سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,504
تعداد مقالات70,304
تعداد مشاهده مقاله123,582,434
تعداد دریافت فایل اصل مقاله96,799,310
قاسم زاده, امیر, جمالی, سالار, قاسمی, محمدعلی. (1394). بررسی تأثیر توأم نماتد ریشه گرهی و گل جالیز بر پارامترهای فلورسانس، محتوای کلروفیل و آب نسبی برگ گوجه‌فرنگی در شرایط گلخانه. , 46(2), 295-306. doi: 10.22059/ijpps.2015.57385
امیر قاسم زاده; سالار جمالی; محمدعلی قاسمی. "بررسی تأثیر توأم نماتد ریشه گرهی و گل جالیز بر پارامترهای فلورسانس، محتوای کلروفیل و آب نسبی برگ گوجه‌فرنگی در شرایط گلخانه". , 46, 2, 1394, 295-306. doi: 10.22059/ijpps.2015.57385
قاسم زاده, امیر, جمالی, سالار, قاسمی, محمدعلی. (1394). 'بررسی تأثیر توأم نماتد ریشه گرهی و گل جالیز بر پارامترهای فلورسانس، محتوای کلروفیل و آب نسبی برگ گوجه‌فرنگی در شرایط گلخانه', , 46(2), pp. 295-306. doi: 10.22059/ijpps.2015.57385
قاسم زاده, امیر, جمالی, سالار, قاسمی, محمدعلی. بررسی تأثیر توأم نماتد ریشه گرهی و گل جالیز بر پارامترهای فلورسانس، محتوای کلروفیل و آب نسبی برگ گوجه‌فرنگی در شرایط گلخانه. , 1394; 46(2): 295-306. doi: 10.22059/ijpps.2015.57385

بررسی تأثیر توأم نماتد ریشه گرهی و گل جالیز بر پارامترهای فلورسانس، محتوای کلروفیل و آب نسبی برگ گوجه‌فرنگی در شرایط گلخانه

دانش گیاهپزشکی ایران
مقاله 12، دوره 46، شماره 2، مهر 1394، صفحه 295-306    اصل مقاله (724.15 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2015.57385
نویسندگان
امیر قاسم زاده1؛ سالار جمالی* 2؛ محمدعلی قاسمی3
1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت
2استادیار ، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت
3دانشجوی دکتری، گروه گیاه‌پزشکی، دانشکدۀ علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت
چکیده
نماتد ریشه گرهی Meloidogyne incognita و گل جالیز Orobanche aegyptica انگل ریشۀ گیاهان مختلف محسوب می‌شوند. به‌ منظور بررسی اثر متقابل این دو انگل روی گوجه‌فرنگی، آزمایشی در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تیمار شامل شاهد، نماتد (2000 عدد لارو سن دوم)، بذر گل جالیز (30 میلی‌گرم در کیلوگرم خاک) و ترکیب نماتد (2000 عدد لارو سن دوم) و بذر گل جالیز (30 میلی‌گرم در کیلوگرم خاک) به‌صورت توأم با چهار تکرار در شرایط گلخانه به اجرا درآمد. گیاهچه‌ها در مرحلۀ چهار برگی با سطوح تیماری فوق مایه‌زنی و به گلدان انتقال یافتند و پس از گذشت 60 روز، صفات موردنظر اندازه‌گیری شدند. نتایج نشان داد که هر دو عامل باعث کاهش معنا‌دار وزن خشک و تر شاخساره، کلروفیل، تعداد برگ، آب نسبی برگ، مساحت سطح برگ، ارتفاع بوته، طول ریشه، قطر ساقه و میزان کارایی کوانتومی فتوسیستم II در هر دو حالت روشنایی و تاریکی نسبت به شاهد شدند؛ همچنین تعداد لارو سن دوم، کیسه‌های تخم، تعداد اتصالات گل جالیز روی ریشۀ میزبان، شاخص تولیدمثل نماتد، میزان M، F، QP، QN، NPQ، Fo، Fm و Fv در هر دو حالت روشنایی و تاریکی در حالت تیمار توأم افزایش نشان داد. از سوی دیگر، میزان وزن (تر و خشک) و حجم ریشۀ میزبان در مواجهه با نماتد و گل جالیز به‌ترتیب با افزایش و کاهش همراه بود. همچنین حجم ریشه در تیمار نماتد بیشترین مقدار را داشت. نتایج حاکی از آن است که نماتد مولد گره ریشه و گل جالیز اثر هم‌افزایی بر یکدیگر داشته‌اند.
 
 
 
کلیدواژه‌ها
فلورسانس؛ کلروفیل؛ گل جالیز؛ گوجه‌فرنگی؛ نماتد ریشه گرهی
مراجع
 

  1. Arraus, S.L., Amaro, T.V., Has, J., Nakkoal, H. & Nachit, M.M. (1998). Chlorophyll fluorescence as a selection criterion for gain yield in durum wheat under Medditerranean condition. Field Crops Research, 55, 202-223.
  2. Ashraf, M. & Harris, P.J.C. (2004). Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants. Plant Sciences, 166, 3-16.
  3. Audebert, A., Coyne, D.L., Dingkuhn, M. & Plowright, R.A. (2000). The influence of Cyst Nematodes (Heterodera sacchari) and drought on water relation and growth of upland rice in Coted Ivoire plant and soil. Journal of Nematology, 235-242P.
  4. Baker, N. & Rosenqvist, E. (2004). Application of chlorophyll fluorescence can improve crop production strategies: An examination of future possibilities. Journal of Experimental Botany, 55, 1607-1621.
  5. Barker, K.R., Carter, C.C. & Sasser, J.N. (1985). An advanced treatise on Meloidogyne. Plant Pathology, pp: 212-233.
  6. Berger, S., Benediktyova, Z., Matous, K., Bonfig, K., Muler, M.J., Nedbal, L. & Roitsch, T. (2007). Visualization of dynamics of plant-pathogen interaction by novel combination of chlorophyll fluorescence imaging and statistical analysisi: differential effects of virulent and avirulent strains of P. syringae and of oxylipins on A. thaliana. Journal of Experimental Botany, 58(4), 797-806.
  7. Ellis, M.A., Ferree, D.C. & Spring, D.E. (1981). Photosynthesis, transpiration, and carbohydrate content of apple leaves infected by Podosphaera leucotricha, Phytopathology, 71, 392-395.
  8. Faostat. Fao.org/site/default.aspx.
  9. Francheboud, Y. & Leipner, J. (2003). The application of chlorophyll fluorescence to study light, temperature and drought stress. In: Dw-Ell, J.R., P.M.A. Tiovonen (eds.). Practical application of chlorophyll fluorescence in plant biology. Boston: Kluwer Academic Publisheres, Pp: 125-150.
  10. Gabriels, R., Keirsblulk, W.V. & Engels, H. (1993). A rapid method for the determination of physical propertits of growing media. Acta Horticulturae, 342, 243-247.
  11. Gharabadiyan, F., Jamali, S., Ahmadiyan Yazdi, A. & Eskandari, A. (2012). Source of resistance to root knot nematode (Meloidogyne javanica) in tomato cultivars. Journal of Agricultural Technology, 2011-2021.
  12. Hagigi, H., Taheri, A., Razavi, S.A., Tanha maafii, Z. & Mamagani, M. (2008). Investigation greenhouse of Interaction Race two Root-Knot Nematode Meloidogyne incognita and Verticillum dahliae agent verticillium wilt olive (Olea europaea) Seedlings in Gorgan. Journal Agriculture Sciences and Natural Resource, 15(4). (in Farsi)
  13. Hartman, K.M. & Sasser, J.N. (1985). Identification of Meloidogyne species on the basis of differential host test and perineal pattern morphology. In: An advanced tretise on meloidogyne. Vol, 2, methodology, Barker, K.R., C.C. Carter., and J.N. Sasser. Eds. Relrigh, NC, USA: NCSU Graphics. P: 69-77.
  14. Hosseini Nejad, S.A. & Khan, M.W. (2001). Interaction of root-knot nematode, Meloidogyne incognita (race 1) on chick–pea cultivars. Applied Entomology and Phytopathology, 68, 1-11.
  15. Hussain, M.A., Mukhtar, T. & Kayani, M.Z. (2011). Assessment of the damage cased by Meloidogyne incognita on OKRA (Abelmoschus esculentus). The Journal of Animal and Plant Sciences, 21(4), 857-861.
  16. Hussey, R.S. & Barker, K.R. (1973). A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. Including a new technique, Plant Disease Reporter, 57, 1025-1028.
  17. Izadpanah, K.A., Aahkan, S.M., Banihashemi, Z., Rahimian, H.A. & Minasian, V. (2010). Plant Pathology. Volume 1, 5th ed. Page 344. (in Farsi)
  18. Jepson, S.B. (1987). Identification of Root-knot nematodes. Cambrian News Ltd.
  19. Krause, G.H. & Weis, E. (1991). Chlorophyll fluorescence and photosynthesis: The basics. Annual Review of Plant Physiology. Plant Molecular Biology, 42, 313-349.
  20. Ma, B.L., Morison, M.J. & Videng, H.D. (1995). Leaf greenness and photosynthetic rates in soybean. Crop Science, 35, 1411-1414.
  21. Maxwell, K. & Johnson, G.N. (2000). Chlorophyll fluorescence- A practical Guide. Experimental Botany, 51, 659-668.
  22. Melakeberhan, H. & Ferris, H. (1989). Impact of Meloidogyne incognita on Physiological Efficiency of Vitis vinifera. Journal of Nematology, 21(1), 74-80P.
  23. Mohsenzadeh, S., Farahi-Ashtiani, C., Mlbobi, M.A. & Ganati, F. (2003). Effect of drought and chlorocholine chloride on seedling growth and photosynthesis of two cultivars of wheat (Triticum aestivum L.). Pajouhesh and Sazandegi, 60, 56-64. (in Farsi)
  24. Netto, A., Campostrini, E., Oliveira, J. & Bressan-Smith, R. (2005). Photosynthetic pigments, nitrogen, chlorophyll a fluorescence and SPAD-502 reading in coffee leaves. Scientia Horticulturae, 104, 199-202.
  25. Oostenbrink, M. (1966). Major characteristics of the relationships between nematodes and plants. Meded. Landbouwhoo. Gesch. Wageningen, 66, 1-46.
  26. Ort, D. (2002). Chilling-induced limitations on photosynthesis in warm climate plants: Contrasting mechanisms. Environmental Control in Biology, 40, 7-18.
  27. Oxborough, K. (2004). Imaging of chlorophyll a fluorescence: theoretical and practical aspect of an emerging technigue for the monitoring of photosynthetid performance. Journal of Experimental Botany, 55, 1195-1205.
  28. Perry, R.N., Maurice, M. & Starr, J.L. (2010). Root-Knot Nematodes. CABI Head Office, UK. 531pp.
  29. Rapacz, M., Tokarz, K. & Janowiak, F. (2001). The initiation of elongation growth during long-term low-temperature stay of spring-type oilseed rape may trigger loss of frost resistance and change in photosynthetic apparatus. Plant Science, 161, 231-236.
  30. Rizza, F., Pagani, D., Stance, A.M. & Cattivelli, L. (2001). Use of chlorophyll fluorescence to evaluate the cold acclimation and freezing tolerance of winter and Spring oats. Plant Breeding, 120, 389-396.
  31. Sahebani, N., Zad, J., Sharifiee Tehrani, A. & Kheyri, A. (2006). Study of spore germination, growth rate and orientation of Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici toward roots infected by Meloidogyne javanica in vitro. Journal Agriculture Science and Natural Resource, 13(5). Nov-Dec. (in Farsi)
  32. Shaukat, S.S. & Khan, M.A. (2009). Growth and Physiological responses of OKRA (Abelmoschus bsculentus (L.) Moench) to simulated acid rain and Roor-knot Nematode (Meloidogyne incognita). Nematol. Medit. Horticultural Research, 37, 17-23.
  33. Swain, B. & Prasad, S. (1989). Photosynthetic rate in rice as influenced by the Root-knot Nematode, Meloidogyne graminicola, infection. Revue de Nematology, 12(4), 431-432.
  34. Taylor, A.L. & Sasser, J.N. (1978). Biology, identification and control of root-knot nematodes (Meloidogyne spp.). Coop Publisher. Plant. North. Carolina State. University and U.S Agency international Development. Raleigh, N.C. 111pp.
  35. Taylor, D.P. & Netscher, C. (1974). An improved technique for preparing perennial pattern of Meloidogyne spp.. Nematologica, 20, 268.
  36. Ye. De-You, Qianchum- Too & Chen Jin-Feng. (2011). Photosynthetic response to the Root-knot Nematode Meloidogyne incognita in resistant cultivar Sour Cucumber (Cucumis hystria Chaker.) Journal China Agriculture Science, 44(20), 4248-4257P.
  37. Zobayed, S., Afreen, F. & Kozai, T. (2005). Temperature stress can alter the photosynthetic efficiency and secondary metabolite concentrations in St. Johns Wort. Plant Physiology and Biochemistry, 43, 977-984.

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,759
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,195


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب