تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,502 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,116,539 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,221,136 |
بررسی واکنش های بیوشیمیایی و فعالیت آنزیمهای آنتی اکسیدانی گیاه کینوا تحت تنش کمآبیاری و تیمارهای کودی در خاک شور | ||
به زراعی کشاورزی | ||
مقاله 10، دوره 22، شماره 4، دی 1399، صفحه 629-644 اصل مقاله (1.2 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jci.2020.293317.2305 | ||
نویسندگان | ||
مهدی امیریوسفی1؛ محمود رضا تدین* 2؛ رحیم ابراهیمی3 | ||
1دانشجوی دکتری، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
2استاد، گروه زراعت، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
3استاد، گروه مهندسی مکانیک بیوسیستم، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران. | ||
چکیده | ||
این آزمایش بهصورت اسپلیت فاکتوریل در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با سه تکرار در سال زراعی 1397-1398 در مزرعهای شور (هدایت الکتریکی 2/5 دسیزیمنس بر متر)، واقع در منطقه دستگرد اصفهان انجام شد. چهار سطح آبیاری (100، 75، 50 و 25 درصد ظرفیت مزرعه) بهعنوان عامل اصلی و چهار سطح کود زیستی (شاهد، نیتروکسین، بیوفسفر و تلفیق نیتروکسین و بیوفسفر) و دو سطح کود شیمیایی (عدم کاربرد و کاربرد تلفیقی کودهای شیمیایی نیتروژن و فسفر) بهعنوان عوامل فرعی مورد مطالعه قرار گرفتند. تنش شدید خشکی 25 درصد ظرفیت مزرعه فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان کاتالاز، پراکسیداز و سوپر اکسید دیسموتاز، میزان پرولین و میزان مالوندیآلدئید در کینوا را بهترتیب حدود 46، 52، 142، 42 و 39 درصد نسبت به شرایط بدون تنش آبیاری 100 درصد ظرفیت مزرعه افزایش داد و در نتیجه موجب کاهش معنیدار عملکرد دانه و عملکرد بیولوژیک (بهترتیب حدود 76 و 49 درصد) در این گیاه گردید. با این وجود در تمامی سطوح تنش خشکی، تیمار تلفیق نیتروکسین و بیوفسفر در شرایط کاربرد همزمان کودهای شیمیایی نیتروژن و فسفر بیشترین تأثیر را بر تعدیل اثرات تنش خشکی، کاهش معنیدار فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان و در نتیجه افزایش عملکرد در مقایسه با سایر تیمارهای کودی در همان سطح خشکی داشت. نتایج در مجموع نشان داد که گیاه کینوا با وجود شوری خاک محل آزمایش، توانست حتی در شرایط تنش شدید خشکی، دوره رشد خود را کامل کند و بذر تولید نماید. | ||
کلیدواژهها | ||
تنش اسمزی؛ فسفر؛ کاتالاز؛ کینوا؛ نیتروژن | ||
مراجع | ||
Adolf, V. I., Jacobsen, S.E., & Shabala, S. (2013). Salt tolerance mechanisms in quinoa(Chenopodium quinoa Willd.). Environmental and Experimental Botany, 92, 43–54DOI:/10.1016/j.envexpbot.2012.07.004. Aebi, H.E. (1984). Catalase in vitro. Methods Enzymology, 105, 121-126. Agarwal, S., & Pandey, V. (2004). Antioxidant enzyme responses to NaCl stress in Cassia angustifolia. Biologia Plantarum, 48(4), 555-560. Alizadeh, A. (2008). Soil, Water and Plant relationship. Emam Reza University of Mashhad. pp.484. (In Persian). Al-Naggar, A. M. M., Abd El-Salam, R. M., Badran, A. E. E., & El-Moghazi, M. A. (2017). Drought tolerance of five Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) genotypes and its association with other traits under moderate and severe drought stress. Asian Journal of Advances in Agricultural Research, 3(3), 2456-2468. DOI:10.9734/AJAAR/2017/37216. Aman, R., Ebtihal, A. E., & Mervat, S. (2019). Comparative study for the effect of arginine and sodium nitroprusside on sunflower plants grown under salinity stress conditions. Bulletin of the National Research Centre, 43(118), 1-12. DOI:10.1186/s42269-019-0156-0. Basra, S. M. A., Iqbal, S., & Afzal, I. (2014). Evaluating the response of nitrogen application on growth, development and yield of quinoa genotypes. International Journal of Agriculture and Biology, 16, 886-892. Bates, L. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant Soil. 39, 205-207. DOI: 10.1007/BF00018060. Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantites of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Annals of Biochemistry, 72, 248-254. DOI: 10.1006/abio.1976.9999. Cocozza, C., Pulvento, C., Lavini, A., Riccardi, M., d’Andria, R., & Tognetti, R. (2012). Effects of increasing salinity stress and decreasing water availability on ecophysiological traits of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) grown in a Mediterranean-type agroecosystem. Journal of Agronomy and Crop Science, 199(4), 229–240. Das, K., & Roychoudhury, A. (2014) Reactive oxygen species (ROS) and response of antioxidants as ROS-scavengers during environmental stress in plants. Frontiers in Environmental Science, 2, 53-66. DOI:10.3389/fenvs.2014.00053. Dhindsa, R. S., & Motowe, W. (1981). Drought tolerance in two mosses: correlation with enzymatic defense against lipid peroxidation. Journal of Experimental Botany, 32, 79-91. DOI:10.1093/jxb/32.1.79. Enebe, M.C., & Babalola, O.O. (2018). The influence of plant growth-promoting rhizobacteria in plant tolerance to abiotic stress: a survival strategy. Applied Microbiology and Biotechnolog, 102(18), 