سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,504
تعداد مشاهده مقاله124,123,156
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,231,205
بگشلوی افشار, بهناز, راه چمنی, رضا, محمدی سنگ چشمه, عبدالله, سیدجعفری, احسان, مصطفی لو, یوسف. (1397). مطالعه اثر داربست پلی-ال-لاکتیک-‌‌اسید در تمایز استخوانی سلول‌های بنیادی مزانشیمی جدا شده از بافت چربی اسب. , 20(2), 339-349. doi: 10.22059/jap.2018.213538.623084
بهناز بگشلوی افشار; رضا راه چمنی; عبدالله محمدی سنگ چشمه; احسان سیدجعفری; یوسف مصطفی لو. "مطالعه اثر داربست پلی-ال-لاکتیک-‌‌اسید در تمایز استخوانی سلول‌های بنیادی مزانشیمی جدا شده از بافت چربی اسب". , 20, 2, 1397, 339-349. doi: 10.22059/jap.2018.213538.623084
بگشلوی افشار, بهناز, راه چمنی, رضا, محمدی سنگ چشمه, عبدالله, سیدجعفری, احسان, مصطفی لو, یوسف. (1397). 'مطالعه اثر داربست پلی-ال-لاکتیک-‌‌اسید در تمایز استخوانی سلول‌های بنیادی مزانشیمی جدا شده از بافت چربی اسب', , 20(2), pp. 339-349. doi: 10.22059/jap.2018.213538.623084
بگشلوی افشار, بهناز, راه چمنی, رضا, محمدی سنگ چشمه, عبدالله, سیدجعفری, احسان, مصطفی لو, یوسف. مطالعه اثر داربست پلی-ال-لاکتیک-‌‌اسید در تمایز استخوانی سلول‌های بنیادی مزانشیمی جدا شده از بافت چربی اسب. , 1397; 20(2): 339-349. doi: 10.22059/jap.2018.213538.623084

مطالعه اثر داربست پلی-ال-لاکتیک-‌‌اسید در تمایز استخوانی سلول‌های بنیادی مزانشیمی جدا شده از بافت چربی اسب

تولیدات دامی
مقاله 12، دوره 20، شماره 2، مرداد 1397، صفحه 339-349    اصل مقاله (3.43 M)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jap.2018.213538.623084
نویسندگان
بهناز بگشلوی افشار* 1؛ رضا راه چمنی1؛ عبدالله محمدی سنگ چشمه2؛ احسان سیدجعفری3؛ یوسف مصطفی لو1
1گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس،گنبد کاووس، گلستان، ایران
2گروه علوم دام و طیور، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، ورامین، ایران
3گروه زیست فناوری، پردیس علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
چکیده
هدف از این مطالعه بررسی امکان جداسازی سلول‌های بنیادی مزانشیمی از بافت چربی اسب و مطالعه بازده تمایز استخوانی این سلول‌ها در شرایط کشت تک بعدی (در ظرف کشت بافت پلاستیکی) و سه بعدی (روی داربست های پلی-ال-لاکتیک-اسید) بود. بافت چربی به روش بیوپسی از ناحیه قاعده دم اسب تهیه  و سلول‌های بنیادی مزانشیمی با کمک هضم مکانیکی و آنزیمی از بافت چربی جدا شد. سلول‌ها بنیادی جداشده، در دو شرایط جداگانه شامل شرایط ظرف کشت بافت پلاستیکی (گروه شاهد) و شرایط داربست پلی-ال-لاکتیک-اسید با سه تکرار، به رده استخوان تمایز داده شدند. در طول 21 روز تمایز آزمون‌های آلیزارین رد، اندازه‌گیری آنزیم آلکالین‏فسفاتاز و اندازه‌گیری میزان کلسیم رسوبی برای ارزیابی راندمان هر یک از این شرایط در تمایز سلول‌ها به رده استخوان مورد استفاده قرار‌گرفت. دادهای حاصل در قالب طرح کاملاً تصادفی تجزیه شدند. رنگ‌آمیزی آلیزارین رد به‌عنوان یک آزمون کیفی نشان داد در هر دو شرایط سلول‏های بنیادی مزانشیمی مشتق‌شده از بافت چربی اسب می‌توانند به رده استخوان تمایز یابند. با این حال سلول‌های بنیادی مزانشیمی کشت داده شده روی داربست پلی-ال-لاکتیک-اسید در مقایسه با سلول‌های کشت داده شده در شرایط ظرف کشت بافت پلاستیکی دارای فعالیت آنزیم آلکالین‏فسفاتاز و مقدار کلسیم رسوبی بیشتری بودند. یافته‌های این مطالعه نشان داد استفاده از داربست‌های پلی-ال-لاکتیک-اسید امکان رشد و تمایز بهینه سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق‌شده از بافت چربی اسب را به رده استخوانی فراهم می‌سازد.
کلیدواژه‌ها
بافت چربی؛ پلی-ال-لاکتیک-اسید؛ تمایز استخوانی؛ داربست؛ سلول‏های بنیادی مزانشیمی
مراجع

