تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,110,590 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,214,243 |
استفاده از میکروسکوپ نوری اپی فلورسانس (EFLM) برای ارزیابی فعالیت مخمر نانوایی (ساکارومایسس سرویسیا) و مقایسه آن با روشهای متداول | ||
مهندسی بیوسیستم ایران | ||
مقاله 9، دوره 48، شماره 4، دی 1396، صفحه 467-474 اصل مقاله (897.33 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijbse.2017.63812 | ||
نویسندگان | ||
سیدهادی پیغمبردوست* 1؛ زهرا کسائی2؛ محمدرضا دادپور3؛ میر حسن موسوی4؛ عارف اولادغفاری5 | ||
1استاد تکنولوژی مواد غذایی، گروه مهندسی علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
2دانش آموخته کارشناسی ارشد، گروه مهندسی علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
3دانشیار ارگانوژنز و مورفوژنز گیاهی، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
4دانشیار گروه بهداشت مواد غذایی و آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز | ||
5عضو هیأت علمی پژوهشگاه ملی استاندارد، مؤسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران، کرج | ||
چکیده | ||
در این مطالعه از میکروسکوپ نوری اپی فلورسانس (EFLM) برای مشاهده زندهمانی مخمر نانوایی و ارزیابی فعالیت آن استفاده شد. فعالیت تخمیری سه نوع مخمر تجارتی (A-C) با روش EFLM و آزمونهای گازوگرافی، میکروبی و پخت نان مورد ارزیابی و مقایسه قرار گرفت. رنگ آمیزی مزدوج و همزمان سوسپانسیونهای مخمری در روش EFLM، سلولهای زنده را با رنگ سبز و سلولهای مرده را با رنگ قرمز مشخص کرد. مخمر A با بیشترین تعداد سلول سبز رنگ (178 سلول شمارش شده در تصویر میکروسکپی) در رتبه نخست و مخمر C با کمترین تعداد (١٠٢ سلول شمارش شده) در رتبه آخر زندهمانی قرار گرفت. در آزمون میکروبی تعداد واحدهای تشکیل دهنده کلنی در مخمر A بیشترین (cfu/mg١٠١٠×١٥) و در مخمر C کمترین (cfu/mg١٠١٠×١٢) بود. در روش گازوگرافی مخمر A بیشترین (ml CO2/3h ١٦٣) و مخمر C کمترین (ml CO2/3h ١40) مقدار گاز را تولید کرد. در آزمون پخت، مخمر A بیشترین حجم (cm3 ١٣٢) و مخمر C کمترین حجم (cm3 ١٠٨) نان را نشان داد. نتایج نشان دادند که ارتباط مثبتی بین تعداد مخمرهای سبز مشاهده شده در آزمون EFLM، مخمرهای زنده در آزمون میکروبی، مقدار گاز تولید شده در آزمون گازوگرافی و بالاخره حجم نان وجود دارد. | ||
کلیدواژهها | ||
مخمر نانوائی؛ زنده مانی؛ قدرت تولید گاز؛ میکروسکوپ نوری اپی فلوروسانس | ||
مراجع | ||
Autio K., Mattila D. & Sandholm T. (1992). Detection of active yeast cells (Saccharomyces cerevisiae) in frozen dough sections. Applied and Environmental Microbiology, 58: 2153-2157. Bellidi G., Martin G., Harry D. & John H. (2008). Use of a pressuremeter to measure the kinetics of carbon dioxide evolution in chemically leavened wheat flour dough. Journal of Agriculture and Food Chemistry, 56: 9855–9986 Borzani W. (2004). Measurement of the gassing power of bakers' yeast: correlation between the dough volume and the incubation time. Brazilian Archives of Biology and Technology, 47(2):213-217. Paredeslopez O., Bushuk W. 1982. Development and undevelopment of wheat dough by mixing - microscopic structure and its relations to bread-making quality. Cereal Chemistry, 60: 24-27. Dobbes M., Peleg, R.E. & Mudgett B. (1982). Some physical characteristics of active dry yeast. Powder Technology, 32: 63 – 69. Duns F. (1988). Multi fermentation screening system (MFSS): computerized simultaneous evaluation of carbon dioxide production in twenty-four yeasted broths or doughs. Journal of Microbiological Methods, 8:303-314. Golabi, M., Nahvi, I., Tavasoli, M., Mobini Dehkordi, M. 2010. Assessment of stress resistance of industrial strains of Saccharomyces cerevisiae for designing selection media. Iranian Journal of Nutrition Sciences and Food Technology. 4, 1-8. Guillermo G., Bellido A., Martin G., Scanlon A. & John H. (2009). Measurement of dough specific volume in chemically leavened dough systems. Journal of Cereal Science, 49: 212–218. Grula M., Watson M. & Pohl H.A. (1985). Relationship between dough-raising activity of baker's yeast and the fraction of 'vital' cells as determined by methylene blue staining or by dielectrophoresis. Journal of Biological Physics, 13(1):29-32. Kasaie Z., Peighambardoust S.H., Dadpour M.R., Moosavy M.H. & Shakuoie Bonab E. (2013). Comparing different methods for evaluating gassing power and fermentation activity of baker's yeast. Journal of Food Research, 22(4):431-442 (In Farsi). Peighambardoust S.H., Fallah E., Hamer R.J.& van der Goot A.J. (2010a). Aeration of bread dough influenced by different way of processing. Journal of Cereal Science, 51: 89–95. Peighambardoust S.H., Dadpour M.R. & Dokouhaki M. (2010b). Application of epifluorescence light microscopy (EFLM) to study the microstructure of wheat dough: a comparison with confocal scanning laser microscopy (CSLM) technique. Journal of Cereal Science, 51:21-27. Ranalli G., Iorizzo M., Lustrato G. Zanardini E. and Grazia L. 2002. Effects of low electric treatment on yeast microflora. Journal of Applied Microbiology, 93: 877–883. Rubenthaler G.L., Finney P.L., Demaray D.E. & Finney K.F. (1980). Gasograph, design, construction, and reproducibility of a sensitive 12-channel gas recording instrument. Cereal Chemistry, 57: 212-216. Thorn. K. (2016). A quick guide to light microscopy in cell biology. Molecular Biology of the Cell. 27(2): 219–222. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 620 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,360 |