7821-7835. DOI:10.1007/s00253-018-9214-z. Fawy, H.A., Moharam, F., Hagab, A., & Hagab, R. (2017). Effect of nitrogen fertilization and organic acids on grains productivity and biochemical contents of quinoa plant grown under soil conditions of Ras Sadersina. Egyptian Journal of Desert Research, 67(1), 169-183. DOI:10.21608/ejdr.2017.5851. Gamez, A.L., Soba, D., Zamarreno, A.M., Garcia-Mina, J.M., Aranjuelo, I., & Morales, F. (2019). Effect of water stress during grain filling on yield, quality and physiological traits of Illpa and Rainbow Quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) cultivars. Plants, 8(6), 173-188. DOI: 10.3390/plants8060173. Garcia, M., Condori, B., & Castillo, C.D. (2015). Agroecological and agronomic cultural practices of Quinoa in South America. Quinoa: Improvement and Sustainable Production, 25-46. DOI: 10.1002/9781118628041.ch3. Gomaa E. F. (2013). Effect of nitrogen, phosphorus and bio fertilizers on quinoa plant. Journal of Applied Sciences Research, 9(8), 5210- 5222. Gonzalez, J., Gallardo, M., Hillar, M., Rosa, M., & Prado, F. (2009). Physiological responses of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) to drought and waterlogging stresses: dry matter partitioning. Botanical Studies, 50, 35-42. Heshmati, S., Amini Dehaghi, M., & Fathi Amirkhiz, K. (2016). Effect of chemical and biological phosphorus on antioxidant enzymes activity and some biochemical traits of spring Safflower (Carthamus tinctorius L.) under water deficit stress conditions. Journal of Crop Production and Processing, 6(19), 203-214. DOI: 10.18869/acadpub.jcpp.6.19.203. Hinojosa, L., Gonzalez, J., Barrios-Masias, F., Fuentes, F., & Murphy, K. (2018). Quinoa abiotic stress responses: A review. Plants, 7(4), 106-138.DOI: 10.3390/plants7040106. Hoseini, Y., Ramezani Moghaddam, J., Nikpour, M.R., & Abdoli, A. (2018). Evaluating water uptake functions under simultaneous salinity and water stress conditions in Solanum lycopersicum. Journal of Water Research in Agriculture, 32(2), 247-265. (In Persian). Kaoutar, F., Abdelaziz, H., Ouafae, B., Redouane, C.-A., & Ragab, R. (2017). Yield and dry matter simulation using the saltmed model for five Quinoa (Chenopodium quinoa) accessions under deficit irrigation in South Morocco. Irrigation and Drainage, 66(3), 340-350. DOI: 10.1002/ird.2116. Muscolo, A., Panuccio, M. R., Gioffrè, A.M., & Jacobsen, S.-E. (2016). Drought and salinity differently affect growth and secondary metabolites of “Chenopodium quinoa Willd” seedlings. Halophytes for Food Security in Dry Lands, 259-275. DOI: 10.1016/B978-0-12-801854-5.00016-9. Nasir Khan, M. Mobin, M., & Zahid, A. (2018). Fertilizers and their contaminants in soils, surface and groundwater. Reference Module in Earth Systems and Environmental Sciences, 225-240. Prager, A., Munz, S., Nkebiwe, P., Mast, B., & Graeff-Honninger, S. (2018). Yield and quality characteristics of different quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) cultivars grown under field conditions in Southwestern Germany. Agronomy, 8, 197-216. DOI: 10.3390/agronomy8100197. Pulvento, C., Riccardi, M., Lavini, A., Iafelice, G., Marconi, E., & d’Andria, R. (2012). Yield and quality characteristics of Quinoa grown in open field under different saline and non-saline irrigation regimes. Journal of Agronomy and Crop Science, 198(4), 254-263. DOI: 10.1111/j.1439-037X.2012.00509.x. Sabbagh, S. K., Poorabdollah, A., Sirousmehr, A., & Gholamalizadeh-Ahangar, A. (2017). Bio-fertilizers and systemic acquired resistance in Fusarium infected wheat. Journal of Agricultural Science and Technology, 19, 453-464. Sadak, M.S., El-Bassiouny, H.M.S., & Dawood, M.G. (2019). Role of trehalose on antioxidant defense system and some osmolytes of quinoa plants under water deficit. Bulletin of the National Research Centre, 43(5), 1-11. DOI: 10.1186/s42269-018-0039-9. Sanchez-Rodriguez, E., Rubio-Wilhelmi, M., Cervilla, L.M., Blasco, B., Rios, J.J., Rosales, M.A., Romero, L., & Ruiz, J.M. (2010). Genotypic differences in some physiological parameters symptomatic for oxidative stress under moderate drought in tomato plants. Plant Science, 178, 30-40. doi:10.1016/j.plantsci.2009.10.001. Stamenkovic, C., Beskoski, V., Karabegovic, I., Lazic, M., & Nikolic, N. (2018). Microbial fertilizers: A comprehensive review of current findings and future perspectives. Spanish Journal of Agricultural Research, 16(1), 210-228. DOI: 10.5424/sjar/2018161-12117. Telahigue, D., Yahia, L.B., Aljane, F., Belhouchett, K., & Toumi, L. (2017). Grain yield, biomass productivity and water use efficiency in quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) under drought stress. Journal of Scientific Agriculture, 1, 222- 232. DOI: 10.25081/jsa.2017.v1.67. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 623 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 439 |