1.     Afizah H, Yang Z, Hui JH, Ouyang HW and Lee E (2007) A comparison between the chondrogenic potential of human bone marrow stem cells (BMSCs) and adipose-derived stem cells (ADSCs) taken from the same donors. Tissue Engineering. 13(4): 659-6.

2.     Álvarez-Viejo M, Menéndez-Menéndez Y and Otero-Hernández J (2015) CD271 as a marker to identify mesenchymal stem cells from diverse sources before culture. World journal of Stem Cells. 7(2): 470.

3.     Avril P, Le Nail L R, Brennan M A, Rosset P, De Pinieux G, Layrolle P, Heymann D, Perrot P and Trichet V (2016)  Mesenchymal stem cells increase proliferation but do not change quiescent state of osteosarcoma cells: Potential implications according to the tumor resection status. J Bone Oncol. 5(1): 5-14.

4.     Burgos-Silva M, Semedo-Kuriki P, Donizetti-Oliveira C, Costa PB, Cenedeze MA, Hiyane MI, Pacheco-Silva A and Camara NO (2015) Adipose Tissue-Derived Stem Cells Reduce Acute and Chronic Kidney Damage in Mice. PLoS One. 10(11): 142-183.

5.     Busser H, Najar M, Raicevic G, Pieters K, Velez Pombo R, Philippart P, Meuleman N, Bron D and Lagneaux L (2015) Isolation and characterization of human mesenchymal stromal cell subpopulations: comparison of bone marrow and adipose tissue. Stem cells and Development. 24(18): 2142-2157.

6.     Chi K, Fu RH, Huang YC, Chen SY, Lin SZ, Huang PC, Lin PC, Chang FK and Liu SP (2016) Therapeutic Effect of Ligustilide-Stimulated Adipose-Derived Stem Cells in a Mouse Thromboembolic Stroke Model. Cell Transplant. 25(5): 899-912.

7.     Dominici M, Le Blanc K, Mueller I, Slaper-Cortenbach I, Marini F, Krause D, Deans R, Keating A, Prockop D and Horwitz E (2006) Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 8(4): 315-317.

8.     Dvorak MM, Siddiqua A, Ward DT, Carter DH, Dallas SL, Nemeth EF and Riccardi D (2004) Physiological changes in extracellular calcium concentration directly control osteoblast function in the absence of calciotropic hormones. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101(14): 5140-5145.

9.     Fraser JK, Zhu M, Wulur I and Alfonso Z (2008) Adipose-derived stem cells. Mesenchymal Stem Cells: Methods and Protocols. 59-67.

10.   Friedenstein A, Piatetzky-Shapiro I and Petrakova K (1966) Osteogenesis in transplants of bone marrow cells. Development. 16(3): 381-390.

11.   Frölich K, Scherzed A, Mlynski R, Technau A, Hagen R, Kleinsasser N and Radeloff A (2011). Multipotent stromal cells for autologous cell therapy approaches in the guinea pig model. ORL. 73(1): 9-16.

