سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,573
تعداد مقالات71,033
تعداد مشاهده مقاله125,502,730
تعداد دریافت فایل اصل مقاله98,766,890
زاهدی, بهمن, صحرارو, امیر. (1394). ارزیابی ریز ازدیادی گیاه دارویی مرزۀ خوزستانی (Satureja khuzistanica). , 46(2), 291-296. doi: 10.22059/ijhs.2015.54624
بهمن زاهدی; امیر صحرارو. "ارزیابی ریز ازدیادی گیاه دارویی مرزۀ خوزستانی (Satureja khuzistanica)". , 46, 2, 1394, 291-296. doi: 10.22059/ijhs.2015.54624
زاهدی, بهمن, صحرارو, امیر. (1394). 'ارزیابی ریز ازدیادی گیاه دارویی مرزۀ خوزستانی (Satureja khuzistanica)', , 46(2), pp. 291-296. doi: 10.22059/ijhs.2015.54624
زاهدی, بهمن, صحرارو, امیر. ارزیابی ریز ازدیادی گیاه دارویی مرزۀ خوزستانی (Satureja khuzistanica). , 1394; 46(2): 291-296. doi: 10.22059/ijhs.2015.54624

ارزیابی ریز ازدیادی گیاه دارویی مرزۀ خوزستانی (Satureja khuzistanica)

علوم باغبانی ایران
مقاله 11، دوره 46، شماره 2، مرداد 1394، صفحه 291-296    اصل مقاله (497.54 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2015.54624
نویسندگان
بهمن زاهدی* 1؛ امیر صحرارو2
1استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرم‌آباد
2استادیار گروه علوم باغبانی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت
چکیده
به‌منظور مطالعۀ ریز‌ازدیادی گیاه مرزۀ خوزستانی، بذور این گیاه در محیط کشت موراشیگ و اسکوگ (MS) نیم‌غلظت کشت ‌و سپس گیاهچه‌ها واکشت شدند. پس‌ از آن نمونه‌ها در سطوح مختلف هورمون‏های BA و Kinetin، به‌صورت منفرد یا در ترکیب با IBA کشت شدند. نتایج نشان داد، بیشترین میزان پرآوری (4/2 شاخه) در غلظت 5/0 میلی‌گرم در لیتر IBA و 3 میلی‌گرم در لیتر BA مشاهده شد. در بخش طول شاخه، طویل‌ترین شاخه‌ها (76/5 سانتی‌متر) در غلظت 5/0 میلی‌گرم در لیتر IBA و 5/1 میلی‌گرم در لیتر BA به دست آمد. بیشترین درصد ریشه‌زایی (2/85 درصد) در محیط کشت MS با 4/1 غلظت نمک به دست آمد. بیشترین تعداد ریشه (3/12) با طول 55/1 سانتی‌متر ریشه، در محیط کشت MS با 2/1 غلظت نمک، به دست آمد. بیشترین درصد ریشه‌زایی (3/64 درصد) در غلظت 25/0 میلی‌گرم در لیتر IBA و بیشترین تعداد ریشه (4/8 و 7/7)، به‌ترتیب در غلظت‌های 25/0 و 5/0 میلی‌گرم در لیتر IBA، به دست آمدند. در‌مجموع می‌توان تیمار 25/0 میلی‌گرم در لیتر IBA به همراه 3 میلی‌گرم در لیتر BA را به‌منزلۀ مفید‌ترین ترکیبات هورمونی برای ریزازدیادی مرزۀ خوزستانی نام برد.
 
کلیدواژه‌ها
ریزازدیادی؛ ریز‌نمونه‌؛ مرزۀ خوزستانی؛ محیط کشت‌؛ هورمون
مراجع

 

  1. Afzalifar, M. (2012). Evaluation of different propagation and androgenesis in Satureja khuzistanica and S. rechingeri. M.Sc. thesis. Medicinal Plants and Drug Research Institute. Shahid Beheshti University, Iran. (in Farsi)
  2. Arikat, N. A., Jawad, F. M., Karam, N. S. & Shibli, R. A. (2004). Micropropagation and accumulation of essential oils in wild sage (Salvia fruticosa Mill.). Scientia Horticulturae, 100, 193-202.
  3. Cristna, M. F. D., Esquibel, M. A. & Dos Santos, A.V. P. (1990). In vitro propagation of the alkaloid producing plant Datura insignis Barb. Rodr. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 21, 75-78.
  4. Cuenca, S. & Amo-Marco, J. B. (2000). In vitro propagation of two Spanish endemic species of Salvia through bud proliferation. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 36, 225-229.
  5. Fotovati, H. & Noorbakhsh, S. (2009). Biotechnology, the new aspect for agricultural progress. The 6th National Biotechnology Congress of Iran, Tehran. (in Farsi).
  6. Hadian, J. (2008). Evaluation of genetic diversity of endemic Iranian Satureja species. PhD thesis. University College of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Iran.(in Farsi)
  7. Hadian, J., Mirjalili, M. H. & Ganjipoor, N. (2011). Morphological and phytochemical characterization of natural populations of Satureja khuzestanica. Chemistry & Biodiversity, 8, 902-915.
  8. Iram, S. & Anis, M. (2008). An improved plant regeneration system and ex vitro acclimatization of Ocimum basilicum L. Acta Physiologiae Plantarum, 30, 493-499.
  9. Jamzad, Z. (1994). A new species of the genus Satureja from Iran. The Iranian Journal of Botny, 6(2), 215-218.
  10. Mao, A. H., Wettem, A., Fay, M. & Caligari, P. D. S. (1995). In vitro propagation of Clerodendrum colebrookianum Walp, a potential natural anti-hypertension medicinal plant. Plant Cell Reports, 14, 493-496.
  11. Morimoto, S., Goto,Y. & Shorama, Y. (1994). Production of lithospermic acid B and rosmarinic acid in callus tissue and regenerated plantlets of Salvia miltiorrhiza. Journal of Natural Products, 57, 817-823.
  12. Murashige, T. & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15, 473-497.
  13. Pereira, A. M. S., Bertoni, B. W., Moraes, R. M. & Franca, S. C. (2000). Micropropagation of Salix humboldtiana Hild. Revista Brasileriade Plantas Medicinasis, 2, 17-21.
  14. Preira, N. A. B. (1996). In vitro propagation of Hancornia speciosa, a tropical fruit tree. In Vitro Cellular Development Biology, 32, 253-256.
  15. Saxena, C., Rout, G. R. & Das, P. (1998). Micropropagation of Psoralea corylifolia.Linn. Journal of Medicinal and Aromatic Plant Sciences, 20, 8-15.
  16. Sefidkon, F., Abbasi, K., Jamzad, Z. & Ahmadi, S. (2007). The effect of distillation methods and stage of plant growth on the essential oil content and composition of Satureja rechingeri Jamzad. Food Chemistry, 100 (3), 1054-1058.
  17. Tripathi, L. & Tripathi, J. N. (2003). Role of biotechnology in medicinal plants. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2, 243-253.

 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,172
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,350





سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب