![سامانه نشر مجلات علمی دانشگاه تهران](./data/logo.png)
تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,572 |
تعداد مقالات | 71,028 |
تعداد مشاهده مقاله | 125,499,436 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 98,762,036 |
بررسی فعالیت برخی آنزیمهای آنتیاکسیدان و تجمع یونهای فلزی در کلزای تلقیحشده با باکتری P. fluorescens FY32 تحت تنش شوری | ||
به زراعی کشاورزی | ||
مقاله 10، دوره 16، شماره 4، بهمن 1393، صفحه 897-910 اصل مقاله (1.19 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jci.2015.53584 | ||
نویسندگان | ||
مرتضی بازیار1؛ علی بنده حق* 2؛ داود فرج زاده3 | ||
1کارشناس ارشد اصلاح نباتات، گروه بهنژادی و بیوتکنولوژی، دانشکدة کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران | ||
2دانشیار گروه بهنژادی و بیوتکنولوژی، دانشکدۀ کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران | ||
3استادیار گروه زیستشناسی- سلولی مولکولی، دانشکدة علوم پایه، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران | ||
چکیده | ||
این پژوهش بهمنظور بررسی اثر تلقیح بذر کلزا با باکتری P. fluorescens FY32بر فعالیت برخی آنزیمهای آنتیاکسیدان و تجمع یونهای فلزی در شرایط تنش شوری در پاییز سال 1391 در گلخانۀ تحقیقاتی گروه بهنژادی و بیوتکنولوژی گیاهی دانشکدۀ کشاورزی دانشگاه تبریز انجام گرفت. آزمایش بهصورت کرتهای دوبار خردشده با سه فاکتور (تنش شوری، تلقیح با باکتری و رقم) در قالب طرح پایة کاملاً تصادفی در سه تکرار در سیستم کشت هیدروپونیک انجام گرفت. سطوح تنش شوری شامل 150 و 300 میلیمولار نمک کلرید سدیم همراه با سطح بدون شوری بهعنوان شاهد بود. دو رقم مورد بررسی کلزا، ‘ساریگول’ و ‘هایولا 308’ بودند. نتایج نشان داد که فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان (کاتالاز، پراکسیداز و پلیفنولاکسیداز) در گیاهچههای تلقیحشده با باکتری کاهش معناداری نسبت به گیاهچههای تلقیحنشده در سطوح مختلف تنش شوری داشت. تجمع یونهای سدیم و کلراید با افزایش شوری در گیاهان بیشتر شد، ولی یون پتاسیم کاهش معنادار داشت. تجمع یون سدیم و کلراید در گیاهچههای تلقیحشده با باکتری تحت تنش شوری کاهش و مقدار پتاسیم افزایش داشت. رقم ‘هایولا 308’ تحت تنش شوری کمترین کاهش در مقدار تولید مادۀ خشک را داشت و مقاومتر از ‘ساریگول’بود. این رقم مقاوم در حالت تلقیح با باکتری و در سطوح مختلف شوری دارای کمترین فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدان و تجمع یونهای سدیم و کلراید و بیشترین غلظت یون پتاسیم بود. | ||
کلیدواژهها | ||
باکتریهای محرک رشد؛ پتاسیم؛ پراکسیداز؛ کاتالاز؛ کلرورسدیم | ||
مراجع | ||
1 . ارزانش م ح، بن یعقیل ن، قربانلی ه و شهبازی م (1391) تأثیر باکتریهای محرک رشد گیاه بر پارامترهای رشدی و غلظت عناصر کممصرف در دو رقم کلزا تحت تنش شوری. مدیریت خاک و تولید پایدار. 2(2): 153-163. 2 . حسینی ی، همایی م، کریمیان ن و سعادت س (1387) اثرات فسفر و شوری بر رشد، غلظت عناصر غذایی و کارایی مصرف آب در کلزا (.Brassica napus L). پژوهش کشاورزی. 8(4): 1-18. 3 . حیدری شریفآباد ح (1380) گیاه و شوری. انتشارات مؤسسۀ تحقیقات جنگلها و مراتع تهران. 190 ص. 4 . دهشیری ع، مدرس ثانوی س م ع، رضایی ح و شیرانیراد ا ح (1391) اثر افزایش غلظت دیاکسیدکربن هوا بر برخی صفات سه رقم کلزا (.Brassica napus L) در شرایط شور. بهزراعی نهال و بذر. 2(1): 35-52. 5 . رﺟﺒﻲاﮔﺮه س، رﻣﻀﺎنﭘﻮر م ر، ﻣﺤﻤﻮدی م و ﻣﻬﺪیﭘﻮر آ (1389) ﺑﺮرﺳﻲ ﻛﺎراﻳﻲ ﺑﺎﻛﺘﺮی Pseudomonas sp. ﺑﺮ ﻣﻴﺰان ﺟﺬب ﻋﻨﺎﺻﺮ ﻏﺬاﻳﻲ ﺗﺤﺖ ﺷﺮاﻳﻂ آﺑﻴﺎری ﺑﺎ آب ﺷﻮر در ﺑﺮﻧﺞ. مجموعه مقالات پنجمین همایش ایدههای نو در کشاورزی: 1-4. 6 . سلطانی س، موسوی س ف و مصطفیزاده فرد ب (1387) اثر توأم کمآبیاری و شوری بر میزان عناصر غذایی و مادۀ خشک کلزا و پروفیل شوری خاک تحت شرایط گلخانهای. پژوهش آب ایران. 2(3): 65-76. 7 . کافی م، باقری ع ر، نباتی ج، زارع مهرجردی م و معصومی ع (1389) بررسی تأثیر تنش شوری بر برخی متغیرهای فیزیولوژیک ۱۱ ژنوتیپ نخود در محیط هیدروپونیک. علوم و فنون کشتهای گلخانهای. 1(4): 55-69. 8 . Ahmadi A and Ceiocemardeh A )2004( Effect of drought stress on soluble carbohydrate, chlorophyll and proline in four adopted wheat cultivars with various climate of Iran. Journal of Agricultural Science. 35: 753-763. 9 . Alscher RG, Donahus JR and Cramer CL (1997) Reactive oxygen species and antioxidants: relationship in green cells. Physiologia Plantarum. 100: 224-233. 10 . Appel K and Hirt H (2004) Reactive oxygen species: metabolism, oxidative stress and signal transduction. Plant Biology. 55: 373-399. 11 . Ashraf M and Ahmad S )2000( Influence of sodium chloride on ion accumulation, yield components and fibre characteristics in salt-tolerant and salt-sensitive lines of cotton (Gossypium hirsutum L.). Field Crop Research. 66: 115-127. 12 . Ashraf M and Ali Q (2008) Relative membrane permeability and activities of some antioxidant enzymes as the key determinants of salt tolerance in canola. Environmental and Experimental Botany. 63: 266-273. 13 . Ashraf M and McNeilly T (1990) Responses of four Brassica species to sodium chloride. Environmental and Experimental Botany. 30: 475-487. 14 . Ashraf M and McNeilly T (2004) Salinity tolerance in Brassica oilseeds. Critical Reviews in Plant Science. 23: 157-214. 15 . Ashraf M, Nazir N and Mc Neilly T (2001) Comparative salt tolerances of amphidiploid and diploid Brassica species. Plant Science. 160: 683-689. 16 . Bailly C (2004) Active oxygen species and antioxidants in seed biology. Seed Science Research. 14: 93-107. 17 . Bandeh–Hagh A, Toorchi M, Mohammadi A, Chaparzadeh N, Hosseini- Salekdeh GH and Kazemnia H (2008) Growth and osmotic adjustment of canola genotypes in response to salinity. Food Agriculture and Environment. 6: 201-208. 18 . Baniaghil N, Arzanesh MH, Ghorbanli M and Shahbazi M (2013) The effect of plant growth promoting rhizobacteria on growth parameters, antioxidant enzymes and microelements of canola under salt stress. Biological and Environmental Science. 3: 17-27. 19 . Bhattacharjee S and Mukherjee AK (2002) Salt stress induced cytosolute accumulation, antioxidant response and membrane deterioration in three rice cultivars during early germination. Seed Science and Technology. 30: 279- 288. 20 . Chance B and Maehly AC (1995) Assay of catalase and peroxidase. In: S.P, Colowick. and N.O, Kaplan, (Eds.), Methods in Enzymology. Academic Press. NewYork. Pp. 764 -775. 21 . Chinnusamy V, Jagendorf A and Zhu JK (2005) Understanding and improving salt tolerance in plants. Crop Science. 45: 437-448. 22 . Chinnusamy V, Zhu J and Zhu JK (2006) Salt stress signaling and mechanisms of plant salt tolerance. Genetic Engineering. 27: 141-177. 23 . Demirel T and Turkan I (2005) Comparative lipid peroxidation, antioxidant defense systems and proline content in roots of two rice cultivars differing in salt tolerance. Environmental and Experimental Botany. 53: 247-257. 24 . Diatloff E and Rengl Z (2001) Compilation of simple spectophotometric techniques for the determination of element in nutrient solutions. Plant Nutrition. 24: 75-86. 25 . Farajzadeh D, Yakhchali B, Aliasgharzad N, Sokhandan-Bashir N and Farajzadeh M (2011) Plant indigenous Azotobacteria isolated from soils in Iran. Current Microbiology. 64: 397-403. 26 . Francois LE (1994) Growth, seed yield, and oil content of canola grown under saline conditions. Agronomy. 86: 233-237. 27 , Glick BR, Karaturovic DM and Newell PC (1995) A novel procedure for rapid isolation of plant growth promoting Pseudomonas. Canadian Journal of Microbiology. 41: 533-536. 28 . Han HS and Lee KD (2005a) Physiological Responses of Soybean - Inoculation of Bradyrhizobium japonicum with PGPR in Saline Soil Conditions. Agricultural and Biological Sciences. 1: 216-221. 29 . Han HS and Lee KD (2005b) Plant growth promoting rhizobacteria effect on antioxidant status, photosyn thesis, mineral uptake and growth of lettuce under soil salinity. Journal of Agricultural Biological Science. 1: 210-215. 30 . He T and Cramer GR (1992) Growth and mineral nutrition of six rapid-cycling Brassica species in response to seawater salinity. Plant and Soil. 139: 285-294. 31 . Kaya C, Ydemir S, Sonmes O, Ashraf M and Dikilitas M (2013) Regulation of growth and some key physiological processes in salt-stressed maize (Zea mays L.) plants by exogenous application of asparagine and glycerol. Acta Botanica Croatica. 72: 157–168. 32 . Koroi SA (1989) Gel elektrophers tische and spectrophotometris chose unter unchngen zomein fiussder temperature and stractur peroxidase isoenzyme. Crop Physiology. 20: 15-22. 33 . Leidi EO and Saiz JF (1997) Is salinity tolerance related to Na accumulation in upland cotton (Gossypium hirsutum) seedlings. Plant Soil. 190: 67-75. 34 . Lifshitz R, Kloepper JW, Kozlowski M, Simonson C, Carlson J, Tipping EM and Zaleska I (1987) Growth promotion of canola (rapeseed) seedlings by a strain of Pseudomonas putida under gnotobiotic conditions. Canadian Journal of Microbiology. 33: 390-395. 35 . Lixia Y, Zhansheng W, Yuanyuan Z, Imdad K and Chun L (2010) Growth promoting and protection against salt stress by Pseudomonas putida Rs-198 on cotton. European. Soil Biology. 46: 49-54. 36 . Meloni DA, Oliva MA, Martinez CA and Cambraia J (2003) Photosynthesis and activity of superoxide dismutase, peroxidase and glutathione reductase in cotton under salt stress. Environmental and Experimental Botany. 49: 69-76. 37 . Moradi F and Abdelbaghi MI (2007) Responses of photosynthesis, chlorophyll fluorescence and ROS-scavenging systems to salt stress during seedling and reproductive stages in rice. Annales of Botany. 99: 1161-1173. 38 . Munns R (1993) Physiological processes limiting plant growth in saline soil: some dogmas and hypotheses. Plant, Cell and Environment. 16: 15-24. 39 . Nicoli MC, Elizalde BE, Pitotte A and Lerici CR (1991) Effect of sugars and maillard reaction products on polyphenol oxidase and peroxidase activity in food. Journal of Food Biochemistry. 15: 169-184. 40 . Rivelli AR, James RA, Munns R and Condon AG (2002) Effect of salinity on water relations and growth of wheat genotypes with contrasting sodium uptake. Functional Plant Biology. 29: 1065-1074. 41 . Saravanakumar D, Kavino M, Raguchander T, Subbian P and Samiyappan R (2010) Plant growth promoting bacteria enhance water stress resistance in green gram plants. Plant Physiology. 33: 203-209. 42 . Valverde A, Burgos A, Fiscella T, Rivas R, Velazquez E, Rodrguez-Barrueco C, Cervantes E, Chamber M, and Igual JM )2006( Differential effects of coinoculations with Pseudomonas jessenii PS06 and Mesorhizobium ciceri C-2/2 strains on the growth and seed yield of chickpea under greenhouse and field conditions. Plant and Soil. 287: 43-50. 43 .Van VT, Berge O, Ngoke S, Balandreau J and Heulin T (2000) Repeated beneficial effect of riceinoculation with a strain of Burkholderia vietnamiensis on early and late yield components in lowfertility sulphate acid soil of Vietnam. Plant and Soil. 218: 273-284. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,190 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,147 |