12.   Guest DJ, Smith MRW and Allen WR (2008) Monitoring the fate of autologous and allogeneic mesenchymal progenitor cells injected into the superficial digital flexor tendon of horses: Preliminary study. Equine Veterinary Journal. 40(2): 178-181.

13.   Kim EH and Heo CY (2014) Current applications of adipose-derived stem cells and their future perspectives. World Journal Stem Cells. 6(1): 65-68.

14.   Kim JH, Choi SC, Park CY, Park JH, Choi JH, Joo HJ, Hong SJ and Lim DS (2016) Transplantation of Immortalized CD34+ and CD34- Adipose-Derived Stem Cells Improve Cardiac Function and Mitigate Systemic Pro-Inflammatory Responses. PLoS One. 11(2): 147-153.

15.   Koch TG, Heerkens T, Thomsen PD and Betts DH (2007) Isolation of mesenchymal stem cells from equine umbilical cord blood. BMC Biotechnology. 7(1): 26.

16.   Koerner J, Nesic D, Romero JD, Brehm W, Mainil‐Varlet P and Grogan SP (2006) Equine peripheral blood‐derived progenitors in comparison to bone marrow‐derived mesenchymal stem cells. Stem Cells. 24(6): 1613-1619.

 17.   Lettry V, Hosoya K, Takagi S and Okumura M (2010) Coculture of equine mesenchymal stem cells and mature equine articular chondrocytes results in improved chondrogenic differentiation of the stem cells. Japanese Journal of Veterinary Research. 58(1): 5-15.

18.   Lim J-H, Boozer L, Mariani CL, Piedrahita JA and Olby NJ (2010) Generation and characterization of neurospheres from canine adipose tissue-derived stromal cells. Cellular Reprogramming (Formerly Cloning and Stem Cells). 12(4): 417-425.

19.   Marino G, Rosso F, Cafiero G, Tortora C, Moraci M, Barbarisi M and Barbarisi A (2010) β-Tricalcium phosphate 3D scaffold promote alone osteogenic differentiation of human adipose stem cells: in vitro study. Journal of Materials Science: Materials in Medicine. 21(1): 353-363.

20.   Mohammadi-Sangcheshmeh A, Shafiee A, Seyedjafari E, Dinarvand P, Toghdory A, Bagherizadeh I, Schellander K, Cinar MU and Soleimani M (2013) Isolation, characterization, and mesodermic differentiation of stem cells from adipose tissue of camel (Camelus dromedarius) In Vitro Cellular & Developmental Biology-Animal. 49(2): 147-154.

21.   Nathan S, De SD, Thambyah A, Fen C, Goh J and Lee EH (2003) Cell-based therapy in the repair of osteochondral defects: a novel use for adipose tissue. Tissue Engineering. 9(4): 733-744.

22.   Neupane M, Chang C-C, Kiupel M and Yuzbasiyan-Gurkan V (2008) Isolation and characterization of canine adipose-derived mesenchymal stem cells. Tissue Engineering Part A. 14(6): 1007-1015.

23.   Vidal MA, Kilroy GE, Lopez MJ, Johnson JR, Moore RM and Gimble JM (2007) Characterization of Equine Adipose Tissue-Derived Stromal Cells: Adipogenic and Osteogenic Capacity and Comparison with Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stromal Cells. Veterinary Surgery. 36(7): 613-622.

24.     Xu Y, Liu L, Li Y, Zhou C, Xiong F  Liu Z, Gu R, Hou X and Zhang C (2008) Myelin-forming ability of Schwann cell-like cells induced from rat adipose-derived stem cells in vitro. Brain Research. 1239: 49-55.

25.     Yoon E, Dhar S, Chun DE, Gharibjanian NA and Evans GR (2007) In vivo osteogenic potential of human adipose-derived stem cells/poly lactide-co-glycolic acid constructs for bone regeneration in a rat critical-sized calvarial defect model. Tissue Engineering. 13(3): 619-627.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 633
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 430


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب