plant Protection, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil, Iran
چکیده [English]
Utilizing the essential oils (EOs) as natural antifungal agents and alternatives for chemical fungicides has increased the attentions. In this study, chemical components and antifungal activity of Cinnamomum zeylanicum (CEO), Zataria multiflora (ZEO), and Satureja khuzestanica (SEO) plants essential oil (EO) were identified to assess their effect in term of concentration and exposure time on control of Penicillium expansum and also, modeling and optimizing antifungal properties of these EOs via response surface methodology (RSM). The main components of three EOs detected by GC-MS analysis were as follows: Cinnamaldehyde (80.82%) for CEO, Thymol (32.68%), Carvacrol (30.57%), p-Cymene (8.94), and γ-Terpinene (5.96%) for ZEO and Carvacrol (38.43%), γ-Terpinene (21.89%), p-Cymene (16.55%), and α-Terpinene (5.76%) for SEO. Antifungal index (AI) in all EOs increased against the increment of concentration but the effect of time was vice versa; with passage of time, the AI decreased in all EOs. Moreover, based on the optimization results, it was determined that CEO and SEO at concentration of 288.633 and 590.841 μL.L-1 and time of 108.607 and 238.549 h had the highest and lowest inhibitory effect, respectively, on growth of Penicillium expansum. Furthermore, the results of this study showed that the response surface method can be applied to model and optimize the antifungal activity of these EOs as a suitable and accurate method.
کلیدواژه‌ها [English]
Essential oil, Inhibition, Optimization, Response Surface Methodology, Penicillium expansum
مراجع
  1. Abbott, W. S. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. J. econ. Entomol, 18(2), 265-267.
  2. Adams, R. P. (2007). Identification of essential oil components by gas chromatography/mass spectrometry (Vol. 456). (pp.54-788). Allured publishing corporation Carol Stream, IL.
  3. Alizadeh-Salteh, S., Arzani, K., Omidbeigi, R., & Safaie, N. (2010). Essential oils inhibit mycelial growth of Rhizopus stolonifer. European Journal of Horticultural Science, 75(6), 278-282.
  4. Arras, G., & Usai, M. (2001). Fungitoxic activity of 12 essential oils against four postharvest citrus pathogens: chemical analysis of Thymus capitatus oil and its effect in subatmospheric pressure conditions. Journal of Food Protection, 64(7), 1025-1029.
  5. Bagamboula, C., Uyttendaele, M., & Debevere, J. (2004). Inhibitory effect of thyme and basil essential oils, carvacrol, thymol, estragol, linalool and p-cymene towards Shigella sonnei and S. flexneri. Food microbiology, 21(1), 33-42.
  6. Behdani, M., Pooyan, M., & Abbasi, S. (2012). Evaluation of antifungal activity of some medicinal plants essential oils against Botrytis cinerea, causal agent of postharvest apple rot, in vitro. International Journal of Agriculture and Crop Sciences, 4(14), 1012-1016.
  7. Bertetti, D., Garibaldi, A., & Gullino, M. (2008). Resistance of Botrytis cinerea to fungicides in Italian vineyards. Communications in agricultural and applied biological sciences, 73(2), 273-282.
  8. Brooks, C., Cooley, J. S., & Fisher, D. (1920). Diseases of apples in storage. (pp. 15-16). US Department of Agriculture.
  9. Burt, S. (2004). Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods—a review. International journal of food microbiology, 94(3), 223-253.

10. Bus, V., Bongers, A., & Risse, L. (1991). Occurrence of Penicillium digitatum and P. italicum resistant to benomyl, thiabendazole and imazalil on citrus fruit from different geographic origins. Plant Disease, 75(11), 1098-1100.

11. Davari, M., & Ezazi, R. (2017). Chemical composition and antifungal activity of the essential oil of Zhumeria majdae, Heracleum persicum and Eucalyptus sp. against some important phytopathogenic fungi. Journal de mycologie medicale, 27(4), 463-468.

12. Ebadollahi, A., Taghinezhad, E., & Davari, M. (2018). Optimization of antifungal and insecticidal effects of garden thyme (Thymus vulgaris) essential oil through Response Surface Methodology. Journal of biological control of pests and plant diseases, 7(1), 9-19. (In Farsi)

13. Eren, İ., & Kaymak-Ertekin, F. (2007). Optimization of osmotic dehydration of potato using response surface methodology. Journal of Food Engineering, 79(1), 344-352.

14. Etemadi, N. A., Behdad, M., & Zeinali, H. (2012). Antifungal effects of three plant essential oils against Botrytis cinerea: the cause of gray mold on strawberry. Journal of Research in Agricultural Science, 8(2), 165-170.

15. Farzaneh, M., Kiani, H., Sharifi, R., Reisi, M., & Hadian, J. (2015). Chemical composition and antifungal effects of three species of Satureja (S. hortensis, S. spicigera, and S. khuzistanica) essential oils on the main pathogens of strawberry fruit. Postharvest biology and technology, 109, 145-151.

16. Fathi, Z., Hassani, A., Ghosta, Y., Abdollahi, A., & Meshkatalsadat, M. H. (2012). The potential of thyme, clove, cinnamon and ajowan essential oils in inhibiting the growth of Botrytis cinerea and Monilinia fructicola. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 15(1), 38-47.

17. Gandomi, H., Misaghi, A., Basti, A. A., Bokaei, S., Khosravi, A., Abbasifar, A., & Javan, A. J. (2009). Effect of Zataria multiflora Boiss. essential oil on growth and aflatoxin formation by Aspergillus flavus in culture media and cheese. Food and Chemical Toxicology, 47(10), 2397-2400.

18. Goepfert, J. (1980). Vegetables, fruits, nuts, and their products. Microbial ecology of foods, 2, 606-642.

19. Jalili Marandi, R., Hassani, A., Ghosta, Y., Abdollahi, A., Pirzad, A., & Sefidkon, F. (2011). Control of Penicillium expansum and Botrytis cinerea on pear with Thymus kotschyanus, Ocimum basilicum and Rosmarinus officinalis essential oils. Journal of Medicinal Plants Research, 5(4), 626-634.

20. Kashani Nezhad, M., & Kashani Nezhad, M. (2015). Design and analysis of tests in food industry using Design Expert 9. Publication of  Gorgan University of Agricultural and Natural Resources, Gorgan, Iran. 1st edition. ISBN: 9789648926873- 9648926875. (In Farsi).

21. Jiang, C., Shi, J., Liu, Y., & Zhu, C. (2014). Inhibition of Aspergillus carbonarius and fungal contamination in table grapes using Bacillus subtilis. Food Control, 35(1), 41-48.

22. Kordsardouei, H., Barzegar, M., & Sahari, M. A. (2013). Application of Zataria multiflora Boiss. and Cinnamon zeylanicum essential oils as two natural preservatives in cake. Avicenna Journal of Phytomedicine, 3(3), 238-255.

23. Laidou, I., Thanassoulopoulos, C., & Liakopoulou‐Kyriakides, M. (2001). Diffusion of patulin in the flesh of pears inoculated with four post‐harvest pathogens. Journal of Phytopathology, 149(7‐8), 457-461.

24. Mahmoudvand, H., Mahmoudvand, H., Oliaee, R. T., Kareshk, A. T., Mirbadie, S. R., & Aflatoonian, M. R. (2017). In vitro protoscolicidal effects of Cinnamomum zeylanicum essential oil and its toxicity in mice. Pharmacognosy magazine, 13(Suppl 3), S652.

25. Mohammadi, A., Hashemi, M., & Hosseini, S. (2015). The control of Botrytis fruit rot in strawberry using combined treatments of Chitosan with Zataria multiflora or Cinnamomum zeylanicum essential oil. Journal of Food Science and Technology, 52(11), 7441-7448.

26. Morales, H., Marín, S., Obea, L., Patiño, B., Doménech, M., Ramos, A. J., & Sanchis, V. (2008). Ecophysiological characterization of Penicillium expansum population in Lleida (Spain). International journal of food microbiology, 122(3), 243-252.

27. Nabavi-Pelesaraei, A., Rafiee, S., Mohtasebi, S. S., Hosseinzadeh-Bandbafha, H., & Chau, K.-w. (2018). Integration of artificial intelligence methods and life cycle assessment to predict energy output and environmental impacts of paddy production. Science of the Total Environment, 631, 1279-1294.

28. Naybandi Atashi, S., Mortazavi, S. A., Tabatabaei Yazdi, F., & Kouchaki, A. (2012). Investigation of synergystic effects of essential oils, Thymus volgaris, Mentha spp., and Ziziphora tenuir in inhibition of  Escherichia coli O157:H7 as in vitro assay using Response Surface Methodology (RSM). Innovation in Food Science and Technology. 6(4), 19-30. (In Farsi).

29. Nikkhah, M., Hashemi, M., Najafi, M. B. H., & Farhoosh, R. (2017). Synergistic effects of some essential oils against fungal spoilage on pear fruit. International journal of food microbiology, 257, 285-294.

30. Oguaghamba, O., & Onyia, M. (2019). Modified and generalized full cubic polynomial response surface methodology in engineering mixture design. Nigerian Journal of Technology, 38(1), 52-59.

31. Pirbalouti, A. G., & Moalem, E. (2013). Variation in antibacterial activity of different ecotypes of Satureja khuzestanica Jamzad, as an Iranian endemic plant. Indian Journal of Traditional Knowledge, 12(4), 623-629.

32. Rasool, M., Malik, A., Alam, M. Z., Afzal, M., Alam, R., Arsalan, H. M., . . . Haque, A. (2018). Optimization of antibacterial activity of ethanolic extracts of Eucalyptus tereticornis and Nigella sativa: Response surface Methodology. Pakistan journal of pharmaceutical sciences, 31(4), 623-629.

33. Razavi, M. S., Asghari, A.,  Azadbakht, M., & Shamsabadi, H. (2018). Analyzing the pear bruised volume after static loading by Magnetic Resonance Imaging (MRI). Scientia Horticulturae. 229. 33-39. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2017.10.01.

34. Saei-Dehkordi, S. S., Tajik, H., Moradi, M., & Khalighi-Sigaroodi, F. (2010). Chemical composition of essential oils in Zataria multiflora Boiss. from different parts of Iran and their radical scavenging and antimicrobial activity. Food and Chemical Toxicology, 48(6), 1562-1567.

35. Safari, N., Hemmati, R., Farzane, M., & Chegini, S. (2014). Study on three essential oils from Mentha piperita, Thymus daenensis and Satureja khuzistanica for controlling Penicillium expansum against of Apple Blue Mould. Applied Researches in Plant Protection, 3(1), 19-33. (In Farsi)

36. Spadaro, D., & Gullino, M. L. (2004). State of the art and future prospects of the biological control of postharvest fruit diseases. International journal of food microbiology, 91(2), 185-194.

37. Tajkarimi, M., Ibrahim, S. A., & Cliver, D. (2010). Antimicrobial herb and spice compounds in food. Food Control, 21(9), 1199-1218.

38. Valero, M., & Salmeron, M. (2003). Antibacterial activity of 11 essential oils against Bacillus cereus in tyndallized carrot broth. International journal of food microbiology, 85(1-2), 73-81.

39. Wisniewski, M. E., & Wilson, C. L. (1992). Biological control of postharvest diseases of fruits and vegetables: recent advances. HortScience, 27(2), 94-98.

40. Xing, Y., Li, X., Xu, Q., Yun, J., & Lu, Y. (2010). Antifungal activities of cinnamon oil against Rhizopus nigricans, Aspergillus flavus and Penicillium expansum in vitro and in vivo fruit test. International journal of food science & technology, 45(9), 1837-1842.

41. Yousefzadi, M., Riahi-Madvar, A., Hadian, J., Rezaee, F., Rafiee, R., & Biniaz, M. (2014). Toxicity of essential oil of Satureja khuzistanica: In vitro cytotoxicity and anti-microbial activity. Journal of immunotoxicology, 11(1), 50-55.

42. Zomorodian, K., Ghadiri, P., Saharkhiz, M. J., Moein, M. R., Mehriar, P., Bahrani, F., . . . Fani, M. M. (2015). Antimicrobial activity of seven essential oils from Iranian aromatic plants against common causes of oral infections. Jundishapur journal of microbiology, 8(2), 1-6.

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 391
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 244


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب