تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,501 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,100,879 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,207,761 |
بهبود کیفیت منی قوچ بعد از فرآیند انجماد - یخگشایی با استفاده از سطوح مختلف کوآنزیم Q10 | ||
تولیدات دامی | ||
مقاله 16، دوره 19، شماره 3، آبان 1396، صفحه 727-738 اصل مقاله (938.77 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jap.2017.217495.623114 | ||
نویسندگان | ||
حسین دقیق کیا* 1؛ زهرا بلوکی2 | ||
1گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه تبریز | ||
2گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز | ||
چکیده | ||
هدف این مطالعه بررسی تأثیر آنتیاکسیدانی کوآنزیم Q10 بر کیفیت منی قوچ بعد از فرآیند انجماد-یخگشایی بود. از 5 قوچ قزل دوبار در هفته و در 5 تکرار اسپرمگیری شد. این آزمایش شامل 5 تیمار، کوآنزیم کیوتن در چهار سطح (5/0، 1، 2 و 5/2 میکرومولار) و گروه شاهد (بدون آنتی اکسیدان) بود. قبل از رقیقسازی اسپرمها از نظر حجم، تحرک و میزان اسپرم غیرطبیعی مورد ارزیابی اولیه قرار گرفتند. نمونه های منی در رقیق کننده بر پایه تریس- لسیتین رقیق شده، در مدت دو ساعت و در دمای C°4 سردسازی شده و بعد در پایوتها کشیده و منجمد شدند. پارامترهای جنبایی، زندهمانی، یکپارچگی غشاء، اسپرمهای غیرطبیعی، میزان مالون دی آلدهید، ظرفیت تام آنتیاکسیدانی، فعالیت آنزیمهای گلوتاتیون پراکسیداز و سوپراکسید دیسموتاز بعد از یخگشایی اندازهگیری شدند. نتایج آنالیز بیانگر افزایش جنبایی کل در نمونههای با 5/0 و 1 میکرومولار از آنتیاکسیدان کوآنزیم Q10 نسبت به گروه شاهد بود (05/0>P). نمونههای با 5/0 مولار کوآنزیم Q10 کمترین درصد اسپرمهای غیرطبیعی و سطح پراکسیداسیون چربی را نسبت به گروه شاهد داشت (05/0>P). زندهمانی، یکپارچگی غشاء پلاسمائی و تحرک کل در تمامی گروهها از گروه شاهد بهتر بود (05/0>P). پارامترهای VCL، VSL و VAP در گروههای دریافت کننده 5/0، 1 و 2 میکرومولار کوآنزیم Q10 در مقایسه با گروههای دیگر بهبود یافت (05/0>P). گروه دریافتکننده 5/2 میکرومولار از کوآنزیم Q10 نسبت به سایر سطوح، تأثیر بهتری بر فعالیت سوپراکسید دیسموتاز، داشت. یافتههای این بررسی نشان داد افزودن 5/0 و 1 میکرومولار کوآنزیم Q10 باعث بهبود برخی فراسنجههای اسپرم بعد از فرآیند انجماد-یخگشایی شد. | ||
کلیدواژهها | ||
آنالیز اسپرم؛ حفاظت انجمادی؛ قوچ قزل؛ کوآنزیم Q10؛ لسیتین | ||
مراجع | ||
1. Aitken RJ, Jones KT, Robertson SA (2012) Reactive oxygen species and sperm function--in sickness and in healthl. Journal of andrology. 33(6): 1096-1106. 2. Aitken RJ, Baker MA (2006) Oxidative stress, sperm survival and fertility controll. Molecular and cellular endocrinology. 250(1-2): 66-69. 3. Arora A, Byrem TM, Nair MG, Strasburg GM (2000) Modulation of liposomal membrane fluidity by flavonoids and isoflavonoidsl. Archives of Biochemistry and Biophysics. 373(1): 102-109. 4. Bentinger M, Tekle M, Dallner G (2010) Coenzyme Q–biosynthesis and functionsl. Biochemical and biophysical research communications. 396(1): 74-79. 5. Bilodeau JF, Chatterjee S, Sirard MA, Gagnon C (2000) Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawingl. Molecular reproduction and development. 55(3): 282-288. 6. Bucak MN, Ateşşahin A, Yüce A (2008) Effect of anti-oxidants and oxidative stress parameters on ram semen after the freeze–thawing processl. Small Ruminant Research. 75(2): 128-134. 7. Daghigh Kia H, Farhadi R, Ashrafi I, Mehdipour M (2016) Anti‐oxidative effects of ethanol extract of Origanum vulgare on kinetics, microscopic and oxidative parameters of cryopreserved holstein bull spermatozoal. Iranian Journal of Applied Animal Science. 6(4): 901-907. 8. Ernster L (1993) Lipid peroxidation in biological membranes: mechanisms and implicationsl. Active Oxygens, Lipid Peroxides, and Antioxidants. CRC Press, Boca Raton. 107. 9. Fattah A, Sharafi M, Masoudi R, Shahverdi A, Esmaeili V, Najafi A (2017) l-Carnitine in rooster semen cryopreservation: Flow cytometric, biochemical and motion findings for frozen-thawed sperml. Cryobiology. 74: 148-153. 10. Gualtieri R, Barbato V, Fiorentino I, Braun S, Rizos D, Longobardi S, Talevi R (2014) Treatment with zinc, d-aspartate, and coenzyme Q10 protects bull sperm against damage and improves their ability to support embryo developmentl. Theriogenology. 82(4): 592-598. 11. Jafaroghli M, Khalili B, Farshad A, Zamiri MJ (2011) The effect of supplementation of cryopreservation diluents with sugars on the post-thawing fertility of ram semenl. Small ruminant research. 96(1): 58-63. 12. Lei F, Xing D-M, Xiang L, Zhao Y-N, Wang W, Zhang L-J, Du L-J (2003) Pharmacokinetic study of ellagic acid in rat after oral administration of pomegranate leaf extractl. J. Chromatogr. B. 796(1): 189-194. 13. Lewin A, Lavon H (1997) The effect of coenzyme Q 10 on sperm motility and functionl. Mol. Aspects Med. 18: 213-219. 14. Mata-Campuzano M, Alvarez-Rodriguez M, Alvarez M, Anel L, de Paz P, Garde JJ, Martinez-Pastor F (2012) Effect of several antioxidants on thawed ram spermatozoa submitted to 37 degrees C up to four hoursl. Reproduction in domestic animals = Zuchthygiene. 47(6): 907-914. 15. Mehdipour M, Daghigh Kia H, Najafi A, Dodaran HV, Garcia-Alvarez O (2016) Effect of green tea (Camellia sinensis) extract and pre-freezing equilibration time on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extenderl. Cryobiology. 73(3): 297-303. 16. Miller NJ, Rice-Evans C, Davies MJ, Gopinathan V, Milner A (1993) A novel method for measuring antioxidant capacity and its application to monitoring the antioxidant status in premature neonatesl. Clin. Sci. 84(4): 407-412. 17. Najafi A, Najafi MH, Zanganeh Z, Sharafi M, Martinez-Pastor F, Adeldust H (2014) Cryopreservation of ram semen in extenders containing soybean lecithin as cryoprotectant and hyaluronic acid as antioxidantl. Reproduction in domestic animals = Zuchthygiene. 49(6): 934-940. 18. Najafi A, Daghigh Kia H, Mohammadi H, Najafi MH, Zanganeh Z, Sharafi M, Martinez-Pastor F, Adeldust H (2014) Different concentrations of cysteamine and ergothioneine improve microscopic and oxidative parameters in ram semen frozen with a soybean lecithin extenderl. Cryobiology. 69(1): 68-73. 19. Najafi A, Zhandi M, Towhidi A, Sharafi M, Akbari Sharif A, Khodaei Motlagh M, Martinez-Pastor F (2013) Trehalose and glycerol have a dose-dependent synergistic effect on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extenderl. Cryobiology. 66(3): 275-282. 20. Najafi A, Daghigh Kia H, Dodaran HV, Mehdipour M, Alvarez-Rodriguez M (2017) Ethylene glycol, but not DMSO, could replace glycerol inclusion in soybean lecithin-based extenders in ram sperm cryopreservationl. Animal reproduction science. 177: 35-4. 21. Nath AK, Basu S, Datta U (2015) Coenzyme Q10 and soyphosphatidylcholine in EK extender on preservation of Rhode Island Red poultry semenl. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research. 2(2): 134-140. 22. Tran UPC, Clarke CF (2007) Endogenous synthesis of coenzyme Q in eukaryotesl. Mitochondrion. 7: S62-S71. 23. Woolliams JA, Wiener G, Anderson PH, McMurray CH (1983) Variation in the activities of glutathione peroxidase and superoxide dismutase and in the concentration of copper in the blood in various breed crosses of sheepl. Res. Vet. Sci. 34(3): 253-256. 24. Yousefian I, Zare-Shahneh A, Zhandi M (2014) The effect of coenzyme Q10 and α-tocopherol in skim milk–based extender for preservation of Caspian stallion semen in cool conditionl. J. Equine Vet. Sci. 34(8): 949-954. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 568 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 360 |