
تعداد نشریات | 163 |
تعداد شمارهها | 6,878 |
تعداد مقالات | 74,135 |
تعداد مشاهده مقاله | 137,878,684 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 107,237,422 |
تاثیرغظتهای مختلف عصاره اتری بره موم، بر ویژگی های اسپرم قوچ زل | ||
علوم دامی ایران | ||
دوره 56، شماره 3، مهر 1404، صفحه 565-583 اصل مقاله (1.95 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijas.2025.386238.654048 | ||
نویسندگان | ||
آذین وحدت1؛ حمید دلدار* 2؛ زربخت انصاری پیرسرایی1؛ بهرام شهره3؛ عیسی دیرنده1 | ||
1گروه علوم دامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران | ||
2گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران | ||
3گروه علوم دامی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری ،ساری، ایران. | ||
چکیده | ||
پژوهش حاضر بهمنظور بررسی تاثیر غلظتهای مختلف عصاره اتری بره موم، بر ویژگیهای اسپرم قوچ زل انجام شد. پژوهش در قالب طرح کامل تصادفی با تیمارهای آزمایشی شامل، غلظتهای مختلف عصاره اتری: (25/0، 5/0 ، 1 میلیگرم در میلیلیتر) و رقیق کننده بدون عصاره به عنوان گروه شاهد مورد استفاده قرار گرفت. عصاره اتری در محلول دی متیل سولفوکساید (DMSO[1]) حل و به رقیق کننده اضافه شد. به همین دلیل اثرDMSO نیز به عنوان شاهد بررسی شد. ارزیابی فراسنجههای کمی اسپرم پس از یخگشایی و همچنین در حالت مایع برای زمانهای صفر، 24، 48، 72 ساعت پس از نگهداری در دمای یخچال انجام شدند. یافتههای این پژوهش نشان داد که غلظتهای 25/0، 5/0 و 1 میلیگرم در میلیلیتر عصاره اتری تفاوت معنیداری نسبت به تیمار شاهد داشتند (05/0p <). نتایج نشان دادند که در حالت مایع، تیمار 5/0 میلیگرم در میلیلیتر بر جنبایی، زندهمانی، یکپارچگی غشای پلاسمای اسپرم و پس از یخگشایی، تیمار 25/0 میلیگرم در میلیلیتر بر جنبایی، زندهمانی و غلظت مالون دی آلدئید نمونه منی، اثر افزایشی معنیداری (05/0p <) نسبت به سایر تیمارها داشتند. همچنین تیمارهای 25/0 و 5/0 میلیگرم در میلیلیتر هم در حالت مایع و هم پس از یخگشایی ، اثر معنی داری (05/0p <) بر ریختشناسی و افزایش فعالیت میتوکندری اسپرم داشتند. بنابراین پژوهش حاضر نشان داد، افزودن غلظتهای 25/0 و 5/0 میلیگرم در میلیلیتر عصاره اتری منجربه افزایش کیفیت اسپرم (جنبایی، زندهمانی، ریختشناسی، یکپارچگی غشای پلاسما، فعالیت میتوکندری و غلظت مالون دی آلدئید نمونه منی) در حالت مایع و پس از یخگشایی شد. [1]. Dimethyl sulfoxide | ||
کلیدواژهها | ||
عصاره اتری؛ بره موم؛ انجماد؛ اسپرم قوچ | ||
مراجع | ||
منابعمومن نژاد، مجتبی. (1397). تاثیر بره موم بر نگهداری کوتاه و بلند مدت منی قوچ. پایاننامة کارشناسی ارشد به راهنمایی حمید دلدار. مازندران: دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی ساری. واحدی، وحید. (1399). بررسی اثرات عصاره گیاه شاه اسپرم بر برخی از فراسنجه های کیفی اسپرم قوچ مغانی پس از انجماد و یخ گشایی. پژوهشهای علوم دامی (دانش کشاورزی)، 30(4 )، 71-82. RERERENCES Azevedo, D. C. (2018). Eudesmol and its derivatives as potent antioxidants: a combined experimental and theoretical study. Journal of Molecular Structure, 1164: 449-456. Aksoy, Y., Aksoy, H., Altinkaynak, K., Aydin, H. R. & Ozkan, A. (2006). Sperm fatty acid composition in subfertile men. Prostaglandins, Leukotrienes, and Essential Fatty Acids. Sciencedirect, 75(2): 75-79. Bucak, M. N., Tuncer, P. B., Sarıözkan, S. & Ulutaş, P. A. (2009). Comparison of the effects of glutamine and an amino acid solution on post-thawed ram sperm parameters, lipid peroxidation and anti-oxidant activities. Small Ruminant Research, 81(1), 13-1. Baghshahi, H., A. Riasi, A.H. Mahdavi & A. Shirazi. (2014). Antioxidant effects of clove bud (Syzygium aromaticum) extract used with different extenders on ram spermatozoa during cryopreservation. Cryobiology, 69: 482-487. Badr, M.R., Abdel-Malak, M.G. & Shaker, M. H. (2004). Influence of some fatty acids and cholesterol addition to semen extender on freezability and in vitro fertilizing potential of ram spermatozoa. Assiut Veterinary Medical Journal, 50: 304-318. Collodel, G., Castellini, C., Chung-Yung Lee, J. & Signorini, C. (2020). Relevance of fatty acids to sperm maturation and quality. oxidative medicine and cellular longevity, 124(14). Chatterjee, S., Lamirande, E. & Gagnon, C. (2001). Cryopreservation alters membrane sulfhydryl status of bull spermatozoa: protection by oxidized glutathione. Molecular Reproduction and Development, 60: 498-506. Davis, T.C. & White, R.R. (2020). Breeding animals to feed people: the many roles of animal reproduction in ensuring global food security. Theriogenology ,150: 27–33. Esterbauer, H., & Cheeseman, K. H. (1990). Determination of aldehydic lipid peroxidation products: malonaldehyde and 4-hydroxynonenal. In Methods in enzymology, 186 (407-421). Academic Press. Evans, G., & Maxwell, W. C. (1987). Salamons' artificial insemination of sheep and goats (No. Ed. 2), Butterworths. Eslami, M., Ghaniei, A. & Rad, H. M. (2016). Effect of the rooster semen enrichment with oleic acid on the quality of semen during chilled storage. Poultry science, 95(6): 1418-1424. Farooqui, T. & A Farooqui A. (2010). Molecular Mechanism Underlying the Therapeutic Activities of Propolis: A Critical Review .Current Nutrition and Food Science, (14)186-199. Hancock, J. (1956). The morphology of boar spermatozoa. Journal of the Royal Microscopical Society, 76: 84-97. Hossain, S., Tareq, K., Hammano, K.-I. & Tsujii, H. (2007). Effect of fatty acids on boar sperm motility viability and acrosome reaction. Reproductive medicine biology of Reproduction, 6, 235-239. Hashem, E. Z., Haddad, R. & Eslami, M. (2017). Evaluation of ram semen enrichment with oleic acid on different spermatozoa parameters during low temperature liquid storage. Small Ruminant Research, 150: 30-39. Iv´an Y´anez-Ortiz., Catal´an, J., Rodríguez-Gil, J. E., Mir´, J. o & Yeste, M. (2022). Advances in sperm cryopreservation in farm animals: Cattle, horse, pig and sheep .Animal Reproduction Science, 246. Johnson LV, M.L. & Walsh, L.B. Chen. (1980). Localization of mitochondria in living cells with rhodamine 123. Proc NatI Acad Sci USA, 77:990. Jasim, H. A., Nahar, L., Jasim, M. A., Moore, S. A., Ritchie, K. J. & Sarker, S. D. (2021). Chalcones: Synthetic chemistry follows where nature leads. Biomolecules, 11(8): 1203. Komarek , R. J., Pickett, B. W., Lanz, R. N. & Jensen, R. G. (1964). Lipid composition of bovine spermatozoa and seminal plasma. Journal of Dairy Science. Lin, K.W., Yang, S.C. & Lin, C.N. (2011). Antioxidant constituents from the stems and fruits of Momordica charantia Food Chemistry, 127(2): 609-614. Linford, E., Glover, F.A., Bishop, C. & Stewart, D.L. (1976). The relationship between semen evaluation methods and fertility in the bulls. Reproduction and Fertility, 47: 283-291. Labbozzetta, M., Poma, P., Tutone, M., McCubrey, J. A., Sajeva, M. & Notarbartolo, M. (2022). Phytol and heptacosane are possible tools to overcome multidrug resistance in an in vitro model of acute myeloid leukemia. Pharmaceuticals, 15 (3): 356. Meizel, S. & Turner, K. O. (1983). Stimulation of an exocytotic event, the hamster sperm acrosome reaction, by cis‐unsaturated fatty acids. FEBS letters, 161(2): 315-318. Malo, C., Gil, L., Gonzalez, N., Martínez, F., Cano, R., Blas, I. de & Espinosa, E. (2010). Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology, 61: 142-147. McNiven, M. A. & Richardson, G. F. (2006). Effect of quercetin on capacitation status and lipid peroxidation of stallion spermatozoa. Cell Preservation Technology ,4(3): 169-177. Momennejad, M. (2019). Effect of Propolis on short term preservation and cryopreservation of ram semen. Master's thesis by Hamid Deldar.Mazandaran: Sari Agricultural Sciences and Natural Resources University . ( inPersian) Nijs, M., Creemers, E., Cox, A., Janssen, M., Vanheusden, E., Castro-Sanchez, Thijs, Y., H. & Ombelet, W. (2009). Influence of freeze-thawing on hyaluronic acid binding of human spermatozoa. Reproduction Biomed, 19: 202–206. Pickett, B., Faulkner, L., Seidel Jr, G., Berndtson, W & Voss, J. (1976). Reproductive physiology of the stallion. IV. Seminal and behavioral characteristics. Journal of animal science,43, 617-625. Revell, S.G. & Mrode , R.A. (1994). An osmotic resistance test for bovine semen. Animal Reproduction Science, 36: 77–86. Soltani, L. (2023). Role of Oleic Acid and Trehalose on Frozen-Thawed Ram Semen. Cryoletters, 44(6): 343-351. Silva, J. C., Rodrigues, S., Feás, X., & Estevinho, L. M. (2012). Antimicrobial activity, phenolic profile and role in the inflammation of propolis. Food and Chemical Toxicology, 50(5), 1790-1795. Veerkamp, R.F. & Beerda, B. (2007). Genetics and genomics to improve fertility in high producing dairy cows. Theriogenology, 68: 266–273. Vale, W., Marques, J., Ohashi, O., Sousa, J., Silva, A., de Souza, H & Ribeiro, H. (1998). Buffalo reproduction and breeding in Brazil, In: 4th Sipar of lipid-based cryoprotectants. Biology of reproduction ,74, 359-365. Vahedi, V. (2020). Effects of Costmary (Tanacetum balsamita L.) extract on selected quality parameters of Moghani ram sperm after cryopreservation. Journal of Animal Science, 30(4) ,71-82. ( inPersian) Wicker-Thomas, C. ( 2007). Pheromonal communication involved in courtship behavior in Diptera. Journal of Insect Physiology ,53(11): 1089-1100. Yousif, A. I., Abd-Elaziz, M. A. & Shehabeldin, A. M. (2024). Nano-oleic Acid inTris-Extender: Effects on Bull Sperm Cryopreservation, Fertility, and Post-thaw Antioxidant Status. Journal of Sustainable Agricultural and Environmental Sciences ,3(4): 9-18. Zhu, Z., Li, R., Feng, C., Liu, R., Zheng, Y., Hoque, S. M., Wu, D., Lu, H., Zhang, T. & Zeng, W. (2020). Exogenous oleic acid and palmitic acid improve boar sperm motility via enhancing mitochondrial β-oxidation for ATP generation. Animals ,10(4): 591. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 256 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 97 |