تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,532 |
تعداد مقالات | 70,500 |
تعداد مشاهده مقاله | 124,088,487 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,191,395 |
ارزیابی کمی و کیفی توان تولید اکسین (IAA) برخی سویههای سیانوباکتر جداسازی شده از شالیزارهای استان گیلان | ||
تحقیقات آب و خاک ایران | ||
مقاله 21، دوره 46، شماره 3، مهر 1394، صفحه 589-596 اصل مقاله (721.53 K) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijswr.2015.56747 | ||
نویسندگان | ||
صاحب سودایی مشایی* 1؛ ناصر علی اصغرزاد2؛ قربانعلی نعمت زاده3؛ ندا سلطانی4 | ||
1دانشجوی دکتری بیولوژی و بیوتکنولوژی خاک دانشگاه تبریز | ||
2استاد بیولوژی خاک گروه علوم خاک دانشگاه تبریز | ||
3استاد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری و پژوهشکدة ژنتیک و زیست فناوری طبرستان | ||
4دانشیار پژوهشکدة علوم پایة کاربردی جهاد دانشگاهی دانشگاه شهید بهشتی | ||
چکیده | ||
سیانوباکترها گروهی از پروکاریوتها هستند که از نظر پتانسیل تولید مواد محرک رشد گیاه، بهویژه در زمینة تولید هورمونهای گیاهی، کمتر دربارة آنها تحقیق و مطالعه شده است. در این تحقیق توان تولید ایندول استیک اسید (IAA) سویههای سیانوباکتریایی جداسازیشده از شالیزارهای استان گیلان به طور کمّی و کیفی ارزیابی و پتانسیل آنها بر شاخصهای جوانهزنی بذرهای برنج بررسی شد. نتایج نشان داد توان تولید هورمون IAA در چند جدایة سیانوباکترهای شناساییشده وجود دارد. در تیمار بدون اسید آمینة الـ تریپتوفان جدایههای GGuCy-34 و GGuCy-42 به ترتیب 98/14 و 83/10 میکروگرم IAA بر میلیلیتر بر کلروفیل a، در تیمار 100 میلیگرم بر میلیلیتر الـ تریپتوفان جدایههای GGuCy-34 و GGuCy-15 و GGuCy-42 به ترتیب 7/23 و 46/17 و 81/15 میکروگرم IAA بر میلیلیتر بر کلروفیل a، و در تیمار 500 میلیگرم بر میلیلیتر الـ تریپتوفان جدایههای GGuCy-15 و GGuCy-16 به ترتیب 16/29 و 61/21 میکروگرم IAA بر میلیلیتر بر کلروفیل a بیشترین مقادیر اکسین (IAA) را تولید کردند. نتایج نشان میدهد تولید میزان IAA به نوع جدایه و شرایط محیط کشت بستگی کامل دارد. انرژی و سرعت جوانهزنی بذرها تحت تأثیر سویههای GGuCy-25، GGuCy-42، GGuCy-41، GGuCy-26، و GGuCy-50 و وزن خشک ریشهچه و ساقهچه در بذرهای تلقیحشده با سویههای GGuCy-42، GGuCy-50، و GGuCy-25 بیشترین افزایش را داشته است. | ||
کلیدواژهها | ||
ایندول استیک اسید؛ برنج؛ تریپتوفان؛ جوانهزنی؛ سیانوباکتر | ||
مراجع | ||
Agarwal, R. L. (2003). Seed technology. Publication Company Limited New Delhi, India. 550pp.
Ahmed, M., Stal, L. J., and Hasnain, S. (2010). Association of non-heterocystous cyanobacteria with crop plants. Plant and Soil. 336:363–375.
Arshad, M. and Frankenberger, W. T. (1998). Plant growth substances in the rhizosphere: microbial production and functions. Advanced Agronomy, 62: 46-151.
Asghar, H. N., Zahir, Z. A., and Arshad, M. (2004). Screeninig rhizobacteria for improving the growth, yield, and oil content of canola (Brassica napus L.). Australian Journal of Agricultural research. 55: 187-194.
Begum, Z. N. H., Mandal, R., and Islam, S. (2011). Effect of cyanobacterial biofertilizer on the growth and yield components of two HYV of rice. Journal of Algal Biomass and Utln., 2(1): 1-9.
Bric, J. M., Bostok, R. M., and Silverston, S. A. (1991). Rapid in situ assay for indoleacetic production by bacteria immobilized on a nitrocellulose membrance. Applied Environmental Microbiology, 57(2): 535-538.
Desikhachary, T. V. (1959). Cyanophyta. Indian Council of Agricultural Research Publishers pp. 565.
Glick, B. R. (1995). The enhancement of plant growth by free – living bacteria. Canadian Journal of Microbiology .41: 109 –117.
Johansson, C. and Bergman, B. (1994). Reconstitution of the symbiosis of Gunnera manicata Linden: cyanobacterial specificity. New Phytology. 126:643–652.
John, D. M., Whitton, B. A., and Brook, A. J. (2003). The freshwater algal flora of the British Isles, an identification guide to freshwater and terrestrial algae. Cambridge University Press.
Karthikeyan, N., Prasanna, L. R., and Kaushik, B. D. (2007). Evaluating the potential of plant growth promoting cyanobacteria as inoculants for wheat. European Journal of Soil and Biology. 43: 23-30.
Kaushik, B. D. (1987). Laboratory Methods for Blue-green Algae. Associated Publishing Company. Pp. 171.
Madigan, M. T., Martinko, J. M., Stahl, D. A., and Clark, D. P. (2012). Brock Biology of Microorganisms (13th ed).pp. 532-536. Publishing as Benjamin Cummings, San Francisco. Manufactured in the U.S.A.
Maguire, J. D. (1962). Speed of germination-aid in selection and evaluation for seedling emergence and vigour. Crop Science. 2: 176-177.
Mazhar, S. and Hasnain, S. (2011). Screening of native plant growth promoting cyanobacteria and their impact on Triticum aestivum var. Uqab 2000 growth. African Journal of Agricultural Research, 6(17):3988-3993.
Mishra, Y., Bhargava, P., Chaurasia, N., and Rai, L. C. (2009). Proteomic evaluation of the non-survival of Anabaena doliolum (Cyanophyta) at elevated temperatures. European Journal of Phycology, 44(4): 551–565.
Porra, R. J., Thompson, W. A., and Kriedemann, P. E. (1989). Determination of accurate extinction coefficients and simultaneous equations for assaying chlorophylls a and b extracted with four different solvents; verification of the concentration of chlorophyll standards by atomic absorption spectroscopy. Biochimical and Biophysical Acta. 975:384–394.
Prasanna, R., Jaiswal, P., Nayak, S., Sood, A., and Kaushik, B. D. (2009). Cyanobacterial diversity in the rhizosphere of rice and its ecological significance. Indian Journal of Microbiology, 49: 89-97.
Prasanna, R., Sharma, E., Sharma, P., Kumar, A., Kumar, R., Gupta, V., Pal, R. K., Shivay, Y. S., and Nain, L. (2013). Soil fertility and establishment potential of inoculated cyanobacteria in rice crop grown under non-flooded conditions. Paddy Water and Environment, 11:175–183.
Prescott, G. W. (1970). Algae of The Western Great Lakes Area. W.M.C. Brown Company Publishers. 977 pp.
Rodriguez, A. A., Stella, A. A., Storni, M. M., Zulpa, G., and Zaccaro, M. C. (2006). Effects of cyanobacterial extracellular products and gibberellic acid on salinity tolerance in Oryza sativa L. Saline System, 2: 7.
Saadatnia, H. and Riahi, H. (2009). Cyanobacteria from paddy fields in Iran as a biofertilizer in rice plants. Plant and Soil Environment, 55 (5): 207–212
Sergeeva, E., Liaimer, A., and Bergman, B. (2002). Evidence for production of the phytohormone indole-3-acetic acid by cyanobacteria. Planta. 215: 229–238.
Shrivastava, U. P. and Kumar, A. (2011). A simple and rapid plate assay for the screening of indole-3-acetic acid (IAA) producing microorganisms. International Journal of Applied Biology and Pharmaceutical Technology, 2(1): 120-124.
Soltani, N., Khavari-Nejad, R., Tabatabaie, M., Shokravi, S. H., and Valiente, E. F. (2006). Variation of Nitrogenase Activity, photosynthesis and pigmentation of cyanobacterium Fischerella ambigua strain FS18 under different irradiance and pH. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 22 (6): 571-576.
Stanier, R. Y., Kunisawa, R., Mandal, M., and Cohen-Bazire, G. (1971). Purification and properties of unicellular blue green algae (Order: Chroococcales), Bacteriological Reviwe. 35: 171-305.
Szkop, M. and Bielawski, W. (2013). A simple method for simultaneous RP-HPLC determination of indolic compounds related to bacterial biosynthesis of indole-3-acetic acid. Antonie van Leeuwenhoek. 103:683–691.
Thajuddin, N. and Subramanian, G. (2005). Cyanobacterial biodiversity and potential applications in biotechnology. Current Science. 89: 47–57.
Tien, T. M., Gaskins, M. H., and Hubbell, O. H. (1979). Plant growth substances produced by Azospirillum brasilense and their effect on the growth of pearl millet. Applied Environmental Microbiology. 37: 1016-1024.
Torres-Rubio, M. G., Astrid, S., Castillo, J., and Martiners, P. (2000). Isolation of Enterobacteria, Azotobacter sp. And Pseudomonas sp., producers of indole-3-acetic acid and Siderophores, from colombian rice rhizosphere. Revista Latinoamericana de Microbiologia. 42: 171-176.
Varalakshmi, P. and Malliga, P. (2012). Evidence for production of Indole-3-acetic acid from a fresh water cyanobacteria (Oscillatoria annae) on the growth of H. annus. International Journal of Scientific and Research Publications, 2(3):1-15. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,782 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,468 |