تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,504 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,122,769 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,230,982 |
تغییر میزان پتاسیم و آهن در دو رقم حساس و به نسبت مقاوم گوجهفرنگی آلوده به ویروس ایرانی پیچیدگی بوتة چغندرقند | ||
دانش گیاهپزشکی ایران | ||
مقاله 15، دوره 47، شماره 2، آذر 1395، صفحه 341-348 اصل مقاله (392.63 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2017.210988.1006721 | ||
نویسندگان | ||
امید عینی گندمانی* 1؛ مصطفی قنبری2؛ سعید شفیعی3 | ||
1استادیار گروه گیاهپزشکی، دانشگاه زنجان | ||
2دانشجوی سابق کارشناسی ارشد گروه گیاهپزشکی، دانشگاه زنجان | ||
3استادیار گروه خاکشناسی گروه علوم خاک، دانشگاه جیرفت | ||
چکیده | ||
ویروس ایرانی پیچیدگی بوتة چغندرقند (Beet curly top Iran virus, BCTIV)، یکی از عاملهای ایجادکنندة بیماری پیچیدگی بوته در گوجهفرنگی است. بیشتر رقمهای گوجهفرنگی به BCTIV حساس و برخی به نسبت مقاوم گروهبندی شدهاند. از سویی میزان عنصرهای غذایی در رقمهای مختلف گیاهی با میزان حساسیت یا مقاومت گیاه میزبان به یک بیمارگر گیاهی متفاوت است. در این تحقیق میزان عنصرهای غذایی مهم در دو رقم حساس و به نسبت مقاوم گوجهفرنگی در پاسخ به آلودگی به BCTIV بر پایة یک طرح کاملاً تصادفی بررسی و غلظت عنصرهای با کمک دستگاه ICP-MS تعیین شد. نتایج نشان داد که از میان پنج عنصر آهن، کلسیم، پتاسیم، منیزیم و فسفر، میزان پتاسیم در رقم به نسبت مقاوم سوپرچیف بیشتر از رقم حساس گروسی لیسی است. همچنین میزان تجمع پتاسیم در این رقم پس از آلودگی بهطور معنیداری (05/0P<) افزایش پیدا کرد. برعکس، میزان آهن در رقم حساس گروسی لیسی بیشتر از رقم به نسبت مقاوم سوپرچیف تعیین شد که پس از آلودگی به ویروس تنها در رقم حساس گروسی لیسی بهطور معنیداری کاهش پیدا کرد. بنابراین گیاهان گوجهفرنگی که حاوی میزان بالایی از عنصر پتاسیم بوده و نیز قادر به تجمع این عنصر در اندامهای هوایی گیاه پس از آلودگی هستند به BCTIV مقاومت بیشتری نشان میدهند. همچنین بروز زردی در برگهای جوان رقم حساس گروسی لیسی پس از آلودگی به ویروس نیز بهاحتمال مرتبط با کاهش عنصر آهن پس از آلودگی به ویروس در این رقم است. | ||
کلیدواژهها | ||
بکورتوویروس؛ فیزیولوژی؛ مقاومت؛ مواد کانی؛ ویروسهای گیاهی | ||
مراجع | ||
Agrios, G. N. (2005). Plant Pathology. (5th ed). Academic Press.
Bian, X., Thomas, M. R., Rasheed, M. S., Saeed, M., Hanson, P., Barro, P. J. D. & Rezaian, M. A. (2007). A recessive allele (tgr-1) conditioning tomato resistance to geminivirus infection is associated with impaired viral movement. Phytopathology, 97, 930-937.
Binet, M. N., Humbert, C., Lecourieux, D., Vantard, M. & Pugin, A. (2001). Disruption of microtubular cytoskeleton induced by cryptogein, an elicitor of hypersensitive response in tobacco cells. Plant Physiology, 125, 564-572.
Bush, D. S. (1995). Calcium regulation in plant cells and its role in signaling. Annual Review Plant Physiology Plant Molecular Biology, 46, 95-115.
Chapman, H. D. & Pratt, P. F. (1961). Method of analysis for soils, plant and waters. Soil Science, 93, 68.
Eini, O., Sahraei, G.E. & Behjatnia, S.A.A. (2016). Molecular characterization and construction of an infectious clone of a pepper isolate of Beet curly top Iran virus. Molecular Biology Research Communications, 5, 101-113.
Epstein, E. & Bloom, A.J. (2005). Mineral metabolism- mineral nutrition of plants: Principles and perspectives (2nd ed.). Sinauer Associates, Inc.
Fatahi, Z. B., Behjatnia, S. A. A., Afsharifar, A., Hamzehzarghani, H. & Izadpanah, K. (2012). Screening of sugar beet cultivars for resistance to Iranian isolate of beet severe curly top virus using an infectious clone of the virus. Iranian Journal of Plant Pathology, 48, 111-121 (In Farsi).
George, M.S., Lu, G. & Zhou, W. (2002). Genotypic variation for potassium uptake and utilization efficiency in sweet potato (Ipomoea batatus L), Field Crops Research, 77, 7-15.
Ghanbari, M., Eini, O. & Ebrahimi, S. (2016). Differential expression of MYB33 and AP2 genes and response of TY resistant plants to beet curly top Iran virus infection in tomato. Journal of Plant Pathology, 98, 555-562.
Gharouni Kardani, S., Heydarnejad, J., Zakiaghl, M., Mehrvar, M., Kraberger, S. & Varsani, A. (2013). Diversity of Beet Curly top Iran virus isolated from different hosts in Iran. Virus Genes, 46, 571-575.
Graham, D. R. & Webb, M. J. (1991). Micronutrients and disease resistance and tolerance in plants, In: F.R. Mortvedt, L.M. Shuman & R. M., Welch (Ed.), Micronutrients in Agriculture. (pp. 329-370) Wisconsin.
Heydarnejad, J., Hosseini Abhari, E., Bolok Yazdi, H. R. & Massumi, H. (2007). Curly top of cultivated plants and weeds and report of a unique curtovirus from Iran. Journal of Phytopathology, 155, 321-325.
Huber, D. M. & Graham, R. D. (1999). The role of nutrition in crop resistance and tolerance to diseases: Fundamental Mechanisms and Implications. In: Z. Rengel (Ed.) Mineral Nutrition of Crops Food Products. (pp, 169-206) The Haworth Press.
Khoshnazar, F. & Eini, O. (2016). Response of tomato cultivars to agroinfection with beet curly top Iran virus. Journal of Crop Protection, 5, 473-482.
Lecourieux, D., Mazars, C., Pauly, N., Ranjeva, R. & Pugin, A. (2002). Analysis and effects of cytosolic free calcium increases in response to elicitors in Nicotiana plumbaginifolia cells. Plant Cell, 14, 2627-2641.
Lecourieux, D., Ranjeva, R. & Pugin, A. (2006). Calcium in plant defense-signaling pathways. New Phytologist, 171, 249-269.
Marschner, H. (1995). Mineral Nutrition of Higher Plants. (2nd ed.) Academic Press.
Ohashi, Y. & Matsuoka, M. (1987). Localization of pathogenesis-related proteins in the epidermis and intercellular spaces of tobacco-leaves after their induction by potassium salicylate or tobacco mosaic-virus infection. Plant Cell Physiology, 28, 1227-1235.
Pound, G. S. & Welkie, G. W. (1958). Iron nutrition of Nicotiana tabacum L. in relation to multiplication of tobacco mosaic virus. Virology, 5, 371-381.
Rouhibakhsh, A., Priya, J., Periasamy, M., Haq, Q. & Malathi, V. (2008). An improved DNA isolation method and PCR protocol for efficient detection of multicomponent of begomovirus in legumes. Journal of Virological methods, 147, 37-42.
Schachtman, D. P. & Shin, R. (2006). Nutrient sensing and signaling: NPKS. Annual Review in Plant Biology, 58, 47-69.
Singh, R. (1970). Influence of nitrogen supply on host susceptibility to tobacco mosaic virus infection, Phyton-Annales Rei Botanicae, 14, 37-42.
Zafar, Z.U., Athar, H. R. & Ashraf, M. (2010). Responses of two cotton (Gossypium hirsutum L.) cultivars differing in resistance to leaf curl virus disease to nitrogen nutrition. Pakistan Journal of Botany, 42, 2085-2094.
Zhang, Z. X., Tian, L., Duan, B., Wang, Z. & Li, Z. (2007). Differential responses of conventional and Bt-transgenic cotton to potassium deficiency. Journal of Plant Nutrition, 30(77), 7-15.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,049 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 900 |