تعداد نشریات | 161 |
تعداد شمارهها | 6,572 |
تعداد مقالات | 71,021 |
تعداد مشاهده مقاله | 125,497,654 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 98,759,150 |
تاثیر تنظیمکنندههای رشد گیاهی بر القای بافت جنین زا در چهار گونة کاج (Pinus L.) | ||
نشریه جنگل و فرآورده های چوب | ||
مقاله 10، دوره 65، شماره 3، مهر 1391، صفحه 377-389 اصل مقاله (254.95 K) | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jfwp.2012.30087 | ||
نویسندگان | ||
الهه ناصری1؛ سیامک کلانتری2؛ روحانگیز نادری3 | ||
1دانشجوی کارشناسیارشد، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، ایران | ||
2استادیار پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، ایران | ||
3دانشیار گروه علوم باغبانی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، ایران | ||
چکیده | ||
در این پژوهش، با استفاده از ترکیبهای مختلف تنظیمکنندههای رشد گیاهی میزان القای بافت جنینزا در چهار گونه متفاوت کاج مورد مطالعه قرار گرفت. القای بافت جنینزا از ریزنمونه جنین زایشی بالغ روی محیط کشت DCR با استفاده از سطوح مختلف تنظیمکنندههای رشد BA و2,4-D در گونههای Pinus brutia ، P. nigra ، P. radiata و P. sylvestris صورت گرفت. برای انجام آزمایش، پس از ضدعفونی بذرها، جنین زایشی از مگاگامتوفیت جدا گردید و درون پتریدیش حاوی محیط کشت جامد، قرار گرفت. پتریها در دمای cْ25 و در شرایط تاریکی نگهداری شدند. پس از دو هفته اولین نشانههای القای بافت از ناحیه هیپوکتیل جنین زایشی مشاهده شد. بافت جنینزا در دو مرحله (30 و 40 روز پس از کشت اولیه) اندازهگیری شد. اثر ترکیب تنظیمکننده رشد و گونه بر میزان القای بافت جنینزا معنیدار بوده و بهترین نتایج در گونه P. brutia و با استفاده از ترکیب هورمونی 10 میکرومول2,4-D و 5 میکرومول BA حاصل گردید. بهمنظور پرآوری بافت-های جنینزا، واکشت بافتها به مدت 6 هفته و هر دو هفته یکبار در محیط کشت تازه انجام شد. در نهایت بهمنظور تکامل جنین رویشی از بافت جنینزا، قطعات 5×5 میلیمتری بافت جنینزا، به محیط کشت DCR انتقال یافت. پس از گذشت دو ماه اگرچه ساختارهای شبهجنینی و غیرطبیعی مشاهده شد ولی عبور از مرحله پیشجنین و تبدیل آن به جنین با لپههای توسعه یافته، با عدم موفقیت همراه بود. | ||
کلیدواژهها | ||
جنین زایشی بالغ؛ تنظیم کننده رشد؛ محیط کشت؛ مگاگامتوفیت؛ کاج | ||
مراجع | ||
- Arya, S. Kalia, R. K. and Arya, I. D. 2000. Induction of somatic embryogenesis of Pinus roxburghii Sarg., Plant Cell Reports. 19: 775-780. - Attree, S. M. Budimir, S. and Fowke, L. C. 1990. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from cultured shoots and cotyledons of seedling from stored seed of black and white spruce (Picea mariana and Picea glauca). Canadian Journal of Botany. 68(1): 30-34. - Bozhkov, P. Filonova, L. H. and von Arnold, S. 2002. A key developmental switch during Norway spruce somatic embryogenesis is induced by withdrawal of growth regulators and is associated with cell death and extracellular acidification. Biotechnology and Bioengineering. 77(6): 658-667. - Garin, E. Isabel, N. and Plourde, A. 1998. Screening of large numbers of seed families of Pinus strobus L. for somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos, Plant Cell Reports, 18: 37-43. - George, E. F. Michael, A. H. and De Klerk, G. J. 2008. Plant propagation by tissue culture, 3 Ed.,Springer, Netherlands, 501 pp. - Gupta, P. K. and Durzan, D. J. 1985. Shoot multiplication from mature trees of Douglas fir (Pseudotsuga menziesii) and sugar pine (Pinus lambertiana). Plant Cell Reports. 4: 177-180. - Klimaszewska, K. Park, Y. S. Overton, C. Maceacheron, I. and Bonga, J. M. 2001. Optimized somatic embryogenesis in Pinus strobus L., In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 37: 392-399. - Lelu, M. A. Bastien, C. Drugeault, A. Gouez, M. L. and Klimaszewska, K. 1999. Somatic embryogenesis and plantlet development in Pinus sylvestris and Pinus pinaster on medium with or without growth regulators. Physiology Plant. 105: 719-728. - Isabel, N. and Tremblay, F. M. 1995. Somatic embryogenesis in red spruce (Picea rubens Sarg.), In: Jain, S. Gupta, P. and Newton, R. (eds.), Somatic Embryogenesis in Woody Plants, Kluwer Academic, Netherlands, 3: 111-123 pp. - Maruyama, E. Hosoi, Y. and Ishii, K. 2007. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration in yakutanegoyon, Pinus armandii Franch. var. amamiana (Koidz.) Hatusima, an endemic and endangered species in Japan, In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 43: 28-34 pp. - Salajova, T. Salaj, J. and Kormutak, A. 1999. Initiation of embryogenic tissues and plantlet regeneration from somatic embryos of Pinus nigra Arn. Plant Science. 145: 33-35. - Stasolla, C. Kong, L. Yeung, E. C. and Thorpe, T. A. 2002. Maturation of somatic embryos in conifers: morphogenesis, physiology, biochemistry and molecular biology, In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant. 38: 93-105. - Tang, W. and Newton, R. J. 2007. Micropropagation via organogenesis in slash pine, In: Jain, S. M. and Häggman, H. (eds.), Protocols for Micropropagation of Woody Trees and Fruits, Springer, 15-22. - Tautorus, T. E. Attree, S. M. Fowke, L. C. and Dunstan, D. I. 1990. Somatic embryogenesis from immature and mature zygotic embryos and embryo regeneration from protoplasts in black spruce (Picea mariana Mill). Plant Science. 67: 115-124. - Tremblay, F. M. 1990. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from embryos isolated from stored seed of Picea glauca. Canadian Journal of Botany. 68: 236-242. - Wilson, S. M. and Thorpe, T. A. 1995. Somatic embryogenesis in Picea glauca (white spruce), P. engelmannii (engelmann spruce) and P. glauca engelmannii complex (interior spruce), In: Jain, S. Gupta, P. and Newton, R. (eds.), Somatic Embryogenesis in Woody Plants, Published by Kluwer Academic, Netherlands, 3: 37-53. - Yildirim, T. Kaya, Z. and Isik, K. 2006. Induction of embryogenic tissue and maturation of somatic embryos in Pinus brutia TEN., Plant Cell Tissue Organ Culture, 87: 67-76. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,586 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,